The purpose of this study is to examined the electrofusion and activation conditions for the production of porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos. In this study, immature oocytes were cultured in TCM-199 with and without hormones for 22 hours. Skin fibroblasts cells of porcine were transferred into the perivitelline space of enucleated in vitro matured oocytes. Cell fusion was performed with two different pulses that each one pulse (DC) of 1.1 kV/cm or 1.5 kV/cm for $30{\mu}sec$. After fusion subsequent activation were divided into three groups; non-treatment (control) and treatment with 2 mM 6-DMAP or $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B for 4 hours. Transferred embryos were cultured in PZM-3 (Porcine Zygote Medium-3) in $5%\;CO_2$ and 95% air at $39^{\circ}C$ for 7 day. Apoptosis-related genes (Caspase-3, BCL-2, mTOR, and MMP-2) were analyzed by immunofluorescence staining. There was no significant difference between two different electrofusion stimuli in the cleavage rate; $64.9{\pm}4.8%$ in 1.1 kV/cm and $62.7{\pm}4.0%$ in 1.5 kV/cm. However, blastocyst formation rate (%) was significantly different among three different activation groups (no treatment, 2 mM 6-DMAP or $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B) combined with electrofusion of 1.1 kV/cm. The blastocyst formation rate was $12.6{\pm}2.5$, $20.0{\pm}5.0$, and $34.9{\pm}4.3%$ in control, 2 mM 6-DMAP, and $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B, respectively. Immunofluorescence data showed that expression levels of caspase-3 in SCNT embryos undeveloped to blastocyst stage were higher than those in the blastocyst stage embryos. Expression levels of Bcl-2 in blastocyst stage embryos were higher than those in the arrested SCNT embryos. These results showed that the combination of an electric pulse (1.1 kV/cm for $30{\mu}sec$) and $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B treatment was effective for production of the porcine SCNT embryos.
Kim, So Yeon;Lin, Tao;Lee, Joo Bin;Lee, Jae Eun;Shin, Hyun Young;Jin, Dong Il
한국동물생명공학회지
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제34권2호
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pp.123-129
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2019
Many transcription factors are involved in directing the growth of porcine oocytes. The localization and expression level of a given transcription factor often differ at each stage of early embryonic growth, which spans from fertilization to the formation of the blastocyst. A hallmark of the blastocyst stage is the separation of the endodermal and mesodermal ectoderm. The embryo's medium and its effects are known to be crucial during early development compared to the other developmental stages, and thus require a lot of caution. Therefore, in many experiments, early development is divided into the quality of oocyte and cumulus cells and used in experiments. We thought that we were also heavily influenced by genetic reasons. Here, we examined the expression patterns of five key transcription factors (CDX2, OCT4, SOX2, NANOG, and E-CADHERIN) during porcine oocyte development whose expression patterns are controversial in the pig to the literature. Antibodies against these transcription factors were used to determine the expression and localization of them during the early development of pig embryos. These results indicate that the expressions of key transcription factors are generally similar in mouse and pig early developing embryos, but NANOG and SOX2 expression appears to show speciesspecific differences between pig and mouse developing embryos. This work helps us better understand how the expression patterns of transcription factors translate into developmental effects and processes, and how the expression and localization of different transcription factors can crucially impact oocyte growth and downstream developmental processes.
We investigated the microtubule dynamics, including the inheritance of donor centrosomes and the mitotic spindle assembly occurring during the first mitosis of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos in pigs. SCNT embryos were fixed 15 min and 1 h after fusion in order to assess the inheritance pattern of the donor centrosome. The distribution and dynamic of the centrosome and microtubule during the first mitotic phase of SCNT embryos were also evaluated. The frequency of embryos evidencing $\gamma$-tubulin spots (centrosome) was 93.2% in the SCNT embryos 15 min after fusion. In the majority of the SCNT embryos (61.5%), however, no centrosome was observed 1 h after fusion. The frequency of the embryos with no or abnormal mitotic spindles 20 h after fusion was 19.6%. The $\gamma$-tubulin spots were detected near the nuclei of somatic cells regardless of cell cycle phase, whereas $\gamma$-tubulin spots in the SCNT embryos were observed only during the inter-anaphase transition. These results showed that the donor centrosome is inherited into the SCNT embryos, but failed to assemble the normal mitotic spindles during first mitotic phase in some SCNT embryos.
