A novel bacteriophage, designated as VPP97, that infects the strains of Vibiro parahaemolyticus (hallophilic, Gram-negative bacterium) isolated most commonly from marine environments, has been discovered, and several of its properties have been determined. The plaques were clear and sized $0.6{\sim}1.0\;mm$ in diameter. The virion forms a single band on 70% sucrose gradient and ${\rho}1.50$ CsCl gradient by sucrose gradient centrifugation and CsCl gradient centrifugation respectively. It has a hexagonal head and a relatively long tail, as shown by electron microscopy. Vibrio alginolyticus, Vibrio fluvialis and Vibrio furnissii were also sensitive to this phage. It was almost totally inactivated at $70^{\circ}C$ and at pH below 5 or over 10. The nucleic acid of VPP97 is composed of DNA. The VPP97 had 9 specific structural proteins sized between 21.5 kDa and 97.4 kDa on SDS-PAGE. When V. parahaemolyticus cultures were treated with either phage VPP97 or one of the several antibiotics for 2 hours, the viable number of V. parahaemolyticus treated with the phage VPP97 is lower than that treated with chloramphenicol, erythromycin or penicillin, but not lower than that treated with tetracycline. Mice that have responded to the phage treatment revealed the lower numbers of V. parahaemolyticus in small intestine and less damage on small intestine compared to the untreated mice. Therefore, we suggest that the phage treatment appears effective to the infection by V. parahaemolyticus.
The dual-vector system-II (DVS-II), which allows efficient display of Fab antibodies on phage, has been reported previously, but its practical applicability in a phage-displayed antibody library has not been verified. To resolve this issue, we created two small combinatorial human Fab antibody libraries using the DVS-II, and isolation of target-specific antibodies was attempted. Biopanning of one antibody library, termed DVFAB-1L library, which has a $1.3{\times}10^7$ combinatorial antibody complexity, against fluorescein-BSA resulted in successful isolation of human Fab clones specific for the antigen despite the presence of only a single light chain in the library. By using the unique feature of the DVS-II, an antibody library of a larger size, named DVFAB-131L, which has a $1.5{\times}10^9$ combinatorial antibody complexity, was also generated in a rapid manner by combining $1.3{\times}10^7$ heavy chains and 131 light chains and more diverse anti-fluorescein-BSA Fab antibody clones were successfully obtained. Our results demonstrate that the DVS-II can be applied readily in creating phage-displayed antibody libraries with much less effort, and target-specific antibody clones can be isolated reliably via light chain promiscuity of antibody molecules.
Background: To develop a novel treatment strategy for hepatitis B virus infection, a major cause of liver chirosis and cancer, we aimed to make human monoclonal antibodies inhibiting RNase H activity of P protein playing in important role in HBV replication. In this regard, phage display technology was employed and demonstrated as an efficient cloning method for human monoclonal antibody. So this study analysed the usability of human monoclonal antibody as protein based gene therapy. Methods: RNase H of HBV was expressed as fusion protein with maltose binding protein and purified with amylose resin column. Single chain Fv (scFv) phage antibody library was constructed by PCR cloning using total RNAs of PBMC from 50 healthy volunteers. Binders to RNase H were selected with BIAcore 2000 from the constructed library, and purified as soluble antibody fragment. The affinity and sequences of selected antibody fragments were analyzed with BIAcore and ABI automatic sequencer, respectively. And finally RNase H activity inhibiting assay was carried out. Results: Recombinant RNase H expressed in E. coli exhibited an proper enzyme activity. Naive library of $4.46{\times}10^9cfu$ was screened by BIAcore 2000. Two clones, RN41 and RN56, showed affinity of $4.5{\times}10^{-7}M$ and $1.9{\times}10^{-7}M$, respectively. But RNase H inhibiting activity of RN41 was higher than that of RN56. Conclusion: We cloned human monoclonal antibodies inhibiting RNase H activity of P protein of HBV. These antibodies can be expected to be a good candidate for protein-based antiviral therapy by preventing a replication of HBV if they can be expressed intracellularly in HBV-infected hepatocytes.
