Protoplast fusion was carried out between Brevibacterium flavum and Corynebacterium glutamicum. For the protoplast fusion, various mutants were isolated from Brevibacterium flavum ATCC 21493 and Corynebacteriurn glutamicum ATCC 21831. The optimum conditions for protoplast fusion of these mutants were examined. In the present work, the authors obtained a fusant, MWF 9031, by the intergeneric protoplast fusion between Brevibacterium flavum 108-125 and Corynebacterium glutamicum 41-214A, which was excellent in L-arginine fermentation. Fusant MWF 9031 was found to accumulate a large amount of L-arginine reached 32.5 mg/ml with a medium containing 10% glucose. The fusant possessed intermediate characteristics between the parental strains and the stability was found to retain for 60 days.
In order to develop yeast strains which can effectively produce ethanol from cellulosic hydrolyzates, protoplast fusion between Candida sp. KM-09-135 and Saccharomyces cweoisiue SM-07 was carried out and obtained the excellent fusant KMS-23. Fusant KMS-23 showed the optimal growth temperature and ethanol productivity at $37^{\circ}C$, and assimilated xylose, cellobiose, maltose and raffinose as fermentative sugars. Cell size of the fusant was about 1.2 times greater than that of KM-09-135 and 1.5 times SM-07. DNA content of fusant was 1.3 times higher than that of SM-07 and similar with KM-09-135. Fusant KMS-23 produced 2.57% (v/v) ethanol from saccharified wheat bran containing 6.44% (w/v) of reducing sugar, which was 1.3 times higher than parent strains under the same conditions.
Inter-specific hybridization between Pleurotus pulmonarius and P. florida was attempted through PEG-induced protoplast fusion to select a fusant. The protocol for protoplast release, regeneration and fusion in these two Pleurotus species was standardized using the variables controlling the process. The mixture of mycolytic enzymes, i.e. commercial cellulase, crude chitinase and pectinase, KCl (0.6 M) as osmotic stabilizer, pH 6 of the phosphate buffer and an incubation time of 3 hours resulted in the maximum release of protoplasts from 3-day-old mycelia of P. florida ($5.3{\sim}5.75{\times}10^{7}$ protoplasts/g) and P. pulmonarius ($5.6{\sim}6{\times}10^{7}$ protoplasts/g). The isolated protoplasts of P. florida regenerated mycelium with 3.3% regeneration efficiency while P. pulmonarius showed 4.1% efficiency of regeneration. Polyethyleneglycol (PEG)-induced fusion of protoplasts of these two species resulted in 0.28% fusion frequency. The fusant produced fruiting bodies on paddy straw but required a lower temperature of crop running ($24{\pm}2^{\circ}C$) than its parents which could fruit at $28{\pm}2^{\circ}C$. The stable fusant strain was selected by testing for the selected biochemical markers i.e. Carbendazim tolerance and utilization of the lignin degradation product, vanillin.
To enhance the capability of starch fermentation of the transformant TSD-14, the heat treated protoplasts of TSD-14 were fused with the protoplasts of C. tropicalis (lys$^-$) in the presence of 30% (w/ v) PEG and 20 mM CaC1$_2$. Fusants were selected by nutritional complementation on minium medium and the fusion frequency was 4.4$\times$10$^{-5}$. All fusants tested were possessed of complemented traits concerning carbon compound assimilation, and the cell volumes of the fusants were approximately 1.5 times larger than the parental strains. The fusants were genetically very stable, and were able to hydrolyze alpha 1,4-glucosidic linkage as well as alpha 1,6-linkage of starch contrary to one of parents TSD-14, The most promising fusant FSC-14-75 produced 8.7% (v/v) of ethanol from 15% liquefied potato starch medium, but the result was enhanced to 9.3% (v/v) by addition of 0.3% peptone. The corresponding fermentation efficiency was 86.0%.
To find pharmacologically active hybrids among the inter-order protoplast fusants of Lentinula edodes and Ginoderma lucidam the antitumor test was performed and the fusant P22 was selected among them. The hot water and alkaline extracts from the cultured mycelia of P22 were purified and separated into four fractions by DEAE-cellulose anion exchange chromatography. When a dose of 20 mg/kg/day of each fractions was injected into ICR mice by i.p., the tumor inhibition ratio of Fr. IV against solid sarcoma 180 was the higher than any other fraction. Fr. IV was a protein-bound polysaccharide which was composed of 69. 12% polysacchafide and 9.76% protein and the molecular weight of Fr. IV was $6.7{\times}10^4$ dalton.
The fermentative characteristics in ethanol production from lactose, with increased ethanol tolerance, of a fusant yeast strain constructed by protoplast fusion of Saccharomyces cerevisiae and Kluyveromyces fragilis were studied. The ethanol tolerance of this strain was increased to 8.0%, compared with the parent K. fragilis. During batch ethanol fermentation the optimal cultivation conditions for this fusant yeast were an initial pH of 4.5, a culture temperature $30^\circ{C}$. stirring at 100 rpm without aeration in 10% lactose medium (supplied with 1.0% yeast extract). Using this fusant strain in whey fermentation to ethanol, maximum ethanol production reached 3.41% (w/v) (theoretical yield; 66.7%) after a 48 hour cultivation period.