In the last 10 years, porcine somatic cell nuclear transfer to generate transgenic pig has been performed tremendous development with introduction and knockout of many genes. However, efficiency of porcine somatic cell nuclear transfer is still low and embryo transfer (ET) is one of important step for production efficiency. In porcine ET for production of transgenic cloned pig, we can consider many of points to increase production rates. In respect of seasonality and weather, porcine ET usually is not performed in summer and winter. Cloned transgenic embryos must be transferred into reproductive tracts of recipients where embryos are located after natural fertilization with similar estrous cycle. If cloned embryos with 2~4 cell stage are transferred, they must be transferred into oviducts in periovulatory stage. Number and deposition sites of transferred cloned embryos are important. And we must compare the methods of ET between surgical and non-surgical ones in respect of production efficiency. Sow recipients after natural estrus is most preferred recipients however its cost is must be considered. Here we will review many of current studies about porcine embryo transfer to increase production efficiency of transgenic pigs and strategies for further studies.
Nuclear transfer (NT) techniques have advanced in the last years, and cloned animals have been produced by using somatic cells in several species including pig. However, it is difficult that the nuclear transfer porcine embryos development to blastocyst stage overcoming the cell block in vitro. Abnormal segregation of chromosomes in nuclear transferred embryos on genome activation stage bring about embryo degeneration, abnormal blastocyst, delayed and low embryo development. Thus, we are evaluated that the correlations of the frequency of embryo developmental rates and chromosome aberration in NT and In viかo fertilization (IVF) derived embryo. We are used for ear-skin-fibroblast cell in NT. If only karyotyping of embryonic cells are chromosomally abnormal, they may difficultly remain undetected. Then, we evaluate the chromosome aberrations, fluorescent in situ hybridization (FISH) with porcine chromosome 1 submetacentric specific DNA probe were excuted. In normal diploid cell nucleus, two hybridization signal was detected. In contrast, abnormal cell figured one or three over signals. The developmental rates of NT and IVF embryos were 55% vs 63%, 32% vs 33% and 13% vs 17% in 2 cell, 8 cell and blastocyst, respectively. When looking at the types of chromosome aberration, the detection of aneuploidy at Day 3 on the embryo culture. The percentage of chromosome aneuploidy of NT and IVF at 4-cell stage 40.0%, 31.3%, respectively. This result indicate that chromosomal abnormalities are associated with low developmental rate in porcine NT embryo. It is also suggest that abnormal porcine embryos produced by NT associated with lower implantation rate, increase abortion rate and production of abnormal fetuses.
Catalpol, an iridoid glucoside, isolated from the root of Rehmannia glutinosa Libosch. It possesses a broad range of biological and pharmacological activity including anti-tumor, anti-inflammation and anti-oxidant by acting as a free radical scavenger. Therefore, in this study, the effects of catalpol on blastocyst development, expression levels of reactive oxygen species (ROS) and apoptotic index were investigated in porcine embryos. After in vitro maturation and fertilization, porcine embryos were cultured for 6 days in porcine zygote medium 3 (PZM-3) supplemented with catalpol (0, 100, 200 and $400{\mu}M$, respectively). Blastocyst development not significantly improved in the catalpol treated group when compared with control group. Otherwise, the intracelluar levels of ROS were decreased and the numbers of apoptotic nuclei were reduced in the catalpol ($100{\mu}M$) treated porcine blastocysts (P<0.05). On the other hand, blastocyst development was significantly improved in the catalpol ($100{\mu}M$) treated group when compared with the untreated catalpol group under $H_2O_2$ ($200{\mu}M$) induced oxidative stress (P<0.05). Otherwise, the intracellular levels of ROS in catalpol ($100{\mu}M$) treated group were significantly decreased in the untreated catalpol group under $H_2O_2$ ($200{\mu}M$) induced oxidative stress (P<0.05). Furthermore, the total cell numbers of blastocysts were significantly increased (P<0.05) in the catalpol ($100{\mu}M$) treated group under $H_2O_2$ ($200{\mu}M$) induced oxidative stress, whereas numbers of apoptoic nuclei were significantly reduced (P<0.05). In conclusion, our results indicate that treatment of catalpol may have important implications for improving developmental competence and preimplantation quality of porcine embryos through its anti-oxidant and anti-apoptotic effect.
