We have cloned the RNA polymerase sigma-like factors from a wide range of actinomycetes by using specific primers with the polymerase chain reaction (PCR). The specific oligonucleotide primers were designed on the basis of amino acid sequences of conserved regions from HrdA, B, D of Streptomyces griseus as well as from the rpoD box of many eubacteria. The consensus sequences were from the rpoD box and helix-turn-helix motif involved in -35 recognition. The designed primers were successfully applied to amplify the DNA fragments of the hrd homolog genes from 8 different strains of actinomycetes which produce a wide variety of important antibiotics. The 480 bp of the DNA fragment was amplified from all 8 strains, and it was identified as a part of hrdA and hrdB as we designed. The deduced amino acid sequence of PCR-amplified DNA fragments were highly homologous to those of other known RNA polymerase sigma factors of S. griseus and Streptomyces aureofaciens. Therefore, this study with specifically designed primers will support rapid cloning of the RNA polymerase sigma factors which recognize different classes of promoters from actinomycetes, and it will also be helpful in understanding the relationship of promoters and sigma factors leading to heterogeneity of RNA polymerases in actinomycetes.
The mitochondrial plasmid pMLP1 from a white-rot fungus, Pleurotus ostreatus, is a double-stranded DNA containing 381 bp terminal inverted repeat (TIR) whose 5'-ends are covalently bound by terminal proteins. The plasmid contains two major open reading frames (ORFs), encoding putative DNA and RNA polymerases, and a minor ORF encoding a small, highly basic protein. To identify the DNA binding activity that recognizes the TIR region of pMLP1, gel retardation assays were performed with mitochondrial extracts. A specific protein binding to a region between 123 and 248 nt within TIR was observed. We examined whether the gene product of mORF1 bindes to this region specifically. E. coli cell extract which contains an overproduced mORF1 protein formed a complex specific to the region between 123 and 248 nt. Inclusion of mORF1 protein in the specific complex formed between P. ostreatus mitochondrial extract and TIR was confirmed by a supershift assay using polyclonal antibodies against the mORF1 protein. Our result suggest that the product of mORF1 may function as a terminal region recognition factor (TRF), recognizing an internal region in TIR.
The sense and antisense digoxigenin-labeled RNA probes of four genes, Cdc25A, Cdc25B, Sox2 and Mnb, were produced by using SP6 and T7 RNA polymerases, respectively, and in vitro transcription. Expression patterns of the four genes were detected by in situ hybridization in HH (Hamburger and Hamilton) stage 10 chick embryos. In general, expression patterns of the four genes were similar. mRNA of the four genes was mostly restricted to the entire CNS (central nervous system). All were confined to an identical region, neural tube, neural groove and caudal neural plate, corresponding to the notochord or spinal cord, but there was some distinction in specific region or in concentration, for example in somites. The overlap in expression at the same developmental stage in the CNS suggests that the four genes may be functional similar or related in CNS development. Expression patterns of the four genes support specific roles of these regulators in the developing CNS.
Genomic analysis of Thermococcus sp. NA1 revealed the presence of a 3,927-base-pair (bp) family B-type DNA polymerase gene, TNA1_pol. TNA1_pol, without its intein, was overexpressed in Escherichia coli, purified using metal affinity chromatography, and characterized. TNA1_pol activity was optimal at pH 7.5 and $75^{\circ}C$. TNA1_pol was highly thermostable, with a half-life of 3.5h at $100^{\circ}C$ and 12.5h at $95^{\circ}C$. Polymerase chain reaction parameters of TNA1_pol such as error-rate, processivity, and extension rate were measured in comparison with rTaq, Pfu, and KOD DNA polymerases. TNA1_pol averaged one incorrect bp every 4.45 kilobases (kb), and had a processivity of 150 nucleotides (nt) and an extension rate of 60 bases/s. Thus, TNA1_pol has a much faster elongation rate than Pfu DNA polymerase with 7-fold higher fidelity than that of rTaq.
