Lim, Jong Chul;Chae, Jong Chan;Kim Youngsoo;Kim, Hyong Bai;Kim Chi Kyung
Journal of Microbiology
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v.34
no.4
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pp.349-354
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1996
Pseudomonas sp. P20 is a natural isolate which is capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl. From a clone of pCK1022 harboring pcbCD genes of Pseudomonas sp P20, a pcbD gene encoding 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA) hydrolase was subcloned in Escherichia coli XL-1-Blue by using pBluescript SK(+) vector. The 2.8-kb HindII fragment harboring the pcbD gene cloned in pCK 1024 had a single site for each of XhoI, SalI, BstXI, and XbaI restriction enzymes. Escherichia coli CK1024 had a single site for each of XhoI, SalI, BstXI, and XbaI restriction enzymes. Escherichia coli CK1024 carrying pCK0124 degraded HOPDA to benzoate and 2-hydroxypenta-2, 4-dienoate by HOPDA hydrolase encoded by pcbD gene as effectively as E coli CK 1022 HARBORING pcbCD genes.
Kim, Hyun-Kuk;Kim, Sung-Koo;Lee, Byung-Hun;Suk, Keun-Hack;Kong, In-Soo
Journal of Life Science
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v.8
no.1
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pp.85-90
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1998
Pseudomonas sp. KH2-2 had the denitrifying ability adn was isolated from the denitrifier consortium in order to remove nitrogen compounds from waste water in aquaculture system. When this strain was reached stationary phase, it has the maxium denitrification activity. Denitrification activity of the isolated strain was shown the growth associated pattern. Optimal temperature for cell growth and denitrification activity was 40$\circ$C and optimal pH was 7.
For the production of catechol from benzene, bacteria capable of assimilating benzene as a sole carbon and energy source were isolated from soils. Among them, newly isolated strain, KY-114 hay-ing the best ability of producing catechol from benzene was selected and a mutant Pseudomonas sp. HW-103 was developed from Pseudomonas sp. KY-114 by using mutagenesis induced by N-methyl - N'- nitro - N -nitrobo guanidine. The catechol reduction from benzone by Pseudomonas sp. HW-103 was investigated under various conditions. The highest catechol concentration (0.61 g/$\ell$) was obtained in the growth medium (pH 6.5) containing 1% sodium citrate, 0.75% (NH$_4$)$_2$SO$_4$, 0.15% benzene and other minerals at 3$0^{\circ}C$ after incubating of 15hrs. In the catechol production through the reaction with resting rolls, 2.5 g/1 of catechol was produced from 4 g/$\ell$ of benzene after incubation of 10 hrs under the optium conditions, which correponds to 45% of theoretical catechol yield.
Fusarium wilt of radish (Raphanus sativus L.) is caused by the Fusarium oxysporum f. sp. raphani (FOR) which mainly attacks Raphanus spp. The pathogen is a soil-borne and forms chlamydospores in infected plant residues in soil. Infected pathogen colonizes the vascular tissue, leading to necrosis of the vascular tissue. Growth promoting beneficial organisms such as Pseudomonas fluorescens WCS374 (strain WCS374), P. putida RE10 (strain RE10) and Pseudomonas sp. EN415 (strain EN415) were used for microorganisms-mediated induction of systemic resistance in radish against Fusarium wilt. In this bioassy, the pathogens and bacteria were treated into soil separately or concurrently, and mixed the bacteria with the different level of combination. Significant suppression of the disease by bacterial treatments was generally observed in pot bioassy. The disease incidence of the control recorded 46.5% in the internal observation and 21.1% in the external observation, respectively. The disease incidence of P. putida RE10 recorded 12.2% in the internal observation and 7.8% in the external observation, respectively. However, the disease incidence of P. fluorescens WCS374 which was proved to be highly suppressive to Fusarium wilt indicated 45.6% in the internal observation and 27.8% in the external observation, respectively. The disease incidence of P. putida RE10 mixed with P. fluorescens WCS374 or Pseudomonas sp. EN415 was in the range of 10.0-22.1%. On the other hand, the disease incidence of P. putida RE10 mixed with Pseudomonas sp. EN415 was in the range of 7.8-20.2%. The colonization by FOR was observed in the range of $2.4-5.1{\times}10^3/g$ on the root surface and $0.7-1.3{\times}10^3/g$ in the soil, but the numbers were not statistically different. As compared with $3.8{\times}10^3/g$ root of the control, the colonization of infested ROR indicated $2.9{\times}10^3/g$ root in separate treatments of P. putida RE10, and less than $3.8{\times}10^3/g$ root of the control. Also, the colonization of FOR recorded $5.1{\times}10^3/g$ root in mixed treatments of 3 bacterial strains such as P. putida RE10, P. fluorescens WCS374 and Pseudomonas sp. EN415. The colonization of FOR in soil was less than that of FOR in root part. Based on soil or root part, the colonization of ROR didn't indicate a significant difference. The colonization of introduced 3 fluorescent pseudomonads was observed in the range of $2.3-4.0{\times}10^7/g$ in the root surface and $0.9-1.8{\times}10^7/g$ in soil, but the bacterial densities were significantly different. When growth promoting organisms were introduced into the soil, the population of Pseudomonas sp. in the root part treated with P. putida RE10 was similar in number to the control and recorded the low numerical value as compared with any other treatments. The population density of Pseudomonas sp. in the treatment of P. putida RE10 indicated significant differences in the root part, but didn't show significant differences in soil. The population densities of infested FOR and introduced bacteria on the root were high in contrast to those of soil. P. putida RE10 and Pseudomonas sp. EN415 used in this experiment appeared to induce the resistance of the host against Fusarium wilt.
