Phage display technique as a new antibody production method can express the protein on the minor coat of phage particle in a library constructed by utilizing a recombination of genes coding the variable regions of immunoglobulin. This new method is particularly advantageous in producing antibodies against toxic substances and compounds with low immunogenicities. We first confirmed the concept of antibody expression on the phage particle by selecting a positive control of the phage library (e.g., Griffin.l donated from MRC center in England). The library was then employed to produce antibodies specific to human serum albumin via repetitive bio-panning procedure. The mean affinity of the antibodies selected gradually increased along with the number of bio-panning, which demonstrated that the phage display method could produce monocloanl antibodies with high affinities.
The aim of this study was to screen for polypeptides binding specifically to LoVo human colorectal cancer cells using a phage-displayed peptide library as a targeting vector for colorectal cancer therapy. Human normal colorectal mucous epithelial cells were applied as absorber cells for subtraction biopanning with a c7c phage display peptide library. Positive phage clones were identified by enzyme-linked immunosorbent assay and immunofluorescence detection; amino acid sequences were deduced by DNA sequencing. After 3 rounds of screening, 5 of 20 phage clones screened positive, showing specific binding to LoVo cells and a conserved RPM motif. Specific peptides against colorectal cancer cells could be obtained from a phage display peptide library and may be used as potential vectors for targeting therapy for colorectal cancer.
Random hexapeptide library on the surface of filamentous bacteriophage was constructed using the SurfZAP vector. The size of the library was approximately 105. The peptide insert was flanked by two cysteines to constrain the peptide structure with a disulfide bond. This library was screened for the topoisomerase II binding peptide. Dramatic enrichment of the fusion phage over the VCS M13 helper phage was demonstrated by bio-panning affinity selection.
The in vitro antibody discovery technologies revolutionized the generation of target-specific antibodies that traditionally relied on the humoral response of immunized animals. An antibody library, a large collection of diverse, pre-constructed antibodies, can be rapidly screened using in vitro display technologies such as phage display. One of the keys to successful in vitro antibody discovery is the quality of the library diversity. Antibody diversity can be obtained either from natural B-cell sources or by the synthetic methods that combinatorially generate random nucleotide sequences. While the functionality of a natural antibody library depends largely upon the library size, various other factors can affect the quality of a synthetic antibody library, making the design and construction of synthetic antibody libraries complicated and challenging. In this review, we present various library designs and diversification methods for synthetic antibody library. From simple degenerate oligonucleotide synthesis to trinucleotide synthesis to physicochemically optimized library design, the synthetic approach is evolving beyond the simple emulation of natural antibodies, into a highly sophisticated method that is capable of producing high quality antibodies suitable for therapeutic, diagnostic, and other demanding applications. [BMB Reports 2015; 48(9): 489-494]
Lactobacilli are normal constituents of the intestinal microbiota, and some strains show the capacity to bind to extracellular matrix proteins and components of the mucosal layer, which represents an adaptation to persist in this niche. A shotgun phage-display library of Lactobacillus casei BL23 was constructed and screened for peptides able to bind to fibronectin and collagen. Clones showing binding to these proteins were isolated, which encoded overlapping fragments of a putative transcriptional regulator (LCABL_29260), a hypothetical protein exclusively found in the L. casei/rhamnosus group (LCABL_01820), and a putative phage-related endolysin (LCABL_13470). The construction of different glutathione S-transferase (GST) fusions confirmed the binding activity and demonstrated that the three identified proteins could interact with fibronectin, fibrinogen, and collagen. The results illustrate the utility of phage display for the isolation of putative adhesins in lactobacilli. However, it remains to be determined whether the primary function of these proteins actually is adhesion to mucosal surfaces.
