20 bacterial strains capable of growing on phenol minimal medium were isolated from soil and wastewater by the enrichment culture technique, and among them, one isolate which was the best in the cell growth was selected and identified as Bacillus sp. SH3 by its characteristics. Strain SH3 could grow with phenol as the sole carbon source up to 15 mM, but did not grow in minimal medium containing above 20 mM of phenol. The optimal conditions of temperature and initial pH for growth and phenol degradation were 30$^{\circ}$C and 7.5, respectively. This strain could grow on various aromatic compounds such as catechol, protocatechuic acid, gentisic acid, o-, m-, p-cresol, benzoic acid, p-hydroxybenzoic acid, anthranilic acid, phenyl acetate and pentachlorophenol, and the growth-limiting log P value of strain SH3 on organic solvents was 3.1. In batch culture, strain SH3 degraded 97% of 10 mM phenol in 48 hours. In continuous culture under the conditions of 20 mM of influent phenol concentration and 0.050 hr$^{-1}$ of dilution rate, the treatment rate of phenol was 94%.
Twelve bacterial strains capable of growing on phenol minimal medium were isolated from iron foundry activated sludge by enrichment culture, and amount them, one isolate which was the best in cell growth and phenol degradation was selected and identified as Acinetobacter junii POH. The optimal temperature, initial pH and phenol concentration in the above medium were 3$0^{\circ}C$, 7.5 and 1000 ppm, respectively. Cell growth of Acinetobacter junii POH dramatically increased 20 hrs cultivation-time and reached a almost stationary phsae 40 hrs cultivation-time then phenol was degraded about 98%. Cell growth was inhibited y phenol at concentrations over 1500 ppm. The isolate was resistant to several antibiotics as well as various heavy metal ions. The growth-limiting log P value of Acinetobacter junii POH on organic solvents was 2.9 in the LB medium. Therefore, it is suggested that Acinetobacter junii POH could be effectively used for the biological treatment of wastewater containing the presence of heavy metal ions and organic solvents.
In the screening of phenol-degrading bacteria, a strain showing good growth in media containing phenol was isolated by using enrichment culture from various sample and identified as genus Klebsiella pneumoniae. The optimal temperature and pH for cell growth of Klebsiella pneumoniae was $35^{\circ}C$ and 8.0, respectively. When phenol was added to the minimal media as a sole source of carbon and energy, the concentration of maximum and optimum for cell growth was 1,200ppm and 1,000ppm, respectively. It was observed that Klebsiella pneumoniae was able to degrade 98% of phenol (1,000ppm) after 40hr in culture. The isolated could utilize various kinds of aromatic compounds and showed good growth in presence of phenol, m-cresol and 3-methyl catechol.
Park, Geun-Tae;Son, Hong-Joo;Kim, Jong-Goo;Lee, Sang-Joon
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.8
no.1
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pp.61-66
/
1998
A microorganism which degrades phenol and co-metabolizes trichloroethylene (TCE) was isolated from Yangsan stream after enrichment in a medium containing phenol as the sole carbon source. The isolate EL-43P was identified as the genus Rhodococcus by its morphological, cultural and physiological characteristics. Phenol-induced cells of Rhodococcus sp. EL-43P degraded TCE. Toluene and nutrient broth could not replace the phenol requirement. The optimal conditions of initial pH and temperature of media for growth were 7.0~9.0 and $30~50^{\circ}C$, respectively. Rhodococcus sp. EL-43P could grow with phenol up to 1,000 ppm. Growth was inhibited by phenol at a concentration above 1,500 ppm. It was observed that Rhodococcus sp. EL-43P was able to degrade 90% of phenol (1,000 ppm) after 40 h in a culture. Phenol-induced cells of Rhodococcus sp. EL-43P degraded 95% of $5{\mu}M$ TCE in 6 h. Rhodococcus sp. EL-43P hardly degraded TCE above $100{\mu}M$.
For the biological treatment of industrial wastewater containing high concentration of phenol, isolation and characterization of phenol - degrading bacterium were carried out. A bacterial strain P2 capable of degrading phenol was isolated from contaminated soils by enrichment culture technique and identified as the genus Rhodococcus by morphological, cultural, biochemical characteristics, and Biolog system. The optimal medium composition and cultural conditions for the growth and degradation of phenol by Rhodococcus sp. P2 were 0.1% of (NH$_4$)$_2$SO$_4$, 0.2% of KH$_2$PO$_4$, 0.25% of Na$_2$HPO$_4$ㆍ12$H_2O$, 0.2% of MgSO$_4$ㆍ7$H_2O$, and 0.008% of CaC1$_2$ㆍ2$H_2O$ along with initial pH 8.5 at 3$0^{\circ}C$. Rhodococcus sp. P2 could grow with phenol as the sole carbon source up to 1,800 ppm in batch cultures, but did not grow in medium containing above 2,000 ppm of phenol. When 800 ppm phenol was given in the optimal media, Rhodococcus sp. P2 completely degraded it within 24 h. Meanwhile, 1,800 ppm of phenol was degraded within 9 days. Rhodococcus sp. P2 could utilize toluene, n-hexane, xylene and benzene as sole carbon source .