Park, Dong-Woo;Lee, Kyoung;Chae, Jong-Chan;Kudo, Toshiaki;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.3
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pp.483-489
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2004
Pseudomonas sp. S-47 is a bacterium capable of degrading benzoate as well as 4-chlorobenzoate (4CBA). Benzoate and 4CBA are known to be degraded via a meta-cleavage pathway characterized by a series of enzymes encoded by xyl genes. The meta-cleavage pathway operon in Pseudomonas sp. S-47 encodes a set of enzymes which transform benzoate and 4CBA into TCA cycle intermediates via the meta-cleavage of (4-chloro )catechol to produce pyruvate and acetyl-CoA. In the current study, the meta-pathway gene cluster was cloned from the chromosomal DNA of S-47 strain to obtain pCS1, which included the degradation activities for 4CBA and catechol. The genetic organization of the operon was then examined by cloning the meta-pathway genes into a pBluescript SKII(+) vector. As such, the meta-pathway operon from Pseudomonas sp. S-47 was found to contain 13 genes in the order of xylXYZLTEGFlQKIH. The two regulatory genes, xylS and xylR, that control the expression of the meta-pathway operon, were located adjacently downstream of the meta-pathway operon. The xyl genes from strain S-47 exhibited a high nucleoside sequence homology to those from Pseudomonas putida mt-2, except for the xylJQK genes, which were more homologous to the corresponding three genes from P. stutzeri AN10. One open reading frame was found between the xylH and xylS genes, which may playa role of a transposase. Accordingly, the current results suggest that the xyl gene cluster in Pseudomonas sp. S-47 responsible for the complete degradation of benzoate was recombined with the corresponding genes from P. putida mt-2 and P. stutzeri AN10.
The pchABCD genes in Pseudomonas sp. DJ-12 speciyin degradation o 4-chlorobiphenyl(4CB) were cloned in Eschericia coli. The cloned cells of E. coli CU1 and CU101 showed to produce 2,3-dihydroxybiphenyl (2,3-DHBP) from 4-chlorobiphenyl by dechlorination, as Pseudomonas so. DJ-12 produced 2,3-DHBP from both biphenyl and 4CB. In particular, E. coli CU101 transformed with the recombinant plasmid of pCU101 revealed dechlorination activity to produce 2,3-DHBP from 4CB without production of 4-chlorobenzoic acid. Therefore, the pcbAB genes (2.2 kb in size) cloned from the chromosome of Pseudomonas sp. DJ-12 were found to have dechlorination activity on 4CB to produce 2,3-DHNP.
