Park, Si-Hong;Kim, Hyun-Joong;Kim, Jae-Hwan;Kim, Tae-Woon;Kim, Hae-Yeong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.7
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pp.1177-1182
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2007
Bacillus cereus group bacteria share a significant degree of genetic similarity. Thus, to differentiate and identify the Bacillus cereus group efficiently, a multiplex PCR method using the gyrB and groEL genes as diagnostic markers is suggested for simultaneous detection. The assay yielded a 400 bp amplicon for the groEL gene from all the B. cereus group bacteria, and a 253 bp amplicon from B. anthracis, 475 bp amplicon from B. cereus, 299 bp amplicon from B. thuringiensis, and 604 bp amplicon from B. mycoides for the gyrB gene. No nonspecific amplicons were observed with the DNA from 29 other pathogenic bacteria. The specificity and sensitivity of the B. cereus group identification using this multiplex PCR assay were evaluated with different kinds of food samples. In conclusion, the proposed multiplex PCR is a reliable, simple, rapid, and efficient method for the simultaneous identification of B. cereus group bacteria from food samples in a single tube.
A PCR-enzyme-linked immunosorbent assay (PCR-ELISA) was developed for the rapid and sensitive detection of L. monocytogenes. PCR primers generating a 132-bp amplicon and a capture probe able to hybridize to the PCR amplicon were designed based on the L. monocytogenes-specific hly gene encoding listeriolysin. The detection limit of PCR-ELISA for L. monocytogenes was determined to be as low as 10 cells per PCR reaction, and this level of detection was achieved within 5 h. These results indicate that the PCR-ELISA provides a valuable tool for the rapid and sensitive detection of L. monocytogenes for the ready-to-eat food industry.
Kim, Jae-Hwan;Kim, Tae-Woon;Lee, Woo-Young;Park, Sun-Hee;Kim, Hae-Yeong
Food Science and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.104-109
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2007
A multiplex polymerase chain reaction (PCR) method was developed to simultaneously detect three varieties of genetically modified (GM) canola. The construct-specific primers were used to distinguish the following three varieties of GM canola; GT73, MS8xRF3, and T45, using multiplex PCR. The FatA (fatty acyl-ACP thioesterase) gene was used as an endogenous canola reference gene in the PCR detection. The primer pair Canendo-FIR containing a 105 bp amplicon was used to amplify the FatA gene and no amplified product was observed in any of the 15 different plants used as templates. The GT73-KHUF1/R1 primer recognized the 3'-flanking region of GT73, resulting in an amplicon of 125 bp. The Barstar-F1/MS8xRF3-R primer recognized the junction region of bars tar and the NOS terminator introduced into MS8xRF3, resulting in a 162 bp amplicon, and the T45-F2/R2 primer recognized the junction region of PAT and the 35S terminator introduced into T45, resulting in an amplicon of 186 bp. This multiplex PCR allowed for the detection of construct-specific targets in a genomic DNA mixture of up to 1% GM canola containing GT73, MS8xRF3, and T45.
A multiplex polymerase chain reaction (PCR) was developed for the simultaneous detection and differentiation among Vairimorpha spp. and Nosema spp. and identification of Vairimorpha necatrix from Lepidoptera insects. Three sets of primers were selected from different genomic sequences to specifically amplify an 831 bp amplicon within the SSU rRNA gene, specific for both Vairimorpha spp. and Nosema spp. (MSSR primer); a 542 bp amplicon within the SSU rRNA gene, specific for Vairimorpha spp. (VSSU primer); and a 476 bp amplicon within the actin gene, specific for Vairimorpha necatrix (VNAG primer). Using the primers in conjunction with multiplex PCR, it was possible to detect Vairimorpha spp. and Nosema spp. and to differentiate between them. The sensitivity of this PCR assay was approximately 10 spores per milliliter. It is proposed that the multiplex PCR is a sensitive, specific, and rapid tool that can serve as a useful differential diagnostic tool for detecting Vairimorpha spp. and Nosema spp. in Lepidoptera insect.
We developed and validated species-specific primers for Branchiostegus japonicus and Branchiostegus albus to prevent the sale of B. albus as B. japonicus. Primers for B. japonicus and B. albus were designed against the cytochrome b gene. Multiplex PCR showed a 288 bp amplicon for B. japonicus, a 159 bp amplicon for B. albus, and a 502 bp amplicon for the internal control. The PCR product bands for B. japonicus, B. albus, and the internal control were present at 1 ng each. The specificity and sensitivity of the primers developed in this study were validated by testing 38 B. japonicus strains and 13 B. albus strains. Using this monitoring method, fake fish did not appear due to the agreement between the experimental results and the species. Therefore, the developed multiplex PCR method was suitable for differentiating B. japonicus and B. albus.
