We studied on preparation of nanoparticles modified surface using biodegradable polymer, poly(DL-lactide-co-glycolide) (PLGA). Two kinds of PLGA nanoparticles were prepared by a spontaneous emulsification solvent diffusion (SESD) method using cetyltrimethylammonium chloride (CTAC) and tetradecyltrimethylammonium bromide (TTAB) as a cationic surfactant and polyethylene glycol-block-polypropylene glycol copolymer (Lutrol F68) as a nonionic surfactant. Model protein was coated on the surface of nanoparticles by the ionic complexation. The model protein was that influenza vaccine ($H_3N_2,\;H_1N_1$, B strain) labeled with NHS-fluorescein. The sizes of cationic nanoparticles were 140-160 nm and the surface charges were 50-60 mV. The sizes of nonionic nanoprticles were 80-90 nm and the surface charge was -10 mV. After coating vaccine on the surface of nanoparticles, the sizes of cationic nanoparticles were increased to 380-400 nm and the size of nonionic nanoparticles was not increased. The amount of coated vaccine on the cationic nanoparticles was 22.73 ${\mu}g$/mg.
PLGA micro/nano particles encapsulating ranitidine as a hydrophilic model drug were prepared by the double-emulsion solvent evaporation method. Surface morphology investigation by scanning electron microscope (SEM) showed that the emulsification by sonication could produce nanoparticles, whereas microparticles were prepared using high speed homogenizer. Moreover, while nanohalf-shell structure instead of spherical nanoparticle could be produced by adding poloxamer into oil phase (MC) with PLGA 504H, the addition of poloxamer didn't change particle shape in case of PLGA 502H. On the other hand, microparticle with poloxamer had more surface pores than those without poloxamer. The size and polydispersity (PDI) of particles were determined by particle size analyzer. Effective diameters of particles were in the range of $400{\sim}800\;nm$ and $1200{\sim}3300\;nm$ in case of nanoparticles and microparticles, respectively. Encapsulation efficiencies were in the range of $1.2{\sim}2.9%$. The addition of poloxamer produced the particles with higher encapsulation efficiency. In vitro release study in phosphate buffer (pH 7.4) at $37^{\circ}C$ showed common large initial burst release. However, the relative slower release profile could be observed in case of microparticles. Poloxamer addition increased the release rate, which was thought to be related to the increased surface area of particles.
Magnetite nanoparticles encapsulated with biodegradable polymer [poly(D,L-lactide-co-glycoiide), PLGA] were prepared by an emulsification-diffusion method. To investigate the effect of type of organic solvents on the mean particle sizes of obtained composite particles, different organic solvents [ethyl acetate (EA), propylene carbonate (PC) and acetone (ACE)] were used with a stabilizer [didodecyl dimethyl ammonium bromide (DMAB)]. The particle size of nanoparticles was observed by the dynamic light scattering method. When EA and PC as partially water-soluble solvents were used, small composite nanoparticles below 80nm were obtained, while large composite nanoparticles above 330nm were prepared for ACE as a fully water-soluble solvent.
Previously we showed that biodegradable nanoparticles containing poly-IC or CpG oligodeoxynucleotide (ODN) together with ovalbumin (OVA) were efficient at inducing MHC-restricted presentation of OVA peptides in dendritic cells. The CTL-inducing activities of the nanoparticles were examined in the present study. Nanoparticles containing poly-IC or CpG ODN together with OVA were prepared using biodegradable polymer poly(D,L-lactic acid-co-glycolic acid), and then were opsonized with mouse IgG. The nanoparticles were injected into the tail vein of mice, and 7 days later the OVA-specific CTL activities were measured using an in vivo CTL assay. Immunization of mice with the nanoparticles containing poly-IC or CpG ODN together with OVA elicited potent OVA-specific CTL activity compared to those containing OVA only. In accordance with these results, nanoparticles containing poly-IC or CpG ODN together with OVA exerted potent antitumor activity in mice that were subcutaneously implanted with EG7.OVA tumor cells. These results show that encapsulation of poly-IC or CpG ODN together with antigen in biodegradable nanoparticles is an effective approach for the induction of potent antigen-specific CTL responses in vivo.