The sequence of a 1795 bp restriction fragment containing the B. circulans F-2 gene for NaC1- dependent $\alpha$-amylase (CI-amylase) is reported. The probable coding region of the gene is 1005 base pairs (335 amino acida) long. The NaC1-dependent $\alpha$-amylase (el-amy) sequence shows an open reading frame (ORF) with the translated molecular weight of about 38, 006, which correspond to a molecular weight of about 35, 000 (Mi). The gene is preceded by the sequence resembling promoter for the vegetative B, subtitis RNA polymerases. These are followed by the sequences resembling a B. subtilis ribosome binding site 5 nucleotides before the first codon of the gene. Homologous regions with other amylases were found. The N-terminal sequences of the mature proteins expressed in E. eoli were identical to the N-terminal sequences which are anaIysed.
T7 RNA polymerase is a single subunit RNA polymerase able to accomplish whole transcription process without auxiliary factors. In order to study transcription elongation mechanism of phage T7 RNA polymerse, stepwise walking of RNA polymerase was established by immobilizing biotinylated DNA template with streptavidin bead, series of active and stable elongation complexes were obtained, Transcripts were radio isotope labeled at the 16thm 17th and 18th nucleotide residues so stable elongation transcription complex of T7 RNA polymerase containing 22-40 nucleotide residues could be identified. We identified the positions of stablely formed transcription elongation complexes of termination site in intrinsic hairpin-independent PTH terminator sequence through the established stepwise walking of wild-type of mutant R173C T7 RNA polymerases. The results suggest that stable elongation transcription complexes were at the site of passing PTH terminator signal by mutant R173C RNA polymerase.
Lee, Hyomin K.;Oh, Yeounsun;Hong, Juyoung;Lee, Seung Hwan;Hur, Junho K.
BMB Reports
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v.54
no.2
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pp.98-105
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2021
The clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) system is a family of DNA sequences originally discovered as a type of acquired immunity in prokaryotes such as bacteria and archaea. In many CRISPR systems, the functional ribonucleoproteins (RNPs) are composed of CRISPR protein and guide RNAs. They selectively bind and cleave specific target DNAs or RNAs, based on sequences complementary to the guide RNA. The specific targeted cleavage of the nucleic acids by CRISPR has been broadly utilized in genome editing methods. In the process of genome editing of eukaryotic cells, CRISPR-mediated DNA double-strand breaks (DSB) at specific genomic loci activate the endogenous DNA repair systems and induce mutations at the target sites with high efficiencies. Two of the major endogenous DNA repair machineries are non-homologous end joining (NHEJ) and homology-directed repair (HDR). In case of DSB, the two repair pathways operate in competition, resulting in several possible outcomes including deletions, insertions, and substitutions. Due to the inherent stochasticity of DSB-based genome editing methods, it was difficult to achieve defined single-base changes without unanticipated random mutation patterns. In order to overcome the heterogeneity in DSB-mediated genome editing, novel methods have been developed to incorporate precise single-base level changes without inducing DSB. The approaches utilized catalytically compromised CRISPR in conjunction with base-modifying enzymes and DNA polymerases, to accomplish highly efficient and precise genome editing of single and multiple bases. In this review, we introduce some of the advances in single-base level CRISPR genome editing methods and their applications.