For the specific detection of human Parvovirus B19 (HuPaV-B19), we designed ten specific PCR primers from 3,800~4,500 nucleotides of HuPaV-B19 complete genome (NC_000883.2). Seventeen candidate PCR primer sets for specific detecting HuPaV-B19 were constructed. In specific reaction of HuPaV-B19, seventeen PCR primer sets showed specific band, however five PCR primer sets were selected basis of band intensity, amplicon size and location. In non-specific reaction with seven reference viruses, four PCR primer sets showed non-specific band, however one PCR primer set is not. Detection sensitivity of final selective PCR primer set was $100fg/{\mu}L$ for 112 minute, and PCR amplicon is 539 base pairs (bp). In addition, nested PCR primer set was developed, for detection HuPaV-B19 from a low concentration of contaminated samples. Selection of nested PCR primer set was basis of sensitivity and groundwater sample tests. Detection sensitivity of final selective PCR and nested PCR primer sets for the detection of HuPaV-B19 were $100fg/{\mu}L$ and $100ag/{\mu}L$ basis of HuPaV-B19 plasmid, it was able to rapid and highly sensitive detection of HuPaV-B19 than previous reports. We expect developed PCR primer set in this study will used for detection of HuPaV-B19 in various samples.
A multiplex polymerase chain reaction (PCR) method was developed to simultaneously detect 3 events of genetically modified (GM) maize. The event-specific primers were used to discriminate the following 3 events of GM maize (DAS-59122-7, TC6275, and MIR604) using multiplex PCR method. The zein gene was used as an endogenous maize reference gene in the multiplex PCR detection. The primer pair Zein-FIR producing a 99 bp amplicon was used to amplify the zein gene. The primer JI-Das-F1/R1 for DAS-59122-7, JI-TC6275-F3/R3 for TC6275, and JI-MIR F1/R1 for MIR604 yielded an amplicon of 130, 162, and 197 bp, respectively. The detection limit of multiplex PCR was 1% for DAS-59122-7, TC6275, and MIR604 for one reaction.
Hee-Yeon Park;Yoonji Noh;Eung-Soo Kim;Hyun-Chul Park
Analytical Science and Technology
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v.37
no.3
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pp.189-199
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2024
In forensic genetics, when it is not possible to confirm an individual's identity through STR profile analysis, additional information about the individual can be obtained using DNA-based phenotypic traits estimation. Recently, various researches have been conducted on methods to determine externally visible characteristics (EVC) such as eyes, hair, and skin color. However, relying solely on such phenotypic traits information has limitations for application in East Asian regions, including Korea. In this study, in order to utilize EVC related to an individual's appearance as investigative information, SNPs related to eye shape, hair thickness, skin color, as well as baldness, body type, high myopia, facial shape, acne, and behavioral habits were explored. A total of 50 SNPs were selected, and a targeted amplicon NGS panel capable of amplifying them all at once was developed. Experimental results confirmed the allelic types and frequencies of the 50 SNPs in 14 samples. We plan to use this panel to investigate the correlation between genotype and phenotype using various samples, and to develop methods for interpreting the results.
Soil microbial communities are immensely diverse and complex with respect to species richness and community size. These communities play essential roles in agricultural soil because they are responsible for most of the nutrient cycles in the soil and influence the plant diversity and productivity. However, the majority of these microbes remain uncharacterized because of poor culturability. Next-generation sequencing techniques have revolutionized many areas of biology by providing cheaper and faster alternatives to Sanger sequencing. Among them, amplicon pyrosequencing is a powerful tool developed by 454 Life Sciences for assessing the diversity of complex microbial communities by sequencing PCR products or amplicons. This review summarizes the current opinions in amplicon sequencing of soil microbial communities, and provides practical guidance and advice on sequence quality control, aligning, clustering, OTU- and taxon-based analysis. The last section of this article includes a few representative studies conducted using amplicon pyrosequencing.
Kim, Jae-Hwan;Ahn, Ji-Hye;Song, Hee-Sung;Kim, Kyung-Hwan;Kim, Dong-Hern;Kim, Hae-Yeong
Applied Biological Chemistry
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v.49
no.3
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pp.192-195
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2006
For the development of a qualitative PCR detection method for genetically modified perilla (Perilla frutescens), perilla species-specific gene, KAS-I (Beta-ketoacyl-ACP synthase I), was selected and validated as suitable for the use as an endogenous reference gene in perilla. Primer specificity was first tested by the means of qualitative PCR analysis. The primer pair Pfru3-F/R amplifying the perilla endogenous gene, KAS-I, gave rise to an amplicon 95 bp. No amplified product was observed when DNA samples from 15 different plants were used as templates. Qualitative PCR detection method was assayed with vitamin E-enriched GM Perilla developed in Korea. For the qualitative PCR detection method, the construct-specific detection primer pairs were constructed. The primer pair TMTO-F/R amplifying the junction region of TMT (${\gamma}$-tocopherol methyltransferase) gene and OCS (Octopine synthase) terminator introduced in GM perilla gave rise to an amplicon 148 bp.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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