Background: Ginsenosides have been shown to exert beneficial pharmacological effects on the central nervous, cardiovascular, and endocrine systems. We sought to determine whether total ginsenosides (TG) inhibit monocrotaline (MCT)-induced pulmonary hypertension and to elucidate the underlying mechanism. Methods: MCT-intoxicated rats were treated with gradient doses of TG, with or without $N^G$-nitro-$\small{L}$-arginine methyl ester. The levels of molecules involving the regulation of nitric oxide and mitogen-activated protein kinase pathways were determined. Results: TG ameliorated MCT-induced pulmonary hypertension in a dose-dependent manner, as assessed by the right ventricular systolic pressure, the right ventricular hypertrophy index, and pulmonary arterial remodeling. Furthermore, TG increased the levels of pulmonary nitric oxide, endothelial nitric oxide synthase, and cyclic guanosine monophosphate. Lastly, TG increased mitogen-activated protein kinase phosphatase-1 expression and promoted the dephosphorylation of extracellular signal-regulated protein kinases 1/2, p38 mitogen-activated protein kinase, and c-Jun NH2-terminal kinase 1/2. Conclusion: TG attenuates MCT-induced pulmonary hypertension, which may involve in part the regulation of nitric oxide and mitogen-activated protein kinase pathways.
To identify the effect and mechanism of carbon monoxide (CO) on delayed rectifier K+ currents (IK) of human cardiac fibroblasts (HCFs), we used the wholecell mode patch-clamp technique. Application of CO delivered by carbon monoxidereleasing molecule-3 (CORM3) increased the amplitude of outward K+ currents, and diphenyl phosphine oxide-1 (a specific IK blocker) inhibited the currents. CORM3-induced augmentation was blocked by pretreatment with nitric oxide synthase blockers (L-NG-monomethyl arginine citrate and L-NG-nitro arginine methyl ester). Pretreatment with KT5823 (a protein kinas G blocker), 1H-[1,-2,-4] oxadiazolo-[4,-3-a] quinoxalin-1-on (ODQ, a soluble guanylate cyclase blocker), KT5720 (a protein kinase A blocker), and SQ22536 (an adenylate cyclase blocker) blocked the CORM3 stimulating effect on IK. In addition, pretreatment with SB239063 (a p38 mitogen-activated protein kinase [MAPK] blocker) and PD98059 (a p44/42 MAPK blocker) also blocked the CORM3's effect on the currents. When testing the involvement of S-nitrosylation, pretreatment of N-ethylmaleimide (a thiol-alkylating reagent) blocked CO-induced IK activation and DL-dithiothreitol (a reducing agent) reversed this effect. Pretreatment with 5,10,15,20-tetrakis(1-methylpyridinium-4-yl)-21H,23H porphyrin manganese (III) pentachloride and manganese (III) tetrakis (4-benzoic acid) porphyrin chloride (superoxide dismutase mimetics), diphenyleneiodonium chloride (an NADPH oxidase blocker), or allopurinol (a xanthine oxidase blocker) also inhibited CO-induced IK activation. These results suggest that CO enhances IK in HCFs through the nitric oxide, phosphorylation by protein kinase G, protein kinase A, and MAPK, S-nitrosylation and reduction/oxidation (redox) signaling pathways.
Protein kinase CKII (CKII) is a protein Ser/Thr kinase that is ubiquitously distributed in eukaryotic cells. Although it has been suggested that CKII plays an critical role in cell growth and proliferation, its functional significance and regulation in the cells remain poorly understood. To investigate the exact biological function of CKII, we have identified proteins that interact with the subunits of CKII using the twohybrid system. In this report, we have identified cathepsin L, a lysosomal protease, as a cellular protein capable of interacting with the ${\beta}$ subunit of CKII. Cathepsin L does not interact with the ${\alpha}$ subunit of CKII, supporting the idea that the ${\beta}$ subunit can mediate the interaction of CKII with target proteins. We have found that cathepsin L has several putative CKII phosphorylation sites including Thr-84, Ser-160, Ser-270, Thr-288, and Ser-301. These data suggest that CKII is a possible protein kinase for cathepsin L phosphorylation.