The dual-vector system-II (DVS-II), which allows efficient display of Fab antibodies on phage, has been reported previously, but its practical applicability in a phage-displayed antibody library has not been verified. To resolve this issue, we created two small combinatorial human Fab antibody libraries using the DVS-II, and isolation of target-specific antibodies was attempted. Biopanning of one antibody library, termed DVFAB-1L library, which has a $1.3{\times}10^7$ combinatorial antibody complexity, against fluorescein-BSA resulted in successful isolation of human Fab clones specific for the antigen despite the presence of only a single light chain in the library. By using the unique feature of the DVS-II, an antibody library of a larger size, named DVFAB-131L, which has a $1.5{\times}10^9$ combinatorial antibody complexity, was also generated in a rapid manner by combining $1.3{\times}10^7$ heavy chains and 131 light chains and more diverse anti-fluorescein-BSA Fab antibody clones were successfully obtained. Our results demonstrate that the DVS-II can be applied readily in creating phage-displayed antibody libraries with much less effort, and target-specific antibody clones can be isolated reliably via light chain promiscuity of antibody molecules.
An antibody displayed phage collection (SBAE-2R), screened from a human synthetic phage antibody library (Fab 21ox), was used for the determination of dextran. The dextran-binding affinity was determined by serologically specific transmission electron microscopy (TEM) and a paper dipstick assay. The phage collection was distributed over the dextrancoated grids with 39$\pm$25 phages/$\mu$m$^2$ on the grids. Phages were not seen on dextran-coated grids exposed to the Fab 2lox phage library. The phage collection (SBAE-2R) produced 54$\pm$3 color normalized intensity (N.I.) from 125 ppm to 1,000 ppm of dextran and 5$\pm$1 (N.I.) for 63 ppm of dextran in a paper dipstick assay. This research extends the analytical options for dextran analysis by antibody displayed phage with a minimum of equipment usage.
Background: In order to characterize human antibodies with specificity for mite allergens at the molecular level, a scFv phage display library was constructed using peripheral blood mononuclear lymphocytes from an asthma patient allergic to mite as Ig gene sources. Methods: Immunoglobulin $V_H$ and V gene fragments were obtained by polymerase chain reaction, and randomly combined in pCANTAB-5E vector. The resulting human scFv phage display library had $3{\times}10^4$ independent clones, and biopanning was performed with house dust mite extracts. Results: Four scFv clones specific for house dust mite extract were isolated. Immunoblot assay showed that our clones reacted to 25 kDa and 50~60 kDa proteins with unknown identity in mite extracts. Sequence analysis indicated that two clones (b7 and c15) are identical, and all clones belong to human $V_H3$ subgroup. On the other hand, light chain usage was different in that two clones (a2 and b7 / c15) belonging to V ${\kappa}4$ subgroup, but a4 used V ${\kappa}1$ light chain gene. Conclusion: Our approach should facilitate provision of useful information on the antibody responses against allergens at the molecular level in humans.
The quality of a phage-displayed antibody library deteriorates with clonal variations, which are caused by differentially expressed Escherichia coli antibody genes. Using the human Fab SP114 against the pyruvate dehydrogenase complex-E2 (PDCE2), we created four E. coli TOP10F' clones with a pCMTG phagemid encoding Fab-pIII (pCMTG-Fab), Fd ($V_H+C_{H1}$)-pIII (pCMTG-Fd), or light chain (L) (pCMTG-L), or the vector only (pCMTG-${\Delta}Fab$) to investigate the effect of clonal variations in a defined manner. Compared to the others, the E. coli clone with pCMTG-Fab was growth retarded in liquid culture, but efficiently produced phage progenies by Ex12 helper phage superinfection. Our results suggest that an antibody library must be cultured for a short duration before helper phage superinfection, and that the Ex12 helper phage helped to alleviate the detrimental effect of clonal variation, at least in part, by preferentially increasing functional phage antibodies during phage amplification.
Biomolecules specific to explosives can be exploited as chemical sensors. Peptides specific to immobilized dinitrotoluene (DNT) were identified using a phage display library. A derivative of DNT that contained an extended amine group, 4-(2,4-dinitrophenyl)butan-1-amine, was synthesized and immobilized using a self-assembled monolayer surface on gold. Filamentous M13 phages displaying random sequences of 12-mer peptides specific to the immobilized DNT-derivate were isolated from the M13 phage library by biopanning. A common peptide sequence was identified from the isolated phages and the synthesized peptides showed selective binding to DNT. When the peptide was immobilized on a quartz crystal microbalance (QCM) chip, it showed a binding signal to DNT, while toluene barely showed significant binding to the QCM chip. These results demonstrate that peptides screened by biopanning against immobilized DNT can be useful for quick and accurate detection of DNT.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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