Post-translational modifications of the nucleocapsid protein of bovine coronavirus (Quebec strain) were investigated. Coronavirions were radiolabelled in vivo with inorganic $[^{32}P]$orthophosphate and analysed by SDS-PAGE, followed by autoradiography. A single polypeptide with a migration rate of 55 KDa was identified by metabolic phosphate labelling, demonstrating that the nucleocapsid protein of bovine coronavirus was a phosphoprotein. A gene encoding the nucleocapsid protein was inserted immediately downstream from the polyhedrin promoter of Autographa californica nuclear polyhedrosis baculovirus. Spodoptera frugiperda cells infected with this recombinant baculovirus synthesized a 55 KDa polypeptide, as demonstrated by immunoprecipitation with anti-nucleocapsid monoclonal antibody. The recombinant nucleocapsid protein synthesized in Spodoptera cells could also be labelled by $[^{32}P]$orthophosphate. Phosphoamino acid analysis showed that both serine and threonine residues were phosphorylated in authentic, as well as in recombinant nucleocapsid proteins, with a relative phosphorylation ratio of 7:3. Our studies demonstrated that the nucleocapsid protein of bovine coronavirus was a serine and threonine-phosphorylated protein and that Spodoptera insect cells were able to properly phosphorylate the relevant foreign proteins.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제21권1호
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pp.117-125
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2010
The tropical tasar silkworms, Antheraea mylitta (D) produce famous silk 'Kosa' in central part of India. Due to outdoor rearing it became susceptible to viral infection including cytoplasmic polyhedrosis virus (CPV). The common mode of entry of cytoplasmic polyhedrosis virus is per os and cause gresserie disease to the larvae. Histopathological studies elucidated the insect CPV virus produces infective polyhedral inclusion bodies (PIBs) in the midgut cell cytoplasm of virus infected fifth instar larvae. The PIBs multiply enormously in the cytoplasm without invading the nucleus. Ultrastructural studies confirmed the pathological effects of CPV on in midgut cell cytoplasm. The multiplication of polyhedral inclusion bodies took place into the vacuoles and form virogenic stromata in the cytoplasm of cells. However, the encapsulations of polyhedral inclusion bodies into the polyhedrin protein occurred and polyhedra were released into the lumen. At the late stage of infection, cells showed the regressed cytoplasmic organelles with large vacuoles and elongated mitochondria. Hence, the horizontal transmission of CPV causing the midgut cells disintegration in the tasar silkworm, Antheraea mylitta (D) confirmed during infection.
누에 핵다각체병 바이러스의 gp64 프로모터를 이용한 transient 발현 벡터를 제작하기 위해서 gp64 유전자의 구조를 분석하였다. Southern blotting 분석을 통해 genome DNA에서 gp64 유전자를 탐색하기 gp64 구조유전자를 포함하는 2,277 nucleotide의 염기를 분석하였으며 gp64의 early, late 프로모터 발현을 조절하는 인자들을 확인하였다. gp64프로모터를 이용한 transient 발현 벡터를 제작하고 외래유전자로써 lacZ 유전자를 Bm5 세포주에서 transient 발현시켰다. 세포주 내에 도입된 플라스미드 DNA의 안정성을 확인하였으며, gp64 프로모터의 외래유전자 발현성 여부를 조사하기 위하여 gp64 프로모터 하에 laxZ 유전자를 가지는 재조합 바이러스를 제작하고 $\beta$-galactosidase in 냐셔 staining을 수행한 결과 전체적인 발현량은 매우 약한 것으로 판단되었다. BmNPV-K1의 gp64 프로모터를 이용한 벡터는 더욱 민감한 표지 유전자를 발현시켜 재조합 바이러스의 분리에 이용하거나 숙주세포에 독성을 보이는 유전자 산물의 소량 발현에 더욱 유용할 것으로 판단된다.
아시아계통의 매미나방(Lymantria dispar asiatica) (나비목: 태극나방과)은 국내 토착해충으로서 지역에 따라 돌발적으로 대발생한 사례가 있으며, 다양한 수목 및 농작물에 피해를 끼치는 광식성 해충이다. 특히 2019년 이후로 경기도, 충청도, 경북 북부지역에서 대발생하여 산림 및 인근지역 도심에 발생하여 산림 및 도시민들의 정서적 피해를 끼치기도 했다. 본 연구에서는 2020-2021년 경북 예천지역에서 알집을 채집하여 사육한 결과, 매미나방 핵다각체병바이러스(LdMNPV) 감염에 의해 79.65% (321/403마리)는 사육중 사망하였다. 염기서열 분석은 2021년 국내 12 지역에서 매미나방 유충을 36마리를 조사한 결과, LdMNPV의 late expression factor-8 (lef-8), polyhedrin (polh) 유전자의 종내변이율이 0.80%, 0.86%로 확인됐다. NCBI database 자료와 비교 분석한 결과 일본의 LdMNPV와 가장 유사했으며, 터키의 LdMNPV와 가장 큰 차이를 나타냈다. 본 조사를 통하여 LdMNPV는 높은 감염율을 나타냈고 매미나방 중요한 개체군 조절인자중 한가지로 작용할 것으로 판단된다.
