The fragmentation statistics of ion trap CID (Collision-Induced Dissociation) spectra using 87,661 tandem mass spectra of doubly charged tryptic peptides are analyzed here. In contrast to the usual method of using intensity information, the frequency of occurrence of fragment ions, with respect to the position of the cleavage site and the residues at these sites is studied in this paper. The analysis shows that the frequency of occurrence of fragment ion peaks is more towards the middle of the peptide than its ends. It was noted that amino acid with an aromatic and basic side chain at N- & C- terminal end of the peptide stimulates more peaks at the lower end of the spectrum. The residue pair effect was shown when the amide bond occurs between acidic and basic residues. The fragmentation at these sites (D/E-H/R/K) stimulates the generation of the y-ion peak. Also, the cleavage site H-H/R/K stimulates the generation of b-ions. K-P environment in the peptide sequence has more tendency to generate y-ions than b-ions. Statistical analysis helps in the visualization of the CID fragmentation pattern. Cleavage pattern along the length of the peptide and the residue pair effects, enhance the knowledge of fragmentation behavior, which is useful for the better interpretation of tandem mass spectra.
The NS2B-NS3(pro) polyprotein segment from the dengue virus serotype 2 strain 16681 was purified from overexpressing E. coli by metal chelate affinity chromatography and gel filtration. Enzymatic activity of the refolded NS2B-NS3(pro) protease complex was determined in vitro with dansyl-labeled peptide substrates, based upon native dengue virus type 2 cleavage sites. The 12mer substrate peptides and the cleavage products could be separated by reversed-phase HPLC, and were identified by UV and fluorescence detection. All of the peptide substrates (representing the DEN polyprotein junction sequences at the NS2A/NS2B, NS2B/NS3, NS3/NS4A and NS4B/NS5 sites) were cleaved by the recombinant protease NS2B-NS3(pro). No cleavage was observed with an enzymatically inactive S135A mutant of the NS3 protein, or with a modified substrate peptide of the NS3/NS4A polyprotein site that contained a K2093A substitution. Enzymatic activity was dependent on the salt concentration. A 50% decrease of activity was observed in the presence of 0.1M sodium chloride. Our results show that the NS3 protease activity of the refolded NS2B-NS3(pro) protein can be assayed in vitro with high specificity by using cleavage-junction derived peptide substrates.
Kim, Seong-Ryul;Hwang, Jae-Sam;Yoon, Hyung-Joo;Park, Kwan-Ho;Hong, Mee-Yeon;Kim, Kee-Young;Jin, Byung-Rae;Kim, Ik-Soo
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.17
no.1
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pp.137-141
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2008
We previously isolated and cloned a cDNA of abaecin from the Bombus ignitus. In an effort to produce a large amount of soluble abaecin at low cost, we successfully expressed the peptide in Escherichia coli that are highly sensitive to its mature form. For this, we fused the peptide encoding 39 amino acids of mature B. ignitus abaecin to the thioredoxin gene together with a C-terminal 6xHis tag. An enterokinase cleavage site was introduced between the 6xHis tag and mature abaecin to allow final release of the recombinant peptide. A high yield of 9.6 mg soluble fusion protein from 200 ml of bacterial culture was purified by $Ni^{2+}$-charged His-Bind resin affinity column, and 1.4 mg of pure active recombinant abaecin was readily obtained by enterokinase cleavage, followed by affinity chromatograph. The molecular mass of recombinant abaecin peptide was determined by Tricin-SDS-PAGE analysis. The recombinant abaecin exhibited antibacterial activity against Gram-negative bacteria.
Peptide identification in tandem mass spectrometry is usually done by searching the spectra against target databases consisting of reference protein sequences. To control false discovery rates for high-confidence peptide identification, spectra are also searched against decoy databases constructed by permuting reference protein sequences. In this case, a peptide of the same sequence could be included in both the target and the decoy databases or multiple entries of a same peptide could exist in the decoy database. These phenomena make the protein identification problem complicated. Thus, it is important to minimize the number of such redundant peptides for accurate protein identification. In this regard, we examined two popular methods for decoy database generation: 'pseudo-shuffling' and 'pseudo-reversing'. We experimented with target databases of varying sizes and investigated the effect of the maximum number of missed cleavage sites allowed in a peptide (MC), which is one of the parameters for target and decoy database generation. In our experiments, the level of redundancy in decoy databases was proportional to the target database size and the value of MC, due to the increase in the number of short peptides (7 to 10 AA). Moreover, 'pseudo-reversing' always generated decoy databases with lower levels of redundancy compared to 'pseudo-shuffling'.
In order to find the rational methods for improving the thermal stability of subtilisin Carlsberg, the mechanisms of irreversible thermoinactivation of the enzyme were studied at $90^{\circ}C.$ At pH 4, the main process was hydrolysis of peptide bond. This process followed first order kinetics, yielding a rate constant of $1.26\;{\times}\;10^{-1}h^{-1}$. Hydrolysis of peptide bond of PMS-subtilisin occurred at various sites, which produced new distinct fragments of molecular weights of 27.2 KD, 25.9 KD, 25.0 KD, 22.3 KD, 19.0 KD, 17.6 KD, 16.5 KD, 15.7 KD, 15.0 KD, 13.7 KD, and 12.7 KD. Most of the new fragments originated from the acidic hydrolysis at the C-side of aspartic acid residues. However 25.0 KD, 15.7 KD, and 13.7 KD which could not be removed in purification steps stemmed from the autolytic cleavage of subtilisin. The minor process at pH 4 was deamidation at asparagine and/or glutamine residues and some extend of aggregation was also observed. However, the aggregation was main process at pH 7 with a first order kinetic constant of $16 h^{-1}.$ At pH 9, the main process seemed to be combination of deamidation and cleavage of peptide bond.
t ENOD40B, a plant peptide hormone, was doubly labeled with C-13 and N-15 by recombinant production in Escherichia coli. The peptide was prepared by affinity chromatography followed by protease cleavage and reverse-phase chromatography. To elucidate the mode of action against its receptor, sucrose synthase, we proceeded to assign the backbone and side-chain resonances using a set of double and triple resonance experiments. This result will be used to determine the three-dimensional structure of the peptide at its bound state as well as to observe the chemical shift changes upon binding.
A kernel in support vector machines can be described as a similarity measure between data, and this measure is used to find an optimal hyperplane that classifies patterns. It is therefore important to effectively incorporate the characteristics of data into the similarity measure. To find an optimal similarity between amino acid sequences, we propose a real exponent exponential form of the two metrices, which are derived from the evolutionary relationships of amino acids and the hydrophobicity of amino acids. We prove that the proposed metric satisfies the conditions to be a metric, and we find a relation between the proposed metric and the metrics in the string kernels which are widely used for the processing of amino acid sequences and DNA sequences. In the prediction experiments on the cleavage site of the signal peptide, the optimal metric can be found in the proposed metrics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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