Total 1,434 sera collected from 72 pig farms were tested for the detection of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus antibodies. The overall seroprevalence of PRRS virus antibodies was 49.3% (707/727). Of 72 farms tested 59 (81.9%) farms had at least one or more than one pigs with PRRS virus antibodies. The seroprevalence of PRRS virus antibody varied with age. Seroprevalence of PRRS virus antibody in 1 to 30-day-old, 31 to 40-day-old, 41 to 50-day-old, 51 to 60-day-old, and over 61-day-old pig were 27.4%, 52.3%, 57.9%, 52.7%, and 68.2%, respectively. Gilt showed relatively higher seroprevalence (61.2%) than sow (29.2%) and boar (38.3%). In most farms, the infection of PRRS virus was chronic and confined to grower or finisher. This pattern of infection suggests that partial depopulation of the infected herds appears be one of the measures to eradicate the PRRS virus infection. High seroprevalence of the PRRS virus antibody in gilts and boars indicates that the infected gilts and boars in the breeding farms are the major source of the PRRS virus infection, and also play an important role in spreading the PRRS virus between fan mates or herds.
Total 2,451 sera collected from pig farms nationwide were tested for the detection of porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS) virus antibodies. The results were analyzed between different geographic regions, types of breeding pigs, and different years. The overall seroprevalence of PRRS virus antibodies for 3 years was 32.4%(705/2,451). The seroprevalence of PRRS virus antibodies in years 2000, 2001, 2002, and 2004 was 33.4% (284/850), 38.6%(291/754), 33.3%(155/466), and 17.1%(65/381), respectively. The seropevalence of PRRS virus antibody in sow in years 2000, 2001, 2002 and 2003 was 31.7%, 28.4%, 29.6%, and 13.4%, respectively. The seropevalence of PRRS virus antibody in gilts in years 2000, 2001, 2002 and 2003 was 36.6%, 67.4%, 54.7%, and 33.9%, respectively. The seropevalence of PRRS virus antibody in boars in years 2000, 2001 and 2003 was 45.7%, 36.4%, and 100%, respectively. No boar serum sample was submitted for the diagnosis of PRRS virus antibody in the year 2000. High seroprevalence of the PRRS virus antibody in sow, gilts and boars indicates that the infected breeding pigs are the major source of the PRRS virus infection, and also play an important role in spreading the PRRS virus between fan mates or herds.
The purpose of this study was to evaluate the effect of a subsequent infection of porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS) virus to pigs with A. pleuropneumonia in pigs. Twenty three 7-weeks-old commercial pigs were infected with PRRS virus and/or A. pleuropneumoniae serotype 5 intratracheally. Feed conversion, clincal signs, gross and histopathological lesions and immunohistochemical findings were examined. 1. Feed conversion ratio in dual-infected pigs with PRRS virus and A. pleuropneumoniae were higher than that of single- infected pigs with PRRS virus or A. pleuropneumoniae. 2. Dual-infected pigs with PRRS virus followed by A. pleuropneumoniae showed more severe clinical signs and gross, histopathological and immunohistochemical pulmonary lesions. The results indicated that dual infections with PRRS virus and A. pleuropneumoniae caused more severe respiratory lesions and growth retardation in pigs than single infection with PRRS virus or A. pleuropneumoniae.
Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus is the etiological agent of diseases characterized by reproductive losses in sows and respiratory disorders in piglets. The PRRS virus is a small enveloped virus containing a positive-sense, single-stranded RNA genome. In the present study, ORF6 gene of Korean PRRS virus isolate, CNV, was cloned and expressed in baculovirus expression system. The ORF6 gene and expressed protein in the recombinant virus were confirmed by PCR/indirect fluorescence antibody (IFA) test and Western blotting, respectively. The recombinant protein with a molecular weight of approximately 24KDa was confirmed by Western blotting using His6 and PRRS virus-specific antiserum. Expressed ORF6 protein was applied for IFA to detect antibody against PRRS virus using field porcine sera. However, the sensitivity and specificity of developed IFA using expressed ORF6 protein were considerably low compared to those of commercial ELISA kit. This results suggest that IFA using expressed ORF6 protein could not be used as a diagnostic test for PRRS virus infection without further improvements.
The purpose of this study was survey of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus antibody in Gyeongbuk province by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Total 690 samples collected from 15 pig farms were tested. The overall seroprevalence of PRRS virus antibodies was 63.2% (436/690) and 13 farms of 15 farms had at least one pig with PRRS virus antibodies. The seroprevalence of PRRS virus antibody varied with age. Results in 1 to 30 day old, 31 to 60 day old, 61 to 90 day old, 90 to 120 day old and over 120 day old pig were 58.3%, 36.0%, 68.0%, 84.0%, 80.0% and sow were 61.9% respectively.