This study addresses the susceptibility of Spodoptera frugiperda (Sf9 and Sf21), Trichoplusia ni (Hi5), and S. exigua (Se301) cells to the Bombyx mori nucleopolyhedrovirus (BmNPV). Although these cells have classically been considered nonpermissive to BmNPV, the cytopathic effect, an increase in viral yield, and viral DNA synthesis by BmNPV were observed in Sf9, Sf21, and Hi5 cells, but not in Se301 cells. Very late gene expression by BmNPV in these cell lines was also detected via ${\beta}-galactosidase$ expression under the control of the polyhedrin promoter. Sf9 cells were most susceptible to BmNPV in all respects, followed by Sf21 and Hi5 cells in decreasing order, while the Se301 cells evidenced no distinct viral replication. This particular difference in viral susceptibility in each of the cell lines can be utilized for our understanding of the mechanisms underlying the host specificity of NPVs.
In order to express the FLP recombinase in B. mori cultured cell line, BmN-4, transient expression system using a heat shock protein gene (hsp70) promoter of Dorosophilla melnogaster was constructed. This vector was designated as pHsSV. Activity strength of the hsp70 promoter was compared with that of immediate early gene (IE-1) and polyhedrin gene of BmNPV employing the E. coli $\beta$-galactosidase gene as a reporter gene. The result showed that the pHs $\beta$-gal plasmid vector expressed the $\beta$-galactosidase at 2nd and 3rd day after the transfer of plasmid DNA into BmN-4 cells, which was similar to that of pIE1 $\beta$-gal vector, but different from that of a recombinant virus, vBm $\beta$-gal. For the construction of FLP recombinase transient expression vector, the FLP recombinase gene was cloned by polymerase chain reaction technique. To express the FLP recombinase, this gene was inserted into pHsSV plasmid vector, under the control of the hsp70 promotor, and tranfected in BmN-4 cells. The expressed FLP recombinase was estimated at 44kDa on a 12.5% SDS-PAGE.
To investigate the expression efficiency of new transfer vector of Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV), Escherichia coli lacZ gene was inserted into new transfer vector pBmKSK1, under the control of polyhedrin promoter and expressed in BmN-4 cells and larvae of silkworm, Bombyx mori. The recombinant virus containing lacZ gene was isolated from BmN-4 cells coinfected with transfer vectro pBmKSK1-LacZ and wild type BmNPV genome, and analysed by Southern blotting. The expression of ${\beta}$-galactosidase was characterized by SDS-PAGE, Western blotting and ${\beta}$-galactosidase activity assay. The results showed that the level of expression in silkworm larvae was higher than that of BmN-4 cells.
The baculovirus egt gene encodes an ecdysteroid UDP-glucosyltransferase(EGT) which catalyzes the transfer of glucose from UDP-glucose to the insect moltion hormone ecdysteroid resulting in a functionally inactive ecdysteroid. In baculovirus-infected insect larvae, EGT has been shown block molting and pupation. In this study, we compared the development of 4th and 5th instar silkworm, Bombyx mori, larvae injected with either wild-type bombyx mori nucleopolyhedrovirus (BmNPV) or a mutant BmNPV(BmEGTZ) in which the egt gene was disrupted by the insertion of a lacZ gene cassette. Larvae injected with BmEGTZ died roughly 12 h more rapidly compared to indentical larvae infected with BmNPV. In addition, BmEGTZ- infected larvae prematurely stopped feeding and gain less weight compared to BmNPV-infected larvae. In order to investigate why BmEGTZ-infected larvae died more rapidly than BmNPV-infected larvae, the array of hemolymph proteins in BmEGTZ-or BmNPV-infected larvae were analyzed by SDS-PAGE. The hemolymph of BmEGTZ-infected larvae showed virus-specific proteins, including polyhedrin, about 12 h earlier than the hemolymph of BmNPV-infected larvae
An Escherichia coli strain with high phytase activity was screened from pig excreta. The phytase gene, appA, was amplified by PCR technique. To obtain large amounts of appA phytase, the appA gene was subcloned into the baculovirus transfer vector pVL1393 under the control of the Polyhedrin promoter. The recombinant baculovirus harboring the appA gene was obtained after co-transfection and screening. The early $5^{th}$ instar larvae of silkworm were infected with the recombinant virus. Using this system, the appA phytase was overproduced up to 7,710 U per ml hemolymph. SDS-PAGE analysis revealed the baculovirus-derived appA phytase to be approximately 47 kDa in size. The optimal temperature and pH of the expressed phytase were $60^{\circ}C$ and pH 4.5, respectively. The enzymatic activity was increased by the presence of 1 mM $Ca^{2+}$, 1 mM $Mn^{2+}$, or $0.02\%$ Triton X-100.
African swine fever (ASF) is an infectious disease of domestic and wild pigs for which there is no vaccine in the world. A proper surveillance of viral activity and a timely response to ASF outbreaks depend upon the rapid diagnosis of ASF viral infection. Internationally prescribed enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is a fast, sensitive test routinely used in the diagnosis of the ASF. However, inactivated whole ASF virus antigen used in this test is a tedious to prepare and has a risk of outside exposure of infectious virus by laboratory accident during the preparation. An ASF virus noninfectious recombinant antigen is a safe and easily produced alternative antigen for use in diagnostic assay. We have cloned the ORF O61R gene of the ASF virus to generate a recombinant baculovirus producing the p12 protein in insect cells under control of the polyhedrin promoter as non-fusion protein. When used in an indirect ELISA, the p12 antigen showed reactivity with all known ASF positive pig sera but not with negative pig sera. Our results indicated that the p12 protein would be one of alternative antigens for diagnosis of the ASF.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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