The induced resistance of cucumber leaves treated with oligochitosan to the infection of the cucumber powdery mildew, Sphaerotheca fuliginea, was investigated using transmission electron microscopy. The results showed that when the plants were treated with oligochitosan and challenged with inoculum, a significant decrease of the disease occurred. The mycelial development in the treated leaves was markedly inhibited. The cytoplasm of the powdery mildew mycelium was aggregated, with its organelles disintegrated and the cytoplasm collapsed. The protoplasm in haustoria became electron-dense. Haustoria became malformed, their organelles disintegrated, the hausterial wall thickened and eventually the whole complex necrotized. The host cells produced defence structures and materials associated with infection and a hypersensitive response. The host cell wall was thickened and deeply stained; several layers of papilla structure were produced under the cell wall; dark materials were deposited between the cell wall and plasmalemma; extrahaustorial plasmalemma was deeply stained and extrahaustorial matrix appositions had large deposits of electron-dense material; the cytoplasm was disordered, host organelles disintegrated and eventually the whole host cell disintegrated and necrotized.
Linum album accumulates anti-tumor podophyllotoxin (PTOX) and its related lignans, which were originally isolated from an endangered species Podophyllum. In the present study, we examined the effects of five fungal extracts on the production of lignans in L. album cell cultures. Fusarium graminearum extract induced the highest increase of PTOX [$143{\mu}g\;g^{-1}$ dry weight (DW) of the L. album cell culture], while Rhizopus stolonifer extract enhanced the accumulation of lariciresinol up to $364{\mu}g\;g^{-1}$ DW, instead of PTOX. Typical elicitors, such as chitin, chitosan, or methyl jasmonate (MeJA), were shown to be less effective in lignan production in L. album cell cultures. These results verified the advantages of fungal extracts to increase lignan production in L. album cell culture, and suggested potential on-demand metabolic engineering of lignan biosynthesis using differential fungal extracts.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1995.06a
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pp.67-78
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1995
Monoclonal antibodies (MoAbs) are a highly diversified class of proteins with major research and commercial applications such as diagnostics and therapeutics. Currently, the dominant method for producing MoAbs is through the hybridoma technique. However, this technique is slow, tedious, labor intensive, and expensive. The production of MoAbs in cultured transgenic plant cells can offer some advantages over that in the over that in the mammalian systems. The media to cultivate plant cells are well defined and inexpensive. Contamination by bacteria or fungi is easily monitored in plant tissue cultures. Furthermore, these contaminants are usually not potent pathogens to human beings. In our interdisciplinary research efforts, heavy chain monoclonal antibody (HC MAb) was inserted into Ti plasmid vector and transferred into A. tumefaciens for the transformation in tobacco cells. It was found that 76% of the transformants produced HC MAb. The presence of HC MAb in the cell membrane fraction indicated that the signal peptide was functional and efficient. The change of the HC MAb concentration during a batch culture followed a similar trend as dry cell concentration, indicating that the production of HC MAb was growth related. The long-term repeated subcultures of 11 cell lines showed that there was no obvious trend of neither the decrease nor the increase of the productivity with the repeated subcultures.
The walls of all higher plants are organized as a cellulosic, fibrillar phase embedded in a matrix phase composed of non-cellulosic polysaccharides, some proteins and, in most secondary walls, lignin. At the effective utilization of plant biomass, qualitative and quantitative analyses of plant cell walls are essential. Structural features of individual components are being clarified using newly developed equipments and techniques. However, "empirical" procedures to elucidate plant cell walls, which are not due to scientific definition of components, are still applied in some fields. These procedures may give misunderstanding for the effective utilization of plant biomass. In addition, interesting the investigation of wall organization is moving towards not only qualitatively characterisation, but also quantitation of the associations between wall components. These involve polysaccharide-polysaccharide and polysaccharide-lignin cross-links. Investigation of the associations is being done in order to understand the chemical structure, organization and biosynthesis of the cell wall and physiology of the plants. Procedures for qualitative and quantitative analyses based on the definition of cell wall components are reviewed focussing in nutritional elucidation of forage grasses by ruminant microorganisms.
Chattopadhyaya, Banani;Banerjee, Joydeep;Basu, Asitava;Sen, Soumitra K.;Maiti, Mrinal K.
