A simple method for depleting E. coliS30 extracts of endogenous tRNA has been developed. An $ethanolamine-Sepharose^{(R)}$ column equilibrated with water selectively captured the tRNA molecules in E. coli S30 extracts. As a result, S30 extracts filtered through this column became completely dependent upon the addition of exogenous tRNA to mediate cell-free protein synthesis reactions. We anticipate that the procedures developed and described will be particularly useful for in vitro suppression reaction studies designed to introduce unnatural amino acids into protein molecules.
Eum, Won Sik;Jang, Sang Ho;Kim, Dae Won;Choi, Hee Soon;Choi, Soo Hyun;Kim, So Young;An, Jae Jin;Lee, Sun Hwa;Han, Kyuhyung;Kang, Jung Hoon;Kang, Tae-Cheon;Won, Moo Ho;Cho, Yong Joon;Choi, Jin Hi;Kim, Tae Yoon;Park, Jinseu;Choi, Soo Young
Molecules and Cells
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제19권2호
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pp.191-197
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2005
The human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) Tat protein transduction domain (PTD) is responsible for highly efficient protein transduction across plasma membranes. In a previous study, we showed that Tat-Cu,Zn-superoxide dismutase (Tat-SOD) can be directly transduced into mammalian cells across the lipid membrane barrier. In this study, we fused the human SOD gene with a Tat PTD transduction vector at its N- and/or C-terminus. The fusion proteins (Tat-SOD, SOD-Tat, Tat-SOD-Tat) were purified from Escherichia coli and their ability to enter cells in vitro and in vivo compared by Western blotting and immunohistochemistry. The transduction efficiencies and biological activities of the SOD fusion protein with the Tat PTD at either terminus were equivalent and lower than the fusion protein with the Tat PTD at both termini. The availability of a more efficient SOD fusion protein provides a powerful vehicle for therapy in human diseases related to this anti-oxidant enzyme and to reactive oxygen species.
Phosphorylation of cellular proteins is a key regulatory mehanism for signal transduction pathway in living cells. Phytochrome, a red/far-red light photoreceptor in plants, is known to employ protein phosphorylation for its light signaling, although its detauked mechanism is still ambiguous. This study is intended to identify the phosphoproteins and protein kinases that are regulated by phytochrome, by employing transgenic rice seedlings that overexpress Arabidopsis phytochrome A. Red light stimulated phsophorylation of a 70 kDa protein and far-red light negated the effect. The red light induced phosphotylation of the 70 kDa protein was strongly activated by heparin and inhibited by poly-L-lysine, suggesting that the 70 kDa protein phosphorylating kinase belongs to GSK-3/SHAGGY protein kinase that has functional roles in establishing cell fate and pattern formation in Drosophila. Taken together with the fact that phytochrome controls plant development, these results may suggest that a GSK-3/SHAGGY-related protein kinase in plant(ASK) is likely to be involved in phytochrome signal transduction.
Based on plasmid display technology by the complexes of fusion protein and the encoding plasmid DNA, an in vitro selection method for high affinity DNA-binding protein was developed and experimentally demonstrated. The GAL4 DNA-binding domain (GAL4 DBD) was selected as a model DNA-binding protein, and enhanced green fluorescent protein (EGFP) was used as an expression reporter for the selection of target proteins. Error prone PCR was conducted to construct a mutant library of the model. Based on the affinity decrease with increased salt concentration, mutants of GAL4 DBD having high affinity were selected from the mutant protein library of protein-encoding plasmid complex by this method. Two mutants of (Lys33Glu, Arg123Lys, Ile127Lys) and (Ser47Pro, Ser85Pro) having high affinity were obtained from the first generation mutants. This method can be used for rapid in vitro selection of high affinity DNA-binding proteins, and has high potential for the screening of high affinity DNA-binding proteins in a sequence-specific manner.
Among the proteins secreted from Lactobacillus acidophilus KCTC 3151, a 36 kDA and 24 kDa protein, whose amounts were relatively abundant, were purified and their N-terminal amino acid sequences determined. The N-terminal amino acid sequence of 36 kDa protein exhibited high homology with thymidine phosphorylase and glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase. The N-terminal amino acid sequence of the 24 kDa protein did not show significant homology with proteins in Protein Data Base nor Gene Bank. Nucleotide sequence of the gene encoding 36 kDa protein indicates that the protein possesses the domains for a-helical, phosphate binding and pyrimidine binding sites, which are also shown in thymidine phosphorylases. Also, the protein contains conserved domains of dehydrogenase II and III. However, the activity of thymidine phosphorylase or glyceraldehyde-3-puospnate dehydrogenase could not be detected in the purified fractions of the 36 kDa protein.
