Pseudomonas sp. BCNU 106 isolated from industrial wastewater was able to produce indigo from indole by utilizing various organic solvents. BCNU 106 produced indigo effectively when grown in the presence of a large volume of p-xylene, propylbenzene, and mesitylene and a high level of indole. The present study demonstrated that the maximal yield was achieved with 20% (v/w) p-xylene and 4 g/l indole. Under these conditions, the indigo yield and the transformation efficiency of indole were 315.5 mg/l and 97%, respectively. The results suggest that Pseudomonas sp. BCNU 106 might be a potential candidate for industrially important indigo production.
Park, Song-Yi;Lee, Dong-Hoon;Kim, Young-Soo;Lee, Kyung;Kim, Chi-Kyung
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.30
no.1
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pp.8-14
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2002
Pseudomonas sp. S-47 is capable of degrading 4-chlorobenzoate to produce 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde (5C-2HMS) by the enzymes encoding by xylXYZLTE cluster. In this study, the resulting 5C-2HMS was confirmed to be transformed to 5-chloro-2-hydroxymuconic acid (5C-2HMA) by 5C-2HMS dehydrogenase. The xylG gene encoding 5C-2HMS dehydrogenase was cloned from the chromosomal DNA of strain S-47. The nucleotide sequence of xylG showed to be composed of 1,600 base pairs with ATG initiation and TGA termination codons. A deduced amino acid sequence of the 5C-2HMS dehydrogenase (XylG) exhibited 98%, 93%, and 89% identity with those of the dehydrogenases from P. putida mt-2, P. putida G7, and Pseudomonas sp. CF600, respectively.
Fusarium wilt of radish (Raphanus sativus L.) is caused by the Fusarium oxysporum f. sp. raphani (FOR) which mainly attacks Raphanus spp. The pathogen is a soil-borne and forms chlamydospores in infected plant residues in soil. Infected pathogen colonizes the vascular tissue, leading to necrosis of the vascular tissue. Growth promoting beneficial organisms such as Pseudomonas fluorescens WCS374 (strain WCS374), P. putida RE10 (strain RE10) and Pseudomonas sp. EN415 (strain EN415) were used for microorganisms-mediated induction of systemic resistance in radish against Fusarium wilt. In this bioassy, the pathogens and bacteria were treated into soil separately or concurrently, and mixed the bacteria with the different level of combination. Significant suppression of the disease by bacterial treatments was generally observed in pot bioassy. The disease incidence of the control recorded 46.5% in the internal observation and 21.1% in the external observation, respectively. The disease incidence of P. putida RE10 recorded 12.2% in the internal observation and 7.8% in the external observation, respectively. However, the disease incidence of P. fluorescens WCS374 which was proved to be highly suppressive to Fusarium wilt indicated 45.6% in the internal observation and 27.8% in the external observation, respectively. The disease incidence of P. putida RE10 mixed with P. fluorescens WCS374 or Pseudomonas sp. EN415 was in the range of 10.0-22.1%. On the other hand, the disease incidence of P. putida RE10 mixed with Pseudomonas sp. EN415 was in the range of 7.8-20.2%. The colonization by FOR was observed in the range of $2.4-5.1{\times}10^3/g$ on the root surface and $0.7-1.3{\times}10^3/g$ in the soil, but the numbers were not statistically different. As compared with $3.8{\times}10^3/g$ root of the control, the colonization of infested ROR indicated $2.9{\times}10^3/g$ root in separate treatments of P. putida RE10, and less than $3.8{\times}10^3/g$ root of the control. Also, the colonization of FOR recorded $5.1{\times}10^3/g$ root in mixed treatments of 3 bacterial strains such as P. putida RE10, P. fluorescens WCS374 and Pseudomonas sp. EN415. The colonization of FOR in soil was less than that of FOR in root part. Based on soil or root part, the colonization of ROR didn't indicate a significant difference. The colonization of introduced 3 fluorescent pseudomonads was observed in the range of $2.3-4.0{\times}10^7/g$ in the root surface and $0.9-1.8{\times}10^7/g$ in soil, but the bacterial densities were significantly different. When growth promoting organisms were introduced into the soil, the population of Pseudomonas sp. in the root part treated with P. putida RE10 was similar in number to the control and recorded the low numerical value as compared with any other treatments. The population density of Pseudomonas sp. in the treatment of P. putida RE10 indicated significant differences in the root part, but didn't show significant differences in soil. The population densities of infested FOR and introduced bacteria on the root were high in contrast to those of soil. P. putida RE10 and Pseudomonas sp. EN415 used in this experiment appeared to induce the resistance of the host against Fusarium wilt.
