The application of LFH-PCR(long flanking homology region-PCR) for Bacillus subtilis gene disruption is presented. Without plasmid- or phage-vector construction, only by PCR, based on a DNA sequence retrieved from B. subtilis genome data base, kanamycin resistance gene was inserted into two genes of B. subtilis involved in sporulation, spoIIIE and spoIIIG. The effect of gene disruption on subtilisin expression was examined and the sporulation frequency of two mutants was compared to that of the host strain. For this purpose, only 2 or 3 rounds of PCR were required with 4 primers. We first demonstrated the possibility of LFH-PCR for rapid gene disruption to characterize an unknown functional gene of B. subtilis or other prokaryote in the genomic era.
Listeria monocytogenes와 L. ivanovii는 인간과 동물에 대한 식품 유래성 병원성 세균이다. Listeria 속에는 이들 병원균 외에 비병원성세균인 L. innocua, L, welshimeri, L. seeligeri, L.grayi 등 이 포함되어 있기에, 식품검사에서 배양법을 사용하는 종래의 Listeria의 검출방법은 시간과 많은 실험을 필요로 한다. 이런 이유 등으로 Literia의 종동정과 검출을 위한 신속한 검출법으로 Lis-mix multiplex PCR검출법 (Bubert et al., 1999)이 개발되었다. 본 연구에서는 식품검사에 활용하기 위한 실용적인 Lis-mix multiplex PCR 방법을 개발하고, 아울러 새로운 Siw-mixIII PCR 검출법을 개발하였다. 이 방법을 사용하여 식품에서 분리된 총 69개의 Listeria 균주를 성공적으로 종동정할 수 있었으며, Siw-mixIII multiplex PCR방법을 사용하여 L. ivanovii, L.welshimeri, L.seeligeri를 한번의 PCR로 검출 및 종동정을 할 수 있었다.
식물 바이러스는 작물 수확량에 상당한 손실을 일으키고 작물 생산을 지속적으로 위협하여 세계 식량 안보에 심각한 위협이 된다. 그 중 tomato spotted wilt virus (TSWV)는 주로 원예작물을 감염시키는 가장 위협적인 식물 바이러스로 넓은 기주 범위를 가진다. Reverse-transcription quantitative real-time PCR (RT-qPCR)은 TSWV의 민감한 검출을 위해 널리 사용되고 있지만 표준화의 어려움으로 인해 유용성이 감소한다. 따라서 본 연구에서는 TSWV 검출을 위해 민감하고 정확한 reverse transcription droplet digital polymerase chain reaction (RT-ddPCR)을 확립하였다. TSWV 검출에 대한 RT-qPCR 및 RT-ddPCR의 민감도를 비교하였고, TSWV에 대한 RT-ddPCR의 특이성 분석은 고추에서 주로 발생하는 바이러스 및 음성 대조군에서 특이성을 확인한 결과 증폭되지 않았다. RT-ddPCR 및 RTqPCR에 의해 측정된 TSWV의 선형회귀곡선은 모두 높은 선형성을 나타냈지만, RT-ddPCR 분석이 10배 이상 더 민감하고 더 낮은 TSWV의 copy 수를 검출할 수 있었다. 종합적으로, 우리의 연구 결과는 RT-ddPCR이 TSWV 검출에 대해 높은 민감도와 특이성을 제공하고 낮은 농도의 현장 시료에서 TSWV 검출하는 데 적합하다는 것을 보여준다.
This report describes a case of severe and prolonged dermatophytosis in a hedgehog that was diagnosed by PCR-RFLP, a rapid and usefulness technique for identification of many causative agents and hereditary characters. A 5-month-old female hedgehog was presented with grade 2 facial pruritus, scaling, encrustation and hemorrhage. Cytology of exudates on the face showed a suspected fungal infection. A culture and tape imprint test of the cultured colony showed many hyphae and microcornidia, suspected to belong to the Trichophyton species. In the PCR-RFLP with MvaI and Hinf I, Trichophyton mentagrophytes var. erinacei was finally identified as a causative agent. The patient completely recovered after application of nystatin cream for 17 days.
디지털 중합효소연쇄반응(Digital PCR)은 3세대 PCR로 명명하며, 1세대인 일반 PCR과 2세대인 정량 PCR(Real-time PCR)의 단점을 보완하여 개발된 방법이다. Digital PCR System은 소량의 PCR 반응을 10만개 이상의 반응통(wall)에 적재하는 방식의 나노유체칩에서 쪼개어 증폭시킨 후, target DNA를 계수한다. Target DNA의 증폭 여부에 따라 positive(1)와 negative(0)로 digital signal처럼 받아들여 계수하고, 포아송 분포를 통해 target DNA의 copy를 계산해 최종적으로 샘플 microlitr당 Copy수로 결과 값을 확인할 수 있다. 본 연구에서는 종(種)이 다른 동물의 조직이 서로 섞여있을 때 사람의 조직을 탐색하는 방법으로 유전자 증폭을 할 경우, digital PCR의 유효성에 대해 증명하였다.