The preservation of biological activity of protein drugs in formulation is still a major challenge for successful drug delivery. Lipase was encapsulated in poly (D,L-lactide- co-glycolide) PLGA nano-particles using a w/o/w solvent evaporation technique. The lipase-containing PLGA/poly (vinyl alcohol) (PVA) nanoparticles were characterized with regard to morphology, size, size distribution, lipase-loading efficiency, in vitro lipase release, and stability of lipase activity. The size of nanoparticles increased as polymer concentration was increased. The size of particles was not significantly affected by the PVA concentration; on the other hand, the particle size distribution was the narrowest when 4% of PVA was used. In optimum conditions, we possessed nanoparticles that characterized 72.5% of encapsulation efficiency, $198.3{\pm}13.8 nm$ size diameter. During the initial burst phase, the in vitro release rate was very fast, reaching 83% within 12 days. Until days 6, enzyme activity increased as the amount of lipase released was increased.
This study aimed to develop docetaxel (DTX) loaded poly(lactic-co-glycolic acid) (PLGA) nanoparticles (DTX-NPs) and to evaluate the different pharmacological sensitivity of NPs to MCF-7 and MDA-MB-231 breast cancer cells. NPs containing DTX or coumarin-6 were prepared by the nanoprecipitation method using PLGA as a polymer and d-α-tocopherol polyethylene glycol 1000 succinate (TPGS) as a surfactant. The physicochemical properties of NPs were characterized. In vitro anticancer effect and cellular uptake were evaluated in breast cancer cells. The particle size and zeta potential of the DTX-NPs were 160.5 ± 3.0 nm and -26.7 ± 0.46 mV, respectively. The encapsulation efficiency and drug loading were 81.3 ± 1.85% and 10.6 ± 0.24%, respectively. The in vitro release of DTX from the DTX-NPs was sustained at pH 7.4 containing 0.5% Tween 80. The viability of MDA-MB-231 and MCF-7 cells with DTX-NPs was 37.5 ± 0.5% and 30.3 ± 1.13%, respectively. The IC50 values of DTX-NPs were 3.92- and 6.75-fold lower than that of DTX for MDA-MB-231 cells and MCF-7 cells, respectively. The cellular uptake of coumarin-6-loaded PLGA-NPs in MCF-7 cells was significantly higher than that in MDA-MB-231 cells. The pharmacological sensitivity in breast cancer cells was higher on MCF-7 cells than on MDA-MB-231 cells. In conclusion, we successfully developed DTX-NPs that showed a great potential for the controlled release of DTX. DTX-NPs are an effective formulation for improving anticancer effect in breast cancer cells.
In this study, we prepared all-trans retinoic acid (ATRA)-encapsulated, surfactant-free, PLGA nanoparticles. The nanoparticles were formed by nanoprecipitation process, after which the solvent was removed by solvent evaporation or dialysis method. When a nanoparticle was prepared by the nanoprecipitation - solvent evaporation method, the nanoparticles were bigger than the nanoparticles of the nanoprecipitation - dialysis method, despite the higher although loading efficiency. Nanoparticles from the nanoprecipitation - dialysis method were smaller than 200 nm in diameter, while the loading efficiency was not significantly changed. Especially, nanoparticles prepared from DMAc, 1,4-dioxane, and DMF had a diameter of less than 100 nm. In the transmission electron microscopy (TEM) observations, all of the nanoparticles showed spherical shapes. The loading efficiency of ATRA was higher than 90% (w/w) at all formulations with exception of THF. The drug content was increased with increasing drug-feeding amount while the loading efficiency was decreased. In the drug release study, an initial burst was observed for $2{\sim}6$ days according to the variations of the formulation, after which the drug was continuously released over one month. Nanoparticles from the nanoprecipitation - dialysis method showed faster drug release than those from the nanoprecipitation - solvent evaporation method. The decreased drug release kinetics was observed at lower drug contents. In the tumor cell cytotoxicity test, ATRA-encapsulated, surfactant-free, PLGA nanoparticles exhibited similar cytotoxicity with that of ATRA itself.