A totoal of 219 pigs, 109 necropsy-pigs at the diagnostic laboratory of Cheju National University and 110 slaughter-pigs in Cheju, were evaluated for the prevalence of tissue antigen and serum antibody for spontaneus porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS). Tissues from 219 pigs examined for PRRS viral antigen by immmunohistochemistry included lung(cranio-ventral lobes and dorso-caudal lobes), tonsil, tracheobronchial lymph node, mesenteric lymph node, heart, kidney, liver, spleen, testis, ovary, brain, and spinal cord. Sera from 180 pigs were tested for the presence of antibody to PRRS virus by the indirect fluorescent antibody assay (IFA). In the examination of serum antibody and tissue antigen for PRRS virus, serum antibody titers were considered as positive in 10%(18/180) of animals tested and PRRS viral antigen was detected in tissues of 4%(9/219) of the pigs. PRRS virus tissue antigen was most commonly detected by immunohistochemistry in the cranio-ventral lobe and tonsil. We also confirmed the distribution of tissue antigen and prevalence of serum antibody to PRRS virus in Cheju. The detection of viral antigen by immunohistochemistry in tonsils and cranio-ventral lobes proved to be a very useful method for PRRS diagnosis.
The purpose of this study was to evaluate the effect of a subsequent infection of porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS) virus to pigs with A pleuropneumonia. Twenty three 7-week-old commercial pigs were infected intratracheally with PRRS virus and/or A pleuropneumoniae serotype 5. Serum antibody titers were examined by an enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) and proportion of porcine leukocyte subpopulations in peripheral blood was examined by flow cytometry. In this experiment, antibodies against PRRS virus and A pleuropneumoniae were detected at 2 weeks and 1 week postinfection and the number of antibody positive pigs were gradually increased. And in proportion to leukocyte subpopulations in peripheral blood of pigs infected with A pleuropneumoniae compared with pigs administrated with saline, the proportion of PoCD4 and N cells were increased(P<0.1). Furthermore, in proportion to leukocyte subpopulations in peripheral blood of pigs infected with PRRS virus followed by A pleuropneumoniae compared with pigs administrated with saline, the proportion of MHC class II, PoCD4 and B cells were significantly increased(P<0.1). The results indicated that dual infection with PRRS virus and A pleuropneumoniae induced the stronger immune responses associated with macrophages and Th cells in pigs than single infection with PRRS virus or A pleuropneumoniae.
Park, Bong-kyun;Collins, James E.;Goyal, Sagar M.;Pijoan, Carlos;Joo, Han-soo
대한수의학회지
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제39권2호
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pp.311-317
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1999
Pathogenic effects of 29 different porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS) virus isolates were investigated in swine tracheal ring(STR) cultures by examining their effects on the ciliary activity of STR. Inhibition of ciliary movement and destruction of the tracheal epithelium were seen between 72 and 96 hours postinoculation(PI). Virus replication was demonstrated by examining viral infectivity of the supernatants from the STR cultures. PRRS virus antigen in macrophages was detected by a streptavidin-biotin complex(ABC) immunoperoxidase method. Of the 29 PRRS virus isolates, 8 isolates were classified into pathogenic, and the remaining 21 isolates were determined as mildly pathogenic or apathogenic viruses. These results suggest that STR examination may be used as a method for predicting pathogenic variability of PRRS virus isolates.
Plaque characteristics of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus isolates were examined using MARC-145 line cells. The plaque morphology of PRRS virus isolates was variable in size and heterogenic in population. Upon serial passages of the PRRS virus isolates on MARC-145 tells, heterogeneity was maintained but numbers of the large plaque size virus were increased with certain isolates. A PRRS virus isolate with variable plaque sizes was subcloned into 2 populations : small plaque ($H_S$) and large plaque ($H_L$) viruses. Growth kinetics of the subclones were then determined in MARC-145 cells, and production of the structural polypeptides was analyzed by SDS-PAGE. In a comparison of the growth kinetics, the $H_S$ virus showed higher infectivity titers during the first 48 hours but slower to reach the peak titier than $H_L$ virus did. In a nucleotide sequence comparison, differences of 4 nucleotides in open reading frames 5-6 gene were found between $H_S$ and $H_L$ viruses. Both the $H_S$ and $H_L$ clones produced 5 polypeptide bands with molecular weights of 15, 19, 26, 36 and 42 kD. The 5 bands were detected at 48 hours postinoculation (PI) with antisera to $H_L$ and another large plaque virus ($W_L$) and at 72 hours PI with $H_S$ virus antiserum. The present results demonstrate differences of biologic and molecular characteristics between the two PRRS virus plaque clones.
Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) is characterized by reproductive failures in sows and respiratory problems in piglets. The nucleocapsid(N) protein, encoded by the open reading frame 7 (ORF7) gene, is known to be the most abundant and antigenic protein in PRRS virus. Therefore, it was suggested that the N protein could be a suitable candidate for the detection of PRRS virus-specific antibodies and diagnosis of PRRS. In the present study, the ORF7 gene encoding the N protein was cloned and expressed as a fusion protein with the glutathione S-transferase (GST) in Escherichia coli. The resulting GST-N recombinant protein was used as an antigen for an indirect sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (i-ELISA). Expressed GST-N recombinant protein was migrated at 41 kDa and reacted with ORF7-specific monoclonal antibody by Western blotting. In order to increase the specificity of the ELISA for the detection of PRRS virus-specific antibodes, an i-ELISA was developed using an anti-GST antibody as a capture antibody. The sensitivity and specificity of developed i-ELISA were 92% and 96%, respectively. Based on these results, it was suggested that the i-ELISA is a simple and rapid test for screening a large number of swine sera for the anti-PRRS virus antibodies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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