Industrial development has increase consumption of crude oil and environmental pollution. A large number of microbial lipolytic enzymes have been identified and characterized to date. To development for a new lipase with catalytic activity in degradation of crude oil as a microbial enzyme, Acinetobactor sp. B2 was isolated from soil samples that were contaminated with oil in Daejon area. Acinetobactor sp. B2 showed high resistance up to 10 mg/mL unit to heavy metals such as Ba, Li, Al, Cr, Pb and Mn. Optimal growth condition of Acinetobactor sp. B2 was confirmed $30^{\circ}C$. Lipase was purified from the supernatant by Acinetobactor sp. B2. Its molecular mass was determined to the 60 kDa and the optimal activity was shown at $40^{\circ}C$ and pH 10. The activation energies for the hydrolysis of p-nitrophenyl palmitate were determined to be 2.7 kcal/mol in the temperature range 4 to $37^{\circ}C$. The enzyme was unstable at temperatures higher than $60^{\circ}C$. The Michaelis constant $(K_{m})\;and\;V_{max}$ for p-nitrophenyl palmitate were $21.8{\mu}M\;and\;270.3{\mu}M\;min^{-1}mg\;of\;protein^{-1}$, respectively. The enzyme was strongly inhibited by $Cd{2+},\;Co^{2+},\;Fe^{2+},\;Hg^{2+},\;EDTA$, 2-Mercaptoethalol. From these results, we suggested that lipase purified from Acinetobactor sp. B2 should be able to be used as a new enzyme for degradation of crude oil, one of the environmental contaminants.
In order to elucidate the plant-microorganism relationship, we purified an ethylene-inducible, basic 30 KD endochitinase from bean leaves and studied its antifungal activity by a hyphal extension-inhibition assay. The purified chitinase was effective in the inhibition of hyphal growth of Aspergillus fumigatus, Botrytis cinerea, Fusarium oxysporum, Rhizoctonia solani, while microbial chitinases of Serratia marcescens and Streptomyces griceus, egg white lysozyme and papya protease didn't affect hyphal growth of the fungi. The chitinase degraded the cell walls of Micrococcus lysodeikticus, suggesting the lysozyme activity of the chitinase. We discussed the implication of the bifunctional chitinase/lysozyme activities of the protein with hydrolysis of chitin in the rapidly extending hyphae of the fungi.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.23
no.6
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pp.945-949
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1994
Chondroitin sulfate (Chs) contents in edible snail , Achatina fulica Bowdich , andits processed meat extracts were determined by high-performance liquid chormatogrpahy(HPLC) and spectrophotometric method. Spectrophotometric method was based on the precipitation of acriflavine by ChS, and HPLC method was based on the detection of two unsaturated disaccharides, 2-acetamido-2-deoxy-3-O-($\beta$ -D-gluco-4-enepyranosyluronic acid)-4-O-sulfo-D-galactose($\Delta$Di-4S) and 2-acetamido-2deoxy-3-O-($\beta$-D-gluco-4-eepyranosyluronic acid)-6-O-sulfo-D-galactose ($\Delta$야-6S) librated from ChS byenzymeatic digestion with chondroitinase ABc. the ratio of 125$\mu$mol of sodium hydroxide to mg of ChS and 8$0^{\circ}C$ of reaction temperature were proper for alkaline hydrolysis to remove protein residue form ChS. In assay preparation for HPLC ethod, the iptimum concentration of the enzyme chondroitinase ABc was 0.15 unit per 50 $\mu\textrm{g}$ of ChS at a fixed reaction time (30 min) and pH 8.0 using Tris buffer. ChS content in edible snail was 177.6mg% by spectrophotometric method and 153.5mg% by HPLC method and those in the processed meat extract was 71.3mg% by spectrometric method ad 62.8mg% by HPLC method, respectively.
This study was designed to investigate the stability of a lipase fused with a cellulosebinding domain (CBD) to cellulase. The fusion protein was derived from a gene cluster of a CBD fragment of a cellulase gene in Trichoderma hazianum and a lipase gene in Bacillus stearothermophilus L1. Due to the CBD, this lipase can be immobilized to a cellulose material. Factors affecting the lipase stability were divided into the reaction-independent factors (RIF), and the reaction-dependent factors (RDF). RIF includes the reaction conditions such as pH and temperature, whereas substrate limitation and product inhibition are examples of RDF. As pH 10 and $50^{\circ}C$ were found to be optimum reaction conditions for oil hydrolysis by this lipase, the stability of the free and the immobilized lipase was studied under these conditions. Avicel (microcrystalline cellulose) was used as a support for lipase immobilization. The effects of both RIF and RDF on the enzyme activity were less for the immobilized lipase than for the free lipase. Due to the irreversible binding of CBD to Avicel and the high stability of the immobilized lipase, the enzyme activity after five times of use was over $70\%$ of the initial activity.
For the production of angiotensin I converting enzyme inhibitory peptides as a material for antihypertensive functional foods from animal blood produced in slaughterhouse, the optimum condition for enzymatic hydrolysis to yield a peptide fraction of the highest activity were investigated with a respect of industrial production. Among several industrially-usable enzymes tested, $Alcalase^?$ produced hydrolysates of the highest activity from total plasma and purified albumin. $IC_50$ values of albumin hydrolysate and its third fraction separated by gel chromatography were 0.5 and 0.02 mg/mL, respectively. The fraction was found to be obtained by a simple ultrafiltration using a membrane of MW cutoff 1,000. The possibility for the industrial production of antihypertensive peptides from animal blood plasma protein was suggested.