In this study, poly(DL-lactide-co-glycolide) nanoparticles loaded with water-insoluble vitamins such as vitamin A (Retinol) and vitamin E acetate were prepared by the emulsification diffusion method. Polymer solution was prepared by the two water-miscible organic solvent, such as ethanol and acetone. Because of its biocompatible property, polyethyleneglycol-polypropyleneglycol diblock copolymer was used as surfactant and stabilizer. The influence of some preparative variables on the nanoparticle formation and on the loading efficiency of active agents, such as the type and concentration of stabilizing agent, the stirring methods, the water/oil phase ratio and the polymer concentration were investigated in order to control and optimize the process. After preparation of nanoparticles loaded with active agent, particle size and distribution were evaluated by the light scattering particle analyzer. The loading efficiency of active agents was evaluated by the UV-visible spectroscopy. As the results, particle size were 50-200 nm and dispersibility was monodisperse. The optimum loading efficiency of active agents was observed 50-60%. It was found that the appropriate of selections of binary solvent mixtures and polymeric concentrations in both organic and aqueous phases could provide good yield and favorable physical properties of PLGA nanoparticles.
Background: Nanoparticles (NPs) prepared from biodegradable polymers, such as poly (D,L-lactic acid-co-glycolic acid) (PLGA), have been studied as vehicles for the delivery of antigens to phagocytes. This paper describes the preparation of antigen-loaded PLGA-NPs for efficient cross-priming. Methods: NPs containing a similar amount of ovalbumin (OVA) but different sizes were produced using a micromixer-based W/O/W solvent evaporation procedure, and the efficiency of the NPs to induce the cross-presentation of OVA peptides were examined in dendritic cells (DCs). Cellular uptake and biodistribution studies were performed using fluorescein isothiocyanate (FITC)-loaded NPs in mice. Results: The NPs in the range of $1.1{\sim}1.4{\mu}m$ in size were the most and almost equally efficient in inducing the cross-presentation of OVA peptides via $H-2K^b$ molecules. Cellular uptake and biodistribution studies showed that opsonization of the NPs with mouse IgG greatly increased the percentage of FITC-positive cells in the spleen and lymph nodes. The major cell type of FITC-positive cells in the spleen was macrophages, whereas that of lymph nodes was DCs. Conclusion: These results show that IgG-opsonized PLGA-NPs with a mean size of $1.1{\mu}m$ would be the choice of biodegradable carriers for the targeted-delivery of protein antigens for cross-priming in vivo.
Objective: Pluripotent stem cell-derived lymphatic endothelial cells (LECs) show great promise in their therapeutic application in the field of regenerative medicine related to lymphatic vessels. We tested the approach of forced differentiation of mouse embryonal stem cells into LECs using biodegradable poly lactic-co-glycolic acid (PLGA) nanospheres in conjugation with growth factors (vascular endothelial growth factors [VEGF-A and VEGF-C]). Methods: We evaluated the practical use of heparin-conjugated PLGA nanoparticles (molecular weight ~15,000) in conjugation with VEGF-A/C, embryoid body (EB) formation, and LEC differentiation using immunofluorescence staining followed by quantification and quantitative real-time polymerase chain reaction analysis. Results: We showed that formation and differentiation of EB with VEGF-A/C-conjugated PLGA nanospheres, compared to direct supplementation of VEGF-A/C to the EB differentiation media, greatly improved yield of LYVE1(+) LECs. Our analyses revealed that the enhanced potential of LEC differentiation using VEGF-A/C-conjugated PLGA nanospheres was mediated by elevation of expression of the genes that are important for lymphatic vessel formation. Conclusion: Together, we not only established an improved protocol for LEC differentiation using PLGA nanospheres but also provided a platform technology for the mechanistic study of LEC development in mammals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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