Plant Biotechnology Reports
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v.4
no.2
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pp.173-178
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2010
An efficient protocol for shoot regeneration was developed for sesame (Sesamum indicum L.) internodes using the transverse thin cell layer (tTCL) culture method. The frequency of shoot regeneration and the number of adventitious buds produced from regenerated shoots depend significantly on explant age, thickness of the tTCL sections, and the phytohormones supplemented to the culture medium. A combination of 6-benzyladenine (2.0 $mg\;l^{-1}$) and a-naphthaleneacetic acid (0.5 $mg\;l^{-1}$) was found to be the best phytohormone combination for shoot bud induction, with the maximum number of shoots obtained when the tTCL sections were 0.5-1.0 mm thick and derived from 4- to 6-week-old seedlings of sesame. Well-developed shoots were rooted on MS medium without phytohormones, and 80% of the regenerated plantlets were successfully established in soil.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2004.10a
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pp.65-67
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2004
During initial interactions of bacteria with their host plants, most plants recognize the bacterial infections and repel the pathogen by plant defense mechanism. The most active plant defense mechanism is the hypersensitive response (HR) which is the localized induced cell death in the plant at the site of infection by a pathogen. A primary locus induced in gram-negative phytopathogenic bacteria during this initial interaction is the Hrp locus. The Hrp locus is composed of a cluster of genes that encodes the bacteral Type 111 machinery that is involved in the secretion and translocation of effector proteins to the plant cell. DNA sequence analysis of hrp gene in phytopathogenic bacteria has revealed a Hrp pathogenicity is]and (PAI) with a tripartite mosaic structure. For many gram-negative pathogenic bacteria, colonization of the host's tissue depends on the type III protein secretion system (TTSS) which secrets and translocates effector proteins into the host cell. Effectors can be divided into several groups including broad host range effectors, host specific effectors, disease specific effectors, and effectors inhibit host defenses. The role of effectors carrying LRR domain in plant resistance is very elusive since most known plant resistance gene carry LRR domain. Host specific effectors such as several avr gene products are involved in the determination of the host specificity. Almost all the phytopathogenic Xanthomonas spp. carry avrBs1, avrBs2, and avrBs3 homologs. Some strains of X. oryzae pv. oryzae carry more than 10 copies of avrBs3 homologs. However, the functions of all those avr genes in host specificity are not characterized well.;
Ralstonia solanacearum (Rso) is a causal agent of bacterial wilt in Solanaceae crops worldwide including Republic of Korea. Rso virulence predominantly relies on type III secreted effectors (T3Es). However, only a handful of Rso T3Es have been characterized. In this study, we investigated subcellular localization of and manipulation of plant immunity by 8 Rso T3Es predicted to harbor a nuclear localization signal (NLS). While 2 of these T3Es elicited cell death in both Nicotiana benthamiana and N. tabacum, only one was dependent on suppressor of G2 allele of skp1 (SGT1), a molecular chaperone of nucleotide-binding and leucine-rich repeat immune receptors. We also identified T3Es that differentially regulate flg22-induced reactive oxygen species production and gene expression. Interestingly, several of the NLS-containing T3Es translationally fused with yellow fluorescent protein accumulated in subcellular compartments other than the cell nucleus. Our findings bring new clues to decipher Rso T3E function in planta.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.77.1-77
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2003
We have isolated a full-length cDNA clone, CaCDPK4 encoding a typical calcium-dependent protein kinase (CDPK) from hot pepper cDNA library. Genomic southern blot analysis showed that it belongs to a multigene family, but represents a single copy gone in hot pepper genome. RNA expression pattern of this gene revealed that it is induced by infiltration of Xanthomonas axonopodis pv. glycines Bra into hot pepper leaves but not by water deficit stress. However, high salt treatment of NaCl (0.4 M) solution to hot pepper plants strongly induced CaCDPK4 gene. In addition, this gene is weakly responsive to the exogenous application of salicylic acid or ethephon. Biochemical study of the GST-CaCDPK4 recominant protein showed that it autophosphorylates in vitro and the presence of EGTA, a calcium chelater, eliminates the kinase activity of the recombinant protein. As a way to identify the in vivo function of CaCDPK4 in plants, VIGS (Virus-Induced Gene Silencing) was employed. Agrobacterium-mediated TRV silencing construct containing the kinase and calmodulin domain of CaCDPK4 resulted in cell death of Nicotiana benthamiana plants. A highly homologous H benthamiana CDPK gene, NbCDPK5, to CaCDPK4 was cloned from N. benthamiana cDNA library. VIGS of NbCDPK5 also resulted in cell death. The molecular characterization of this cell death phenotype is being under investigation.
The establishment of cell suspension culture and plant regeneration of the halophytic Leymus chinensis (Trin.) are described in this study for the first time. Callus induction solid medium containing Murashige and Shoog (MS) basic salt, $2.0\;mg\;l^{-1}$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and $5.0\;mg\;l^{-1}$ L-glutamic acid with $30.0\;g\;l^{-1}$ sucrose and $4.0\;g\;l^{-1}$ gelrite for solidification induced the highest rate of cell division in Type 1 callus among calli of various types. Liquid medium with the same hormone distribution was therefore, used for cell suspension culture from Type 1 callus. Over a 30 d suspension culture at 100 rpm, great amounts of biomass were accumulated, with 71.07% average daily increment and 22.32-fold total fresh weight increment. Comparison of before and after suspension culture, the distribution of different size callus pieces and the maintenance of callus type were basically unaltered, but a slight increase in relative water contents was observed. To induce the potential of plant regeneration, the directly transferring on plant regeneration solid medium containing MS basic salt, $0.2\;mg\;l^{-1}$$\alpha$-naphthalene acetic acid (NAA), $2.0\;mg\;l^{-1}$ kinetin (Kn), and $2.0\;g\;l^{-1}$ casamino acid and indirectly transferring were simultaneously performed. Even now growth rates of suspension-derived callus on solid medium were approximately half of those of Type 1 callus, but faster somatic embryogenesis was observed. Rooting of all regenerated shoots was successfully performed on half-strength MS medium. All plants appeared phenotypically normal.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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