The drug repurposing strategy has been applied to the development of emergency COVID-19 therapeutic medicines. Current drug repurposing approaches have been directed against RNA polymerases and viral proteases. Recently, we found that the inhibition of the interaction between the SARS-CoV-2 structural nucleocapsid (N) and spike (S) proteins decreased viral replication. In this study, drug repurposing candidates were screened by in silico molecular docking simulation with the SARS-CoV-2 structural N protein. In the ChEMBL database, 1994 FDA-approved drugs were selected for the in silico virtual screening against the N terminal domain (NTD) of the SARS-CoV-2 N protein. The tyrosine 109 residue in the NTD of the N protein was used as the center of the ligand binding grid for the docking simulation. In plaque forming assays performed with SARS-CoV-2 infected Vero E6 cells, atovaquone, abiraterone acetate, and digoxin exhibited a tendency to reduce the size of the viral plagues without affecting the plaque numbers. Abiraterone acetate significantly decreased the accumulation of viral particles in the cell culture supernatants in a concentration-dependent manner. In addition, abiraterone acetate significantly decreased the production of N protein and S protein in the SARS-CoV-2-infected Vero E6 cells. In conclusion, abiraterone acetate has therapeutic potential to inhibit the viral replication of SARS-CoV-2.
Hye Youn Sung;Jihye Han;Yun Ju Chae;Woong Ju;Jihee Lee Kang;Ae Kyung Park;Jung-Hyuck Ahn
BMB Reports
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v.56
no.6
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pp.347-352
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2023
The protein family of poly (ADP-ribose) polymerases (PARPs) is comprised of multifunctional nuclear enzymes. Several PARP inhibitors have been developed as new anticancer drugs to combat resistance to chemotherapy. Herein, we characterized PARP4 mRNA expression profiles in cisplatin-sensitive and cisplatin-resistant ovarian cancer cell lines. PARP4 mRNA expression was significantly upregulated in cisplatin-resistant ovarian cancer cell lines, and this upregulation was associated with the hypomethylation of specific cytosine-phosphate-guanine (CpG) sites (cg18582260 and cg17117459) on its promoter. Reduced PARP4 expression was restored by treating cisplatin-sensitive cell lines with a demethylation agent, implicating the epigenetic regulation of PARP4 expression by promoter methylation. Depletion of PARP4 expression in cisplatin-resistant cell lines reduced cisplatin chemoresistance and promoted cisplatin-induced DNA fragmentation. The differential mRNA expression and DNA methylation status at specific PARP4 promoter CpG sites (cg18582260 and cg17117459) according to cisplatin responses, was further validated in primary ovarian tumor tissues. The results showed significantly increased PARP4 mRNA expressions and decreased DNA methylation levels at specific PARP4 promoter CpG sites (cg18582260 and cg17117459) in cisplatin-resistant patients. Additionally, the DNA methylation status at cg18582260 CpG sites in ovarian tumor tissues showed fairly clear discrimination between cisplatin-resistant patients and cisplatin-sensitive patients, with high accuracy (area under the curve = 0.86, P = 0.003845). Our findings suggest that the DNA methylation status of PARP4 at the specific promoter site (cg18582260) may be a useful diagnostic biomarker for predicting the response to cisplatin in ovarian cancer patients.
Eukaryotic gene expression is an important process, which is initiated by several transcription factors and RNA polymerases that occupy the promoter region of genomic DNA. Although there are many experiments to identify the promoter region in a gene, it is time and labor consuming to finalize it. In this study, we utilized bioinformatic programs, including Ensembl, NCBI, and CpG plots, to identify the cloning promoter region in SETDB1 genomic DNA. We performed PCR amplification to obtain the SETDB1 promoter on an approximately 2 kb region upstream from the TSS named SETDB1-P1. The PCR product was ligated with TA cloning vectors, and we confirmed the insert size using restriction enzyme digestion. Sequentially, the insert was subcloned into a pGL3-luc vector to produce pGL3-SETDB1- P1-luc and then confirmed by DNA sequencing. We also obtained a fragmented PCR product called P2 and P3 and performed a luciferase assay using pGL3-SETDB1-P1-luc transfection. We found that several anticancer drugs, including taxol, 4-FU, and doxorubicin, decreased the promoter activity of SETDB1. We obtained consistent data on the regulation of SETDB1 gene expression after anticancer drug treatment using Western blot analysis and RT-PCR. Our results suggest that promoter cloning of the human SETDB1 gene utilizing bioinformatics is a very useful and timesaving approach to study gene expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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