As sessile organisms, plants must be able to adapt to the environment. Plants respond to the environment by adjusting their growth and development, which is mediated by sophisticated signaling networks that integrate multiple environmental and endogenous signals. Recently, increasing evidence has shown that a bHLH transcription factor PIF4 plays a major role in the multiple signal integration for plant growth regulation. PIF4 is a positive regulator in cell elongation and its activity is regulated by various environmental signals, including light and temperature, and hormonal signals, including auxin, gibberellic acid and brassinosteroid, both transcriptionally and post-translationally. Moreover, recent studies have shown that the circadian clock and metabolic status regulate endogenous PIF4 level. The PIF4 transcription factor cooperatively regulates the target genes involved in cell elongation with hormone-regulated transcription factors. Therefore, PIF4 is a key integrator of multiple signaling pathways, which optimizes growth in the environment. This review will discuss our current understanding of the PIF4-mediated signaling networks that control plant growth.
Plant growth and development are coordinately orchestrated by environmental cues and phytohormones. Light acts as a key environmental factor for fundamental plant growth and physiology through photosensory phytochromes and underlying molecular mechanisms. Although phytochromes are known to possess serine/threonine protein kinase activities, whether they trigger a signal transduction pathway via an intracellular protein kinase network remains unknown. In analyses of mitogen-activated protein kinase kinase (MAPKK, also called MKK) mutants, the mkk3 mutant has shown both a hypersensitive response in plant hormone gibberellin (GA) and a less sensitive response in red light signaling. Surprisingly, light-induced MAPK activation in wild-type (WT) seedlings and constitutive MAPK phosphorylation in dark-grown mkk3 mutant seedlings have also been found, respectively. Therefore, this study suggests that MKK3 acts in negative regulation in darkness and in light-induced MAPK activation during dark-light transition.
Sweet potato has low regeneration capacity, which is a serious obstacle for the fruitful production of transgenic plants. Simple and rapid regeneration method from storage root explants of purple sweet potato (Ipomoea batatas L.) was investigated. The embryogenic callus was observed from 4 cultivars and its highest rate was induced at 1 μM 2,4-D after 5 weeks of culture. Result revealed that a low concentration of 2,4-D and low light intensity was important factors for embryogenic callus formation. After subculture on medium with 5 μM ABA for 4 days, subsequently, occurred the regeneration of shoots within 4 weeks when these embryogenic callus was transferred onto the MS hormone free medium. Regenerated shoots were developed into platelets, and grown normal plants in the greenhouse. We developed a simple and quickly protocol to regenerate plantlets in storage root explants of purple sweet potato. This regeneration system will facilitate tissue culture and gene transfer research of purple sweet potato.
In order to investigate the effects of plant hormones on the quantitative changes in mRNA of maize (Zea mays L.) rbcL, we used GA3, IAA, ABA and BAP. GA3 at the concentration of 10-4M resulted in decrease in rbcL gene transcript to 62%. IAA decreased the amount of rbcL transcript to about 70% at all the hormone concentrations tested. ABA did not cause a noticeable change in the amount of rbcL transcript, but BAP increased the amount of rbcL transcript to 153% at 10-8M and 123% at 10-5M, respectively. Thus, it appears that BAP is related to the increase in the amount of rbcL transcript by light.
Jo, Man-Hyun;Ham, In-Ki;Song, Nam-Hyun;Woo, In-Shik
Plant Resources
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제3권2호
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pp.131-134
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2000
Embryogenic callus cultures of Korean native Seosanjong of ginger(Zingiber of officinale Rosc.) were induced through stem explants taken from in vitro shoot-tip cultures. Among the four concentrations of 2,4-D tested in Murashige and Skoog medium, 0.5 and 1 mg/L of 2,4-D was most effective in inducing embryogenic callus. Leaf explants did not express any new morphogenetic response in all 2,4-D concentrations tested. Plantlets transferred to hormone-free MS medium were developed and successfully acclimatized under greenhouse.
The effect of carbenicillin on the dedifferentiation and the regeneration efficiency of plant tissues of horseradish(Armoracia rusticana) was evaluated, Inhibition effect for callus initiation was observed when leaf blade, root and petiole segments were grown on MS medium containing 500 mg/L to 2000 mg/L carbenicillin and 0.5 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D). The regeneration of horseradish shoots from leaf blade, root and petiole explants were decreased as the addition of carbenicillin increased from 1000 mg/L to 2000 mg/L in MS medium containing 0.5 mg/L of 6-benzylaminopurine (BAP) or kinetin. Especially, 500 mg/L carbenicillin treatment significantly inhibited shoot induction when leaf blade explants were grown on hormone-free MS medium. It was suggested that the toxic effects of combinations of carbenicillin and 2,4-D may be due to high auxin activity levels.