Kim, Yong-Gyun;Lee, Sang-Mong;Park, Hyun-Chul;Kim, Keun-Ki;Son, Hong-Joo
Journal of Life Science
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v.17
no.4
s.84
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pp.568-574
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2007
Lignin degrading bacterium Pseudomonas sp. LG2 was able to degrade lignin substrate to a lot of APPL compound. APPL compound was detected in culture supernatants from Pseudomonas sp. LG2 grown with BSC(brewer's spent grain). FAE(ferulic acid esterase) and xylanase are induced from Pseudomonas sp. LG2 in the presence of carbon sources such as oat spelt xylan, HBSG I, II(hydrolyzed brewer's spent grain I, II) and AFBSG(autoclaved fraction from brewer's spent grain). However, xylanase and FAE are not induced by growth of Pseudomonas sp. LG2 on xylose and arabinose. Pseudomonas sp. LG2 is grown on medium containing oat spelt xylan, HBSG I, II and AFBSG and the induction of FAE and xylanase activities of extracellular proteins determined during 14 days. Maximum level of xylanase activity(5.3 U/mg) found at 6 days in culture contained oat spelt xylan as carbon source, whereas maximum level of FAE activity(15.4 mU/mg) was found at 8 days in culture contained AFBSG as carbon source. Most ferulic acid was released in culture supernatants when Pseudomonas sp. LG2 grown on oat spelt xylan, HBSG I, II and AFBSG. FAE of extracellular enzymes was also specific activity on methyl ferulic acid, methyl caffeic acid and methyl p-coumaric acid respectively, but not methyl sinapinic acid, methyl vanillic acid and methyl gallic acid.
Kim, Ji-Young;Kim, Youngsoo;Lee, Kyoung;Kim, Chi-Kyung
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.6
no.1
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pp.56-60
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2001
The pcbC gene encoding (4-chloro-)2,3-dihydroxybiphenyl dioxygenase was cloned from the genomic DNA of Pseudomonas sp. P20 using pKT230 to construct pKK1. A recombinant strain, E. coli KK1, was selected by transforming the pKK1 into E. coli XL1-Blue. Another recombinant strain, Pseudomonas sp. DJP-120, was obtained by transferring the pKK1 of E. coli KK1 into Pseudomonas sp. DJ-12 by conjugation. Both recombinant strains showed a 23.7 to 26.5 fold increase in the degradation activity to 2,3-dihydroxybiphenyl compared with that of the natural isolate, Pseudomonas sp. DJ-12. The DJP-120 strain showed 24.5, 3.5, and 4.8 fold higher degradation activities to 4-chlorobiphenyl, catechol, and 3-methylcatechol than DJ-12 strain, respectively. The pKK1 plasmid of both strains and their ability to degrade 2,3-dihydroxybiphenyl were stable even after about 1,200 generations.
A strain of Pseudomonas sp. isolated from soil was shown to produce a high level of extracellular endo-inulinase. In this work, the endo-inulinase gene (inu1) of the bacterial strain was cloned into the plasmid pBR322 by using EcoRI restriction endonuclease and E. coli HB101 as a host strain. One out of 7, 000 transformants obtained from the above cloning experiment formed a clear zone around its colony on the selective medium supplemented with 2.0% inulin after a prolonged incubation at 37$\circ$C and subsequent cold shock treatment. The functional clone was found to carry a recombinant plasmid (pKMG50) with a 3.7 kb genomic insert containing the genetic information for the inulinase activity. The inulinase from E. coli HB101/pKMG50 was proved to be an endo-acting enzyme and produced constitutively in the recombinant E. coli cells. Zymogram of the enzyme from the recombinant cells with inulin substrate indicated that the molecular mass of the active protein was 190 Kd, while that of the endo-inulinase from the Pseudomonas strain was 170 Kd. This size discrepancy suggested that the inulinase from the recombinant E. coli HB101 cells might be the initial product of translation, not the mature form produced in the strain of Pseudomonas sp..
A survey of bacterial species associated with Korean isolates of pine wood nematode (PWN) was performed. A total of 110 bacterial isolates were obtained from the PWN isolates that were previously isolated from Pinus densiflora and P. koraiensis. Among the bacterial isolates, Cedecea neteri was most frequent (64 isolates) followed by Ewingella americana (21 isolates), Pseudomonas sp. (15 isolates), Flavobacterium sp. (8 isolates) and Rahnella aquatilis (2 isolates). Both E. americana and Pseudomonas sp. which are assumed to be closely associated with PWN were examined for their phytotoxicity to P. thunbergii seedlings. Ethyl acetate extracts of Psuedomonas sp. (Ba2 strain) cultures were found to induce wilting and mortality in the tested seedlings. The three bacterial species, Pseudomonas sp. (Ba2 strain), E. ameircana (Ba4 strain) and C. neteri (Ba10 strain) were examined in vitro for their sensitivity to 21 kinds of antibiotics. All of the strains were highly susceptible to carbenicillin, doxcycline and tetracycline.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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