A variety of abiotic stresses limit plant growth and crop productivity. Among the abiotic stress, salinity is one of the major harmful stresses to plants. Plant growth-promoting bacterium was isolated from reclaimed land soil of Kyehwa-do and identified as Pseudomonas. Pseudomonas sp. strain G19 produced $7.5{\mu}g/ml$ of indole acetic acid and solubilized 25% of insoluble phosphate after 36 h cultivation. Also, G19 was able to produce a protein that was structurally homologous to 1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase of Pseudomonas fluorescens KACC10070 playing a role in reduction of ethylene in plant. The strain G19 increased the biomass of Chinese cabbage seedlings grown in the presence of 150 mM NaCl. The results indicated that the strain G19 promoted the growth of Chinese cabbage seedling under salinity stress through microbe-plant interactions.
Pseudomonas sp. MBEL21 was newly isolated from soil samples and found to accumulate medium-chain-length Polyhydroxyalkanoates(MCL-PHAs) using oleic acid as a sole carbon source. Among the various nutrient limiting conditions examined, including nitrogen, sulfur and phosphorus, only phosphorus limitation supported the accumulation of MCL-PHAs up to 15 wt% of dry cell weight in flask cultures. MCL-PHAs produced by Pseudomonas sp. MBEL21 was mainly composed of 3-hydroxy-5-cis-tetradecenoate. Fed-batch culture of Pseudomonas sp. MBEL21 by novel feeding strategies based on cell growth charcteristics was carried out under phosphorus limitation using oleic acid as a sole carbon source. The final cell concentration and PHA content of 82 g/L and 28 wt%, respectively, were obtained. Furthermore, PHA consisted of MCL-hydroxyalkanoates and 3-hydroxybutyrate could be produced using olive oil as a sole carbon source.
A bacterium which is resistant to both mercury and cadmium, and also capable of utilizing phenol as a carbon and energy source, was isolated from the Kumho River sediments near Kangchang Bridge, Taegu, Korea. The isolate was labeled Pseudomonas sp. KM10 and characterized. The bacteria grew in 4 mM $CdCl_2$and in $70{\mu}M$$HgCl_2$. The bacteria efficiently removed over 90% of 1 g/l phenol within 30 h. In the presence of 1.250 g/l phenol, the growth of the microorganism was slightly retarded and the microorganism could not tolerate 1.5 g/l phenol. Curing of plasmid from the bacteria was carried out to generate a plasmidless strain. Subsequent experiments localized the genes for phenol degradation in plasmid and the genes for mercury resistance and cadmium resistance on the chromosome. Dot hybridization and Southern hybridization under low stringent conditions were performed to identify the DNA homology. These results showed significant homologies between the some sequence of the chromosome of Pseudomonas sp. KM10 and merR of Shigella flexneri R 100, and between the some sequence of the chromosome of Pseudomonas sp. KM10 and cadA of Staphylococcus aureus pI258. The mechanism of cadmium resistance was efflux, similar to that of S. aureus pI258 cadA, and the mechanism of mercury resistance was volatilization, similar to that of S. flexneri R100 mer.