The electrophoretic patterns of plasma membrane surface proteins of normal rat liver cells and rat hepatomas were compared in 10% non-denaturing and 7-15% gradient non-denaturing gel. Chemical carcinogens, 2-Me DAB (2-methyl-4-dimethylaminoazobenzene) and DENA (diethylnitrosamine), were used to induce hepatoma in rats. One protein which disappeared in hepatoma was identified in normal rat liver by non-denaturing gel electrophoresis. Rabbit antisera were raised against this specific protein, and the protein was purified by Sephacryl S-200 column and immunoaffinity chromatography using the purified antibody. The purified protein showed two bands of molecular weights approximately 50 $kD_{\alpha}$ and 52 $kD_{\alpha}$ by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, which reacted specifically with the antibody. However only one band was observed in non-denaturing gel and also in isoelectric focusing with a pI value of 6.6. This study showed the existence of an unique protein on the plasma membrane surface of normal rat liver cells which disappeared in rat hepatomas induced by chemical carcinogens.
Seed storage proteins (SSPs) are important for seed germination and early seedling growth. We studied the accumulation and degradation profiles of four major Arabidopsis 12S SSPs using a 2-DE scheme combined with mass spectrometric methods. On the 2-DE map of 23 dpa (days post anthesis) siliques, 48 protein spots were identified as putative full-length or partial $\alpha$, $\delta$ subunits. Only 9 of them were found in 12 dpa siliques with none in younger than 8 dpa siliques, indicating that the accumulation of 12S SSPs started after the completion of cell elongation processes both in siliques and in developing seeds. The length and strength of transcription activity for each gene determined the final contents of respective SSP. At the beginning of imbibition, 68 SSP spots were identified while only 2 spots were found at the end of the 4 d germination period, with $\alpha$, subunits degraded more rapidly than the $\alpha$ subunits. The CRC $\delta$ subunit was found to degrade from its C-terminus with conserved sequence motifs. Our data provide an important basis for understanding the nutritional value of developing plant seeds and may serve as a useful platform for other species.
KIM HUN-SOO;BAE YOUNG-MIN;KIM YOUNG-KEE;OH BYUNG-KEUN;CHOI JEONG-WOO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권1호
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pp.141-144
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2006
An antibody layer was fabricated to detect Escherichia coli O157:H7. The micropattern of 16-mercaptohexadecanoic acid (16-MHDA) as alkylthiolate was formed on the gold surface by using the PDMS stamp with microcontact printing $({\mu}CP)$ techniques. In order to form antibody patterns on the template, protein G was chemically bound to the 16-MHDA patterns, and antibody was adsorbed on a self-assembled protein G layer. The formation of the 16-MHDA micropattern, self-assembled protein G layer and antibody pattern on Au substrate was confirmed by surface plasmon resonance (SPR) spectroscopy. Finally, the micropatterning method was applied to fabricate the antibody probe for detection of E. coli O157:H7, and monitoring of antigen by using this probe was successfully achieved.
PCR증폭기술 및 무세포 단백질 발현 기술의 융합을 통하여, 여러 형태로 서열의 일부가 결손된 단백질들을 고속으로 발현할 수 있는 시스템을 구축하였다. Exonuclease 및 endonuclease에 대한 mRNA의 안정성 향상을 통하여, PCR 증폭을 통해 획득한 선형 DNA로부터의 안정적인 단백질 발현이 가능하였다. 동일한 플라스미드로부터 출발하여 수 시간 이내에 C-말단의 아미노산서열이 순차적으로 제거된 다양한 형태의 트랜스아미나제 Vf의 활성변화를 확인할 수 있었으며 이같은 기술은 각종 효소 단백질의 서열-활성 상호관계의 연구를 위한 유용한 기반을 제공할 것으로 기대된다.
A surface resisting protein adsorption and cell adhesion is highly desirable for many biomedical applications such as diagnostic devices, biosensors and blood-contacting devices. In this study, a surface conjugated with sulfobetaine molecules was fabricated via the click reaction for the anti-fouling purpose. An alkyne-containing substrate (Alkyne-PPX) was generated by chemical vapor deposition of 4-ethynyl-[2,2]paracyclophane. Azide-ended mono-sulfobetaine molecules were synthesized and then conjugated on Alkyne-PPX via the click reaction. The protein adsorption from 10% serum was reduced by 57%, while the attachment of L929 cells was reduced by 83% onto the sulfobetaine-PPX surface compared to the protein adsorption and cell adhesion on Alkyne-PPX. In conclusion, we demonstrate that conjugation of mono-sulfobetaine molecules via the click chemistry is an effective way for reduction of non-specific protein adsorption and cell attachment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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