식물생장촉진미생물(PGPR)은 농업생산성에 전세계적으로 매우 중요한 기작과 기능을 하는 것으로 알려져 있다. 이들 미생물들은 식물생장조절, 생물비료, 식물의 병 저항 및 방제 등 다양한 기작으로 식물생장을 촉진하면서 유용하게 이용되고 있다, 본 논문에서는 토양으로부터 네 종류의 서로 다른 Pantoea 종을 분리하여 식물생장 특성을 규명하고자 하였다. 16S rDNA 유전자의 분석에 의하면, 이들은 각각 Pantoea ananatis, Pantoea citrea, Pantoea dispersa, Pantoea vagans으로 확인되었고 각각 Pa1, Pc1, Pd1, Pv1으로 명명하였다. 분리된 모든 종들은 pH 5정도의 수치를 보이는 접종 1일차에 매우 높은 인산 분해 활성을 보였으며 배지의 pH 감소와 높은 상관성을 보였다. 또한 네 종류의 모든 Pa1, Pc1, Pd1, Pv1종은 각각 85.3±16.3 μg/ml, 183.9±16.8 μg/ml, 28.8±17.3 μg/ml, 114.1±16.5 μg/ml 농도의 매우 높은 인돌 아세트산 생성활성을 보였다. 지베렐린 생성의 경우 Pa1, Pc1와 Pd1는 각각 331.1±19.2 μg/ml, 288.5±16.8 μg/ml, 309.2±18.2 μg/ml 농도로 높은 활성을 보였지만, Pv1는 10.2±11.5 μg/ml 농도의 비교적 낮은 생성활성을 보였다. 또한 모든 분리 종들은 어린 상추식물의 경우 생체량의 32~37%, 상층부길이의 10~15% 생장을 촉진하는 활성을 보이므로 이들 분리된 미생물을 잠재적으로 식물생장촉진을 위한 미생물비료제재로 사용할 수 있다고 생각된다.
식물의 탈리(abscission)는 기관 혹은 조직이 분리되는 현상으로, 필요 없어진 기관을 떨어트리거나 종자와 과실을 널리 퍼트리기 위해 자연이 선택해온 전략이다. 하지만 농업적 관점에서 이러한 종자나 과실의 탈리는 작물의 생산성과 상품의 품질을 떨어트리는 주요 요인이 될 수 있다. 때문에 전통 농업의 작물화 과정을 통해 탈리가 저해된 돌연변이들이 선택되어 교배되면서 자연적으로 익은 과일이나 종자를 떨어트리지 않는 현대의 벼, 토마토, 유채, 콩과 같은 주요 작물 품종을 얻을 수 있었다. 한 세기 가량 진행된 quantitative trait loci (QTLs) 연구 및 애기장대에서의 유전학적・분자생물학적 연구를 통해 탈리 활성에 관여하는 다양한 세포생물학적 메커니즘과 신호전달 경로 및 전사조절인자가 규명되었다. 뿐만 아니라, 식물 생장에 관여하는 다양한 호르몬 신호전달 역시 탈리 활성을 조절하는 데에 중요함이 밝혀졌으며, 이들 호르몬과 신호전달에 작용하는 여러 케미칼 처리제가 개발되어 작물의 수확량을 증대시키는데 사용되어왔다. 본 리뷰에선 최근까지 밝혀진 탈리 활성에 관여하는 신호전달과 주요 조절인자에 대해 소개하고, smart farm 시대의 미래농업에 적용되어야할 작물의 탈리 조절 메커니즘 연구가 무엇일지, 또 이를 위해 모델시스템에서 앞으로 더 연구되어야 할 것이 무엇인지에 대해 논의하고자 한다.
The interplay of plant hormones is one of the essential mechanisms for plant growth and development. A recent study reported that Brassinosteroids (BR) and ABSCISIC ACID (ABA) interact antagonistically in early seedling developments through the BR-mediated epigenetic repression of ABSCISIC ACID-INSENSITIVE 3 (ABI3). However, the other physiological roles of the BR-mediated regulation of ABI3 and ABA responses beyond early seedling developments remain largely unknown. Here, we showed that the activation of BR signaling by high temperatures promotes flowering time through the suppression of ABI3 expressions. Elevated ambient temperature induced early flowering in wild type Col-0 plants, but not in BR-defective bri1-116 mutant plants. Conversely, a hyper BR biosynthetic dwf4-D mutant displayed more sensitive thermomorphic long shoot elongation and early flowering. Both expression patterns and physiological responses supported the biological roles of ABI3 in the regulation of floral transition and reproduction under high temperature conditions. Finally, we confirmed that the lowered expressions of the transcript and protein levels of ABI3 brought on by elevated temperature were correlated with warmth-induced early flowering phenotypes. In conclusion, our data suggest that the BR- and warmth-mediated regulation of ABI3 are important in thermomorphic reproductive phase transitions in plants.
The plant hormone auxin regulates the overall metabolic processes essential for plant growth and development. Auxin signaling is mediated by early auxin response genes, which are classified into three major families: AUXIN/INDOLE ACETIC ACID (AUX/IAA), GRETCHEN HAGEN3 (GH3) and SMALL AUIN UP RNA (SAUR). The SAUR gene family is the largest family among early auxin response genes and encodes the small and highly unstable gene products. The functional roles of SAUR genes have remained unclear for many years. The traditional genetic and molecular studies on the SAUR functions have been hampered by their likely genetic redundancy and tandem arrays of highly related genes in the plant genome, together with the molecular characteristics of SAUR. However, recent studies have suggested possible roles of SAUR in a variety of tissues and developmental stages in accordance with the novel approaches such as gain-of-function and RNA silencing techniques. In this review, the recent research progress on the functional roles and regulatory mechanisms of SAUR and a set of possible future works are discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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