Tumor necrosis factor-related apoptosis inducing ligand (TRAIL) is a well-known inducer of apoptotic cell death in many tumor cells. 1RAIL is expressed in human placenta, and cytotrophoblast cells express 1RAIL receptors. However, the role of TRAIL in human placentas and cytotrophoblast cells is not. well understood. In this study a trophoblast cell line, JEG-3, was used as a model system to examine the effect of TRAIL. on key intracellular signaling pathways involved in the control of trophoblastic cell apoptosis and survival JEG-3 cells expressed receptors for 1RAIL, death receptor (DR) 4, DR5, decoy receptor (OcR) 1 and DeR2. Recombinant human TRAIL (rhTRAIL) did not have a cytotoxic effect determined by MIT assay and did not induce apoptotic cell death determined by poly-(ADP-ribose) polymerase cleavage assay. rhTRAIL induced a rapid and transient nuclear translocation of nuclear $factor-{\kappa}B(NF-{\kappa}B)$ determined by immunoblotting using nuclear protein extracts. rhTRAIL rapidly activated extracellular signal-regulated protein kinase (ERK) 1/2 as determined by immnoblotting for phospho-ERK1/2. However, c-Jun N-terminal kinase (JNK), p38 mitogen-activated protein kinase (p38MAPK) and Akt (protein kinase B) were not activated by rhTRAIL. The ability of 1RAIL to induce $NF-{\kappa}B$ and ERK1/2 suggests that interaction between TRAIL and its receptors may play an important role in trophoblast cell function during pregnancy.
To understand the role of protein kinase C (PKC) in the regulation of chondrogenesis, we examined proteins which are phosphorylated by PKC. Stage 23/24 chick embryo wing mesenchymes were micromass-cultured to induce chondrogenesis and cell extracts were phosphorylated in a condition that activates PKC. Several proteins including 63 and 66 kDa proteins were phosphorylated. The 66 kDa protein was phosphorylated only in the presence of phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) and phosphatidylserine CPS), and the phosphorylation was almost completely diminished by bisindolylmaleimide, a PKC inhibitor. In addition, partially purified PKC increased the phosphorylation of the 66 kDa protein. Treatment of cultures with lysophosphatidylcholine (LPC) promoted chondrogenesis and phosphorylation of 66 kDa protein, while PMA and thymeleatoxin inhibited both of the two events. Our results suggest that the 66 kDa protein is a putative substrate of PKC, and phosphorylation of the 66 kDa protein, probably by $PKC\alpha$ is required for chondrogenesis.
Protein phosphorylation is one of the major mechanisms by which eukaryotic cells transduce extracellular signals into intracellular responses. Calcium/calmodulin ($Ca^{2+}/CaM$)-dependent protein phosphorylation has been implicated in various cellular processes, yet little is known about $Ca^{2+}/CaM$-dependent protein kinases (CaMKs) in plants. From an Arabidopsis expression library screen using a horseradish peroxidase-conjugated soybean calmodulin isoform (SCaM-1) as a probe, we isolated a full-length cDNA clone that encodes AtCK (Arabidopsis thaliana calcium/calmodulin-dependent protein kinase). The predicted structure of AtCK contains a serine/threonine protein kinase catalytic domain followed by a putative calmodulin-binding domain and a putative $Ca^{2+}$-binding domain. Recombinant AtCK was expressed in E. coli and bound to calmodulin in a $Ca^{2+}$-dependent manner. The ability of CaM to bind to AtCK was confirmed by gel mobility shift and competition assays. AtCK exhibited its highest levels of autophosphorylation in the presence of 3 mM $Mn^{2+}$. The phosphorylation of myelin basic protein (MBP) by AtCK was enhanced when AtCK was under the control of calcium-bound CaM, as previously observed for other $Ca^{2+}/CaM$-dependent protein kinases. In contrast to maize and tobacco CCaMKs (calcium and $Ca^{2+}/CaM$-dependent protein kinase), increasing the concentration of calmodulin to more than $3{\mu}M$ suppressed the phosphorylation activity of AtCK. Taken together our results indicate that AtCK is a novel Arabidopsis $Ca^{2+}/CaM$-dependent protein kinase which is presumably involved in CaM-mediated signaling.
Park, Sooyeon;Kim, Jihoon;Lee, Bongsoo;Zusman, David R;Cho, Kyungyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제13권3호
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pp.400-405
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2003
A gene (hpkA), encoding a histidine protein kinase homolog, has been identified in the upstream region of the espAB operon in Myxococcus xanthus. It encodes a 333 amino acid (35,952 Da) protein with a histidine protein kinase domain in the region from amino acid 90 to 317. Null mutations in the hpkA gene caused formation of loose irregular fruiting bodies, while wild-type strains developed tight hemispherical fruiting bodies under developmental conditions. Sporulation of the hpkA mutant was delayed by at least 12 h compared to that of the wild-type. It appeared that the hpkA mutation increased the expression of the espAB operon by more than 2-fold compared with the wild-type under developmental conditions. Expression of the hpkA gene was low under vegetative conditions, but was highly induced under developmental conditions.