This research was focused on expression, purification and characterization of ubiquitin-specific protease 1 (UBP1) expressed in recombinant Escherichia coli. Various systems were constructed by fusing polycationic fusion tails or fusion partners to the C- or N-terminus of the product protein. In particular, UBP1 containing 6 histidine residues at the N-terminal end showed best results in terms of expression level and purification efficiency. The N-terminal $6{\times}His-tagged$ UBP1 was overproduced in recombinant E. coli using high cell density cultivation technology and purified using immobilized metal affinity chromatography. The molecular weight of UBP1 was found to be 83,500 daltons. The optimum temperature and pH for the enzyme reaction when ubiquitin-human growth hormone (hGH) was used as a substrate were $40^{\circ}C$ and pH 8.0, respectively.
Small GTP-binding proteins are divided into three major group: Ras, Rho and Ypt/Rab. They have the conserved regions designed G1 to G5 that are critical in GDP/GTP exchange, GTP-induced conformational change and GTP hydrolysis. We isolated and characterized genomic DNA or cDNAfragments encoding G1 to G3 domains of small GTP-binding protein Rab and Rho from several plant species using two different PCR-based cloning strategies. Seven rab DNA fragments were isolated from 4 different plants, mung-bean, tobacco, rice and pepper using two degenerate primers corresponding to the GTP-binding domain G1 and G3 in small GTP-binding proteins. The amino acid sequences among these rab DNA fragments and other known small GTP-binding proteins shows that they belong to the Ypt/Rab family. Six rho DNA fragments were isolated from 5 different plants, mung-bean, rice, Arabidopsis, Allium and Gonyaulax using the nested PCR method that involves four degenerate primers corresponding to the GTP-binding domain G1, G3 and G4. The rho DNA fragments cloned show more than 90% homology to each other. Sequence comparison between plant and other known Rho family genes suggests that they are closely related (67 to 82% amino acid identity). Sequence analysis and southern blot analysis of rab and rho in mung-bean suggest than thses genes are encoded by multigene family in mung-bean.
Journal of the Korea Institute of Military Science and Technology
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v.4
no.1
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pp.188-197
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2001
Organophosphorus acid anhydrolases(OPAA) catalyzing the hydrolysis of toxic organophosphates have been found in a variety of prokaryotic and eukaryotic organisms. Of the several kinds of OPAA that can degrade nerve agents, such as DFP, sarin and soman, a OPAA gene harbored in the chromosomal DNA of Alteromonas haloplanktis strain was subcloned in order to develope an enzymatic degradation method of toxic organophosphorus compounds. For this 1481 bp DNA fragment containing OPAA gene and its flanking regions has been synthesized through PCR using chromosomal DNA of A. haloplanktis strain. After subcloning and subsequent expression, crude OPA anhydrolase was prepared and assayed. It was shown that the OPAA had a very high hydrolytic activity on DFP. The specific activity of the enzyme was 1,110 $\mu$mole.$min^{p-1}.mg^{-1}$ protein. It seemed that OPAA with such a high hydrolytic activity may give a good prospects to its use, as a biodegradation tool, in detoxifying toxic organophosphorus compounds, such as pesticides and chemical stockpiles which are posing a potential threat to the field environment and human health.
Each of the recombinant structural genes of Helicobacter pylori urease, ureA and ureB, was cloned and overexpressed as inclusion bodies. Solubilization and renaturation of the inclusion bodies were carried out, to accelerate the pairing of sulfhydryl groups and the incorporation of nickel ions, which would lead to the native structure with high enzyme activity. Rates of urea hydrolysis were monitored as an indication of in vitro activation of renatured ureases. The activation of the apoprotein using 1 mM nickel ion, 100 mM sodium bicarbonate and a 10:1 ratio of reducing power resulted in a weak urease activity (about 11% of the native urease activity encoded by pTZ 19R/ure-l). When a sparse matrix screen method originally discovered for the crystallization of proteins was used, the activity increased higher than that obtained using glutathione. The effect of polyethylene glycol (PEG) on the activity was noticeable, giving two-fold increase in the specific activity (about 11 U/mg of protein corresponding to 22% of the native urease activity encoded by pTZ19R/ure-1).
An extracellular xylanase of Bacillus stearothemophilus was purified to a single protein through a sequency of operations including ammonium sulfate fractionation, DEAE Sepharose CL-6B ion exchange chromatography, Sephadex G-100 gel filtration and heat treatment. The purified enzyme had a moleular weight of 170, 000. the pH and temperature optima for the enzyme activity were pH 9.0 and $55^{\circ}C$, respectively. The activity was enhanced by $co^{2+} \; and\; Mn^{2+}$, and inhibited by $Hg^{2+}$. Pattern of hydrolysis demonstrated that the xylanase was an endo-splitting enzyme able to break down larchwood xylan at random giving xylobiose and xylotriose as the main end products.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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