Regeneration of protoplast was effective by preincubating spore suspension containing 30$\mu g$/ml of 2-DG for 4 hours, and CBE medium containing casamino acid, bovine serum albumin, ergosterol and myoinositol was found to be more efficient than any other regeneration medium tested in this experiment. The regeneration frequency was about 30%. Optimal conditions for conidial protoplast fusion were obtained by treatment of protoplasts with 10 mM $CaCl_2$ and 30% polyethylene glycol 4000 (pH 7.5) as fusogenic agent at $37^{\circ}C$ for 10 minutes. The fusion frequency was $8.2\times 10^{-4}$. The higher productivity of enzyme of fusant FWN-56 was achived: 2.3-fold for CMCase, 1.5-fold for avicelase, 1.8-fold for $\beta$-glucosidase and 2.5-fold for xylanase compared to that obtained in two parental strains. The genetic stability of fusant after maintenance on minimal medium for more than 4 weeks was high because segregant rate was below 1%. The conidial DNA content of fusant was 1.4-1.6 times higher than that of the parental strains, The nucleus size of fusants were also higher than that of each parental strains.
To improve the starch fermentation ability of yeast, hybrids were introduced by protoplast fusion of S. cerevisiae and S. diastaticus. The protoplasts of parental auxotrophic cells were fused in the presence of 10 mM CaCl$_2$and 30% of polyethyleneglycol (M.W 4, 000). The frequencies of fusant formation varied depending upon the strains used and were 3.51$\times$10$^{-4}$ to 5.04$\times$10$^{-4}$ for the regenerated protoplasts. The strains capable of extensive starch hydrolysis produce only 10% to total fusants. The 4 strains were finally selected by the results of starch fermentation and genetic stability test. The DNA content and cell volume of the fusants were greater than those of the parental strains.
Improved amylases were developed from protoplast fusants of two amylase-producing Aspergillus species. Twenty regenerated fusants were screened for amylase production using Remazol Brilliant Blue agar. Crude enzyme extracts produced by solid state fermentation of rice bran were assayed for activity. Three variable factors (temperature, pH and enzyme type) were optimized to increase the amylase activity of the parents and selected fusants using rice bran medium and solid state fermentation. Analysis of this optimization was completed using the Central Composite Design (CCD) of the Response Surface Methodology (RSM). Amylase activity assays conducted at room temperature and 80℃ demonstrated that Aspergillus designates, T5 (920.21 U/ml, 966.67 U/ml), T13 (430 U/ml, 1011.11 U/ml) and T14 (500.63 U/ml, 1012.00 U/ml) all exhibited improved function making them the preferred fusants. Amylases produced from these fusants were observed to be active over the entire pH range evaluated in this study. Fusants T5 and T14 demonstrated optimal activity under acidic and alkaline conditions, respectively. Fusants T13 and T14 produced the most amylase at 72 h while parents TA, TC and fusant T5 produced the most amylase after 96 h of incubation. Response surface methodology examinations revealed that the enzyme from fusant T5 was the optimal enzyme demonstrating the highest activity (1055.17 U/ml) at pH 4 and a temperature of 40℃. This enzyme lost activity with further increases in temperature. Starch hydrolysis using fusant T5 gave the highest yield of glucose (1.6158 g/100 ml). The significant activities of the selected fusants at 28 ± 2℃ and 80℃ and the higher sugar yields from cassava starch hydrolysis over their parental strains indicate that it is possible to improve amylase activity using the protoplast fusion technique.
The protoplasts of Saccharomyces cerevisiae D-71, a thermophilic strain and Zygosaccharomyces rouxii SR-S, an osmotolerant strain were fused, and a fusant (FS-RN 1) was selected, then was characterized for its genetic stability, DNA content, cell capacity, growth rate, tolerance to salts and chemicals, $\beta$-fructofuranosidase level and ethanol fermenting activity. After 6 months of preservation, 5.8% of the fusant clones were segregated to parental types. The DNA content and cell capacity of the fusant were greater than those of the parental strains. Lag period of growth for the fusant was longer than those for the parents. The fusant colonies showed pink-color reaction to triphenyltetrazolium chloride(TTC) test. The fusant appeared to have resistances to NaCl at moderate levels between both parental strains, and resistances to KCI, sodium propionate and cycloheximide similar to either one of the parents. $\beta$-Fructofuranosidase activity of the fusant was 24.2$\times$10$^{-3}$/IU/g(dry wt) for 3 days culture. Ethanol yields ofter 4 days of fermentation by the fusant at 3$0^{\circ}C$ were : 6.0%(v/v) from 40% of glucose and 8.8%(v/v) from 20% of sucrose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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