Lee, Hyung Ju;Kim, Wan Il;Kwon, Young Chan;Cha, Kyung Eun;Kim, Minjin;Myung, Heejoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제26권9호
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pp.1629-1635
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2016
A novel bacteriophage, PBES 02, infecting Cronobacter sakazakii was isolated and characterized. It has a spherical head of 90 nm in diameter and a tail of 130 nm in length, and belongs to Myoviridae as observed under a transmission electron microscope. The major virion protein appears to be 38 kilodaltons (kDa) in size. The latent period of PBES 02 is 30 min and the burst size is 250. Infectivity of the phage remained intact after exposure to temperatures ranging from 4℃ to 55℃ for 1 h. It was also stable after exposure to pHs ranging from 6 to 10 for 1 h. The phage effectively removed contaminating Cronobacter sakazakii from broth infant formula. PBES 02 has a double-stranded DNA genome of 149,732 bases. Its GC ratio is 50.7%. Sequence analysis revealed that PBES 02 has 299 open reading frames (ORFs) and 14 tRNA genes. Thirty-nine ORFs were annotated, including 24 related to replication and regulation functions, 10 related to structural proteins, and 5 related to DNA packaging. The genome of PBES 02 is closely related to that of two other C. sakazakii phages, CR3 and CR8. Comparison of DNA sequences of genes encoding the major capsid protein revealed a wide geographical distribution of related phages over Asia, Europe, and America.
Brown blotch disease, caused by Pseudomonas tolaasii, is one of the most serious diseases in mushroom cultivation, and its control remains an important issue. This study isolated and evaluated pathogen-specific bacteriophages for the biological control of the disease. In previous studies, 23 varieties of P. tolaasii were isolated from infected mushrooms with disease symptoms and classified into three subtypes, Ptα, Ptβ, and Ptγ, based on their 16S rRNA gene sequences analysis and pathogenic characters. In this study, 42 virulent bacteriophages were isolated against these pathogens and tested for their host range. Some phages could lyse more than two pathogens only within the corresponding subtype, and no phage exhibited a wide host range across different pathogen subtypes. To eliminate all pathogens of the Ptα, Ptβ, and Ptγ subtype, corresponding phages of one, six, and one strains were required, respectively. These phages were able to suppress the disease completely, as confirmed by the field-scale on-farm cultivation experiments. These results suggested that a cocktail of these eight phages is sufficient to control the disease induced by all 23 P. tolaasii pathogens. Additionally, the antibacterial effect of this phage cocktail persisted in the second cycle of mushroom growth on the cultivation bed.
Pseudomonas tolaasii는 느타리버섯에 갈반병을 일으키는 병원균주로, 다양한 변이균주들을 분리하여 $P1{\alpha}$와 $P1{\beta}$, $P1{\gamma}$ 세 가지 소그룹으로 분류하였다. 각 그룹별 균주들에 특이적인 박테리오파지를 이용한 파지테라피는 갈반병 방제에 매우 성공적이었다. 본 연구에서는, 박테리오파지들의 특성을 구명하기 위하여 소그룹별 대표균주을 이용하여 파지를 분리하였고, 이들의 다클론항체를 제작하여 파지들 사이에 유연관계를 조사하였다. 파지 준비물은 $10^{10}pfu/mL$ 이상으로 토끼의 다리 근육에 주사하였고, 3회의 반복주사에 의해 다클론항체가 얻어졌다. 파지 ${\phi}6264$에 대한 항체의 역가는 $2{\times}10^7Ab/mL$ 이상, 파지 ${\phi}HK2$에 대해서는 $1{\times}10^6Ab/mL$, 파지 ${\phi}HK19$와 ${\phi}HK23$에 대해서는 $1{\times}10^7Ab/mL$ 이상이었다. 항체와 이에 특이적인 파지 사이에는 매우 높은 반응특이성이 있었고, 소그룹이 다른 파지의 항체와 파지 사이에도 일부 교차반응성을 확인하였다. 파지 ${\phi}6264$에서 생성된 $Ab{\phi}6264$는 모든 $P1{\alpha}$ 소그룹의 파지들과 반응성을 보였으나, 파지 ${\phi}HK16$을 제외한 다른 소그룹의 파지들과는 반응하지 않았다. $P1{\gamma}$ 소그룹에서 생성된 $Ab{\phi}HK23$은 $P1{\beta}$ 소그룹의 모든 파지들을 불활성화시켜 가장 넓은 항체범위를 보였다. 항체와 파지를 이용한 숙주균과의 관계를 분석하였을 때, 16S rRNA 유전자 분석에 의한 숙주균의 근연관계와 항체를 이용한 숙주균의 파지들 사이의 구조적 근연관계는 상당히 차이가 있음을 확인하였다. 결론적으로, 박테리오파지의 숙주균 특이성과 항체를 이용해 측정한 파지의 껍질단백질 구조유사성 사이에는 약한 상관성을 보였다.