The emergence of rice black-streaked dwarf virus (RBSDV) poses a significant threat to global cereal crop cultivation, necessitating the urgent development of reliable detection and quantification techniques. This study introduces a reliable approach for the precise and sensitive quantification of the RBSDV in cereal crop samples, employing a reverse transcription digital polymerase chain reaction (RT-dPCR) assay. We assessed the specificity and sensitivity of the RT-dPCR assay proposed for precise RBSDV detection and quantification. Our findings demonstrate that RT-dPCR was specific for detection of RBSDV, with no cross-reactivity observed with other viruses infecting cereal crops. The RT-dPCR sensitivity was over 10 times that of RT-quantitative PCR (RT-qPCR). The detection limit of RT-dPCR was 0.096 copies/㎕. In addition, evaluation of RT-dPCR assay with field samples was conducted on 60 different cereal crop samples revealed that RT-dPCR (45/60) exhibited superior accuracy compared with RT-qPCR (23/60). In this study, we present a specific and accurate RT-dPCR assay for the detection and quantification of RBSDV.
The cry1 gene content of a collection of Bacillus thuringiensis strains, which include new isolates from Malaysia and Indonesia, was determined by a multiplex PCR using a set of eight oligonucleotide forward primers specific to cry1Aa, cry1Ab, cry1Ac, cry1Ba, cry1Ca, cry1Da, cry1Ea, and cry1Fa genes, and two reverse primers, one specific to cry1Ab and the other common to the remaining cry1 genes. Two-thirds of the 59 strains screened were cry1 positive and contained one to four different genes. The cry gene profiles correlated well with toxicities of the strains to lepidopteran insects. The method can be used for rapid screening of a large number of new isolates as the total DNA extracted by boiling cells from single colonies can be used directly in the PCR. However, it is not suitable for follow-up monitoring of specific commercial strains after application in the field as the PCR product profiles of these strains could not be differentiated from those of new isolates.
To achieve more accurate and rapid detection of macrolide-lincosamide-streptogramin B resistance genes, erm(A), erm(B), and erm(C), we developed a TaqMan probe-based real-time PCR (Q-PCR) method and compared it with conventional PCR (C-PCR), which is the most widely using erm gene identification method. The detection limit of Q-PCR was 5 fg of genomic DNA or 5-8 CFU of bacterial cells of Staphylococcus aureus. The utilization of Q-PCR might shorten the time to erm detection from 3-4 h to about 50 min. These data indicated that Q-PCR assay appears to be not only highly sensitive and specific, but also the most rapid diagnostic method. Therefore, the appropriate application of the Q-PCR assay will permit rapid and accurate identification of erm genes from clinical and other samples.
Wang, Bi;Yu, Lei;Yang, Guo-Zhen;Luo, Xin;Huang, Lin
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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제16권7호
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pp.3003-3007
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2015
Objective: To explore the application of multiplex nested methylated specific polymerase chain reaction (PCR) in the early diagnosis of epithelial ovarian carcinoma (EOC). Materials and Methods: Serum and fresh tissue samples were collected from 114 EOC patients. RUNX3, TFPI2 and OPCML served as target genes. Methylation levels of tissues were assessed by multiplex nested methylated specific PCR, the results being compared with those for carcinoma antigen 125 (CA125). Results: The serum free deoxyribose nucleic acid (DNA) methylation spectrum of EOC patients was completely contained in the DNA spectrum of cancer tissues, providing an accurate reflection of tumor DNA methylation conditions. Serum levels of CA125 and free DNA methylation in the EOC group were evidently higher than those in benign lesion and control groups (p<0.05). Patients with early EOC had markedly lower serum CA125 than those with advanced EOC (p<0.05), but there was no significant difference in free DNA methylation (p>0.05). The sensitivity, specificity and positive predicative value (PPV) of multiplex nested methylated specific PCR were significantly higher for detection of all patients and those with early EOC than those for CA125 (p<0.05). In the detection of patients with advanced EOC, the PPV of CA125 detection was obviously lower than that of multiplex nested methylated specific PCR (p>0.05), but there was no significant difference in sensitivity (p>0.05). Conclusions: Serum free DNA methylation can be used as a biological marker for EOC and multiplex nested methylated specific PCR should be considered for early diagnosis since it can accurately determine tumor methylation conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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