Optimal biodegradation kinetics models to the initial nonylphenol ethoxylates-30 concentration were investigated and had been fitted by the linear regression. Microorganisms capable of degrading nonylphenol ethoxylates-30 were isolated from sewage near Ulsan plant area by enrichment culture technique. Among them, the strain designated as EL-10K had the highest biodegradability and was identified as Pseudomonas from results of taxonomical studies. The optimal conditions for the biodegradation were 1.0 g/ι of nonylphenol ethoxylates-30 and 0.02 g/ι of ammonium nitrate at pH 7.0 and 3$0^{\circ}C$. The highest degradation rate of nonylphenol ethoxylates-30 was about 89% for 30 hours incubation on the optimal condition. Biodegradation data were fit by linear regression to equations for 3 kinetic models. The kinetics of biodegradation of nonylphenol ethoxylates was best described by first order model for 0.1 $\mu\textrm{g}$/ι nonylphenol ethoxylates-30 ; by Monod no growth model and Monod with growth model for 0.5 $\mu\textrm{g}$/mι and 1.0, 5.0 $\mu\textrm{g}$/mι, respectively.
Trichloroethylene (TCE) is a widely used substance in commercial and industrial applications, yet it must be removed from the contaminated soil and groundwater environment due to its toxic and carcinogenic nature. We investigated bacterial community structure, dominant bacterial strain, and removal efficiency in a TCE contaminated groundwater treatment system using immobilized carrier. The microbial diversity was determined by the nucleotide sequences of 16S rRNA gene library. The major bacterial population of the contaminated groundwater treatment system was belonging to BTEX degradation bacteria. The bacterial community consisted mainly of one genus of Pseudomonas (Pseudomonas putida group). The domination of Pseudomonas putida group may be caused by high concentration of toluene and TCE. Furthermore, we isolated a toluene and TCE degrading bacterium, named Pseudomonas sp. DHC8, from the immobilized carrier in bioreactor which was designed to remove TCE from the contaminated ground water. Based on the results of morphological and physiological characteristics, and 16S rRNA gene sequence analysis, strain DHC8 was identified as a member of Pseudomonas putida group. When TCE (0.83 mg/L) and toluene (60.61 mg/L) were degraded by this strain, removal efficiencies were 72.3% and 100% for 12.5 h, respectively. Toluene removal rate was 2.89 ${\mu}mol/g$-DCW/h and TCE removal rate was 0.02 ${\mu}mol/g$-DCW/h. These findings will be helpful for maintaining maximum TCE removal efficiency of a reactor for bioremediation of TCE.
In order to produce ascorbic acid-2-phosphate from ascorbic acid, bacteria capable of transforming ascorbic acid to ascorbic acid-2-phosphate were isolated from soils and the stock cultures in our laboratory. Among them, a newly isolated bacterium LSH-3 having the best ability of producing ascorbic acid-2-phosphate was selected and partially identified as Pseudomonas sp. The optimum conditions for the production of ascorbic acid-2-phosphate from ascorbic acid and using its resting cells as the source os enzyme were investigated. The results were summarized as follows: The optimum cultivation time and the cell weight for the production of ascorbic acid-2-phosphate was 14 hours and 100g/I(wet weight), respectively. And 0.1%(v/v) Trition X-100 was the most effective surfactant. The optimum concentrations of ascorbic acid and pyrophosphate were 400mM and 500mM, respectively, which led to produce 14.54g/I of ascorbic acid-2-phosphate. The most effective buffer was 50mM sodium acetate. The optimum pH and temperature were 4.5 and $40^{\circ}C$, respectively. Under the above conditions, 17.71 g/I of ascorbic acid-2-phosphate was produced from ascorbic acid after 32 hour-incubation, which corresponded to 17.5% of conversion rate based on ascorbic acid.
The identification of eicosapentaenoic acid (EPA) by Pseudomonas sp. CH-414 were investigated under the optimal culture conditions. The maximum dry cell weight and phospholipid production showed about 10 mg/ml and 0.6 mg/ml, respectively, at the 48 hr cultivation. The phospholipid form produced by Pseudomonas sp. CH-414 was elucidated as a phosphatidyt ethanolamine by thin layer chromatography. EPA was contained about 15% in the. extractable lipid, and the amount of EPA was about 83 $\mu $g/ml from the culture broth. Also myristic, palmitic, palmitoleic, stearic and oleic acids were identified with gas chromatography.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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