In this study the isolation and characterization of three bacteriophages (ST4, L13, and SG3) infecting Salmonella gallinarum were carried out. They were further tested for their in vivo efficacy in phage therapy. All three phages belong to the Siphoviridae family with isometric heads and non-contractile tails. They have a broad host range among serovars of Salmonella enterica. The burst sizes were observed to be 1670, 80, and 28 for ST4, L13, and SG3, respectively. The in vivo efficacy of the phages was tested in chickens. Layer chickens were challenged with S. gallinarum, whereas contact chickens were cohabited without direct challenge. Each bacteriophage was orally inoculated in the form of feed additives. Mortality was observed and S. gallinarum was periodically re-isolated from the livers, spleens, and cecums of the chickens. Bacterial re-isolation from the organs and mortality decreased significantly in both challenged and contact chickens treated with the bacteriophages compared with untreated chickens serving as the control. The three bacteriophages may be effective alternatives to antibiotics for the control of fowl typhoid disease in chickens.
Minaeian, Sara;Rahbarizadeh, Fatemeh;Zarkesh-Esfahani, Sayyed Hamid;Ahmadvand, Davoud;Broom, Oliver Jay
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권5호
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pp.721-728
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2012
The human papillomavirus (HPV) is the main cause of cervical cancer in developing countries. Rapid diagnosis and initiation of treatment of the HPV infection are critical. Various methods have been employed to reduce the immunogenicity of antibodies targeting HPV serotypes. Nanobodies are the smallest fragments of naturally occurring single-domain antibodies with their antigen-binding site compromised into a single domain. Nanobodies have remarkable properties such as high stability, solubility, and high homology to the human VH3 domain. In this study, a phagemid library was employed to enrich for nanobodies against the L1 protein of the human papilloma virus. Binding reactivity of the selected clones was evaluated using phage enzyme-linked immunosorbent assay (phage-ELISA). Finally, two nanobodies (sm5 and sm8) with the best reactivity against the Gardasil vaccine and the purified HPV-16 L1 protein were expressed and purified using a $Ni^+$-NTA column. The accuracy of expression and purification of the nanobodies was confirmed by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and immunoblotting assays. In vitro studies demonstrated that neutralization was achieved by the selected nanobodies. The ease of generation and unique features of these molecules make nanobodies promising molecules for the new generation of HPV diagnosis and therapy.
Bacterial wilt caused by Ralstonia solanacearum is one of the most devastating diseases in major Solanaceae crops. The pathogen is easily disseminated and survives for many years in plant farming system. Although chemicals are applied to control the disease, they are of limited efficacy and cause several problems. Therefore, the use of phage therapy has been suggested to control the disease as a biological agent. In this study, we discovered bacteriophages lysing diverse Ralstonia isolates from plant and soil samples obtained from the potato cultivated field in Jeju. Three times repeated pickings of plaques resulted in obtaining 173 single phages showing diverse spectrum of host-specificity. With the results, 12 core phages were selected and dendrogram was generated. Genetic diversity of the selected phages was also confirmed by AFLP (Amplified Fragment of Length Polymorphism) fingerprinting. The stability of the phages was investigated in various temperatures and various conditions of pH in vitro. The phages were stable at $16^{\circ}C-44^{\circ}C$ and pH 6-10. Morphological characterization of the phages revealed they were all classified into the Podoviridae, but had diverse head sizes. The results of this research will contribute to control the disease and further researches regarding genetic and molecular aspects will facilitate understanding phage and bacteria interaction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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