Phenol is frequently present as the hazardous pollutant in petrochemical and pesticide industry wastewater. Because of its high toxicity and carcinogenic potential, a proper treatment is needed to reduce the hazards of phenol carrying effluent before being discharged into the environment. Phenol biodegradation with microbial consortium offers a very promising approach now a day's. This study focused on the formulation of phenol degrading bacterial consortium with three bacterial isolates. The bacterial strains Bacillus cereus strain VCRC B540, Bacillus cereus strain BRL02-43 and Oxalobacteraceae strain CC11D were isolated from detergent contaminated soil by soil enrichment technique and was identified by 16s rDNA sequence analysis. Individual cultures were degrade 100 μl phenol in 72 hrs. The formulated bacterial consortium was very effective in degrading 250 μl of phenol at a pH 7 with in 48 hrs. The study further focused on the analysis of the products of biodegradation with Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FT/IR) and Gas Chromatography-Mass Spectroscopy (GC-MS). The analysis showed the complete degradation of phenol and the production of Benzene di-carboxylic acid mono (2-ethylhexyl) ester and Ethane 1,2- Diethoxy- as metabolic intermediates. Biodegradation with the aid of microorganisms is a potential approach in terms of cost-effectiveness and elimination of secondary pollutions. The present study established the efficiency of bacterial consortium to degrade phenol. Optimization of biodegradation conditions and construction of a bioreactor can be further exploited for large scale industrial applications.
Enrichment techniques led to the isolation of a Pseudomonas sp. strain P2 from municipal waste-contaminated soil sample, which could utilize different isomers of a commercial mixture of 4-nonylphenol when grown in the presence of phenol. The isolate was identified as Pseudomonas sp., based on the morphological, nutritional, and biochemical characteristics and 16S rDNA sequence analysis. The ${\beta}$-ketoadipate pathway was found to be involved in the degradation of phenol by Pseudomonas sp. strain P2. Gas chromatography-mass spectrometric analysis of the culture media indicated degradation of various major isomers of 4-nonylphenol in the range of 29-50%. However, the selected ion monitoring mode of analysis of biodegraded products of 4-nonylphenol indicated the absence of any aromatic compounds other than those of the isomers of 4-nonylphenol. Moreover, Pseudomonas sp. strain P2 was incapable of utilizing various alkanes individually as sole carbon source, whereas the degradation of 4-nonylphenol was observed only when the test organism was induced with phenol, suggesting that the degradation of 4-nonylphenol was possibly initiated from the phenolic moiety of the molecule, but not from the alkyl side-chain.
Three strains capable of degrading a chlorophenol were isolated by selective enrichment from soils contaminated with industrial wastewater. A Pseudomonas solanacearum TCP114 could use 2,4,6-trichlorophenol (TCP) as sole carbon and energy source, while two strains of Pseudomonas testosteroni CPW301 and Arthrobacter ureafaciens CPR706 could use 4-CP. All isolates also grew well on phenol. The degradation of one component by a pure strain was strongly affected by the presence of other compounds in the medium, CPW301 and CPR706 entirely lost the ability to degrade 4-CP and phenol in the presence of TCP. TCP114 also lost the ability to degrade phenol when 4-CP was added to the culture medium. These restrictions on the degradability could be overcome by employing defined mixed cultures (TCP114 and one strain of 4-CP degrading strains). All three components were successfully degraded by defined mixed cultures through their cooperative activities. It was also demonstrated that defined mixed cultures could be immobilized by using calcium alginate for the semi-continuous degradation of the three component mixture. Immobilization could not only accelerate the degradation rate, but also allowed the reuse of the cell mass several times without loss of the cells' degrading capabilities.
This study employs the variety of mixtures of XAD resin and active carbons as concentration base for solid phase extraction (SPE) which has been widely used to preconcentrate and purify phenol and chlorophenols in determination of environmental water samples. In this study, we employed variety of mixtures of copolymer based XAD-4 resin with active carbons. This cartridges shows advantages of both materials, such as better affinity to phenol by active carbon and better mechanical stabilities from XAD resin. The better enrichment factor, pretreatment time, recoveries and limit of detection (LOD) were achieved by the attempts to pack precolumns with both meterials for preconcentration.
The effects of transformation capacity on cometabolic degradation of trichloroethene (TCE) were evaluated using TCE-degrading actinomycetes pure and mixed culture under various culture conditions. The TCE transformation capacity of the actinomycetes enrichment culture in a batch test with phenol addition was 1.0 mg of TCE/mg of volatile suspended solids (VSS). The resting cell TCE transformation capacity of the actinomycetes pure culture cell was 0.75 mg TCE/mg VSS, which increased to 2.0 mg TCE/mg VSS when phenol was added as an external substrate. When the pure culture had an internal substrate in the form of poly-β-hydroxybutyrate (PHB) at 19% of the cell mass, the resting cell TCE transformation capacity increased from 0.47 to 0.6 mg TCE/mg VSS. The presence of PHB increased transformation capacity by 57%, whereas, the addition of phenol caused more than two fold increase in transformation capacity. The actinomycetes culture showed the highest transformation capacity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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