흰쥐 말초 T림프구에 분열유발 물질인 PMA와 Con A를 투여하여 인산화되는 단백을 확인하고, PKC 억제제인 H-7, CaM kinase 억제제인 W-7을 전처치한 후의 인산화 변동과 시간 경과에 따른 인산화 변동을 관찰하였다. 그 결과 흰쥐 T림프구를 PMA로 자극하면 5개의 인산화 단백이 새로이 나타나고 7개 단백의 인산화가 증가 되었으며, Con A자극으로는 1개의 단백이 새로이 인산화 되고 7개 단백의 인산화가 증가되었다. PMA 및 Con A자극으로 인산화 되는 13개 단백은 kinase억제제 전처치에 의하여 3군으로 각각 구분되며, H-7 전처치로 24 kDa/pI 7.1, 24/7.2, 26/6.1, 74/6.2 단백의, W-7 전처치로 14 kDa/pI5.9, 28/6.8, 29/6.9, 28/7.0, 44/6.8, 58/6.2 단백의 인산화가 현저히 감소 되었으며, 18 kDa/p1 5.4, 25/7.3 및 54/5.2단백은 두 억제제에 의해 영향을 받지 않았다. 이들 인산화 단백은 대부분 세포의 soluble fraction에서 확인되며 자극후 반응 초기에 인산화 된 후 인산화가 감소하나, 침전물에서 관찰되는 소수의 인산화 단백은 지속적인 인산화를 보였다. 한편 Kinase 억제제 처리에 의하여 구분된 3군에 속하는 단백들의 시간에 따른 인산화 양상을 관찰한 결과 각 군에 따른 인산화 양상에 상호 연관성이 없었다. 이상의 실험결과로 보아 림프구 활성의 초기 단계에서 인산화 되는 단백에는 PKC, CaM kinase 및 다른 kinase에 의해 인산화 되는 3종류의 단백이 존재하며, 3종류의 kinase의 활성은 단계적인 활성이 아니라 독립적 또는 상호 협동적으로 작용하여 림프구 활성을 유발시키는 것으로 생각된다.
Protein kinases are the most important drug targets for the treatment of numerous diseases. The involvement of protein kinase C (PKC) in many biological processes such as development, memory, cell differentiation, and proliferation has been demonstrated. PKC is recognized as an important player in carcinogenesis. Thus, a variety of PKC inhibitors have been investigated. Among them, flavonoids have been demonstrated to affect the activity of many mammalian in vitro enzyme systems. The recent investigation was performed to evaluate the inhibitory effects of hesperidin, which is a flavonoid, on the proliferation and carcinogenesis of many cancers. In this study, an efficient kinase assay based on a biochip using radio-phosphorylation was established and performed for an examination of the inhibitory effects of hesperidin on PKC activity at different concentrations of 50, 200, 500 nM. It was found that hesperidin shows inhibitory potency on PKC, and that the biochip can be used to rapidly screen kinase inhibitors resulting in the therapeutic agents.
Tamoxifen, an antiestrogen, has previously been shown to induce apoptosis in HepG2 human hepatoblastoma cells through activation of the pathways independent of estrogen receptors, i.e., intracellular $Ca^{2+}$ increase and generation of reactive oxygen species (ROS). However, the mechanism of tamoxifen to link increased intracellular $Ca^{2+}$ to ROS generation is currently unknown. Thus, in this study we investigated the possible involvement of calmodulin, a $Ca^{2+}$ activated protein, and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II in the above tamoxifen-induced events. Treatment with calmodulin antagonists (calmidazolium and trifluoroperazine) or specific inhibitors of $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II (KN-93 and KN-62) inhibited the tamoxifen-induced apoptosis in a dose-dependent manner. In addition, these agents blocked the tamoxifen-induced ROS generation in a concentration-dependent fashion, which was completely suppressed by intracellular $Ca^{2+}$ chelation. These results demonstrate for the first time that, despite of its well-known direct calmodulin-inhibitory activity, tamoxifen may generate ROS and induce apoptosis through indirect activation of calmodulin and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II in HepG2 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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