This study was conducted to establish an in vitro maturation (IVM) system by selection of efficient macromolecule in the porcine in vitro production (IVP) technology. To choose the efficient macromolecules in the development of porcine embryos, the effects of 3 kinds of macromolecules (porcine serum; PS, porcine follicular fluid; pFF, and polyvinyl alcohol; PVA) supplemented in IVM media on the maturation, cleavage, and development rates to blastocyst of parthenogenetic activation (PA) and in vitro fertilization (IVF) embryos were examined. The maturation rates of porcine oocytes in media supplemented with PS were significantly higher than those with pFF and PVA (92.4% vs. 85.4%, 77.1%; p<0.05). In the cleavage and development to blastocyst rates, supplement with PS or pFF in the IVM media was more effective than PA. However, there were no significant differences in cleavage and development to blastocyst between PS and pFF group. From the results of this study, it was demonstrated that PS was optimal macromolecule in the porcine IVM media.
Kim, Han-Su;Lee, Yu-Sub;Lee, Sang-Hee;Cheong, Hee-Tae;Park, Choon-Keun;Lee, Seunghyung;Yang, Boo-Keun
대한의생명과학회지
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제23권1호
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pp.25-29
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2017
This study was to investigate the role of antioxidants on development in arsenite exposed porcine embryos. Oocytes were collected from porcine ovary, and then matured for 44 h. Maturated oocytes were incubated with sperm for 6 h, and fertilized oocytes with sperm (embryos) cultured for 48 h. After, embryos were culture with arsenite and/or antioxidants (melatonin, silymarin, curcumin and vitamin) for 120 h. Formation of pre-morulae, morulae and blastosysts rate was measured using microscope. In results, 10, 100 and 100 nM arsenite significantly decreased morulae and blastocysts formation compared to control in pigs (P<0.05). $10{\mu}M$ silymarin and $100{\mu}M$ vitamin E increased blastocyst formation compared to 10 nM arsenite exposed embryos, but there were no significantly among the treatment, and 1 nM melatonin and $5{\mu}M$ curcumin did not influence blastocysts formation in 10 nM arsenite exposed embryos. In summary, arsenite decreased embryo development, $10{\mu}M$ silymarin, $100{\mu}M$ vitamin E, 1 nM melatonin and $5{\mu}M$ curcumin had no positive effect to blastocyst formation in arsenite exposed porcine embryos. Therefore, we suggest that little arsenite may have negative effect to embryo development, and silymarin, vitamin E, melatonin and curcumin could not rescue embryo development from damage by arsenite in pigs.
The objective of this study was to determine the mRNA expression patterns of several putative imprinted genes in in vivo and in vitro fertilized, parthenogenetic, and cloned porcine preimplantation embryos. Both maternally (Dlk1, IGF2, Peg1/Mest and Ndn) and paternally (IGF2r, H19 and Xist) imprinted genes were selected. We have used reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) to investigate gene expression patterns in the porcine embryos. IGF2 transcripts were detected in the most of embryos. In nuclear transfer (NT), Peg1/MEST transcripts showed fluctuating pattern. Dlk1 was only expressed partially from the morula and blastocyst stage of NT embryos. Ndn gene expression was started somewhat early for in vivo embryos. However, the expressions of maternally imprinted genes were similar in all types of blastocysts (NT, in vivo and in vitro fertilized, and parthenogenetic embryos). The IGF2R gene expression level was somewhat irregular and varied among samples. However, for the majority samples of all types of embryos, IGF2R expression was diminished after one- to two-cell stages and reappeared at the morulae or blastocyst stage embryos. H19 gene was only expressed early in parthenogenetic and in vivo embryos. For NT embryos, H19 was only expressed in blastocysts. Xist expression was detected in all blastocysts with the earliest being in vivo 8-cell stage embryos and the last one being NT blastocysts. These putative imprinted genes appeared to have stage specific expression patterns with a fluctuating pattern for some genes (Peg/Mest, IGF2r, H19). These results suggest that stage specific presence of imprinted genes can affect the embryo implantation and fetal development.
This study was carried out to investigate the in-vitro fertilization rate survival rate of rapidly frozen porcine immature embryos. The porcine embryos following dehydration by cryoprotectants containing sucrose were directly plunged into liquid nitrogen and thawed in 3$0^{\circ}C$ water bath. Survival rate was defined as development rate on vitro culture or FDA test. The results are summarized as follows : 1. The in vitro fertilization rate of all frozen immature oocytes(6.7~26.7%) was very low, 35.0% of unfrozen oocytes and the rate of immature oocytes was very higher than that of mature oocytes. 2. The survival rate of all frozen immature oocytes(10.3~25.0%, 13.3~30.0%) was very low, 45% of unfrozen oocytes and the rate of immature oocytes was slightly higher than that of mature oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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