Human enteric Adenovirus-41 (HuEAdV-41) causes gastroenteritis, which detected by the polymerase chain reaction (PCR) base diagnostic system for clinical, food, environmental, fish and shellfish samples. We developed improved PCR and nested PCR primer set which had high specificity, sensitivity and reduced times. In this study, we compared seventeen conditions reported in the previous study that was using the PCR based HuEAdV-41 detection system, and non-enteric Adenovirus were detected in nine conditions. The most sensitive detection condition was up to 25 copies however it took 184 minutes of PCR reaction time. In this study, the PCR primer set developed had same level of sensitivity, it reduced the time of detection for clinical, food and seafood samples to 112 minutes. Developed nested PCR primer set needed 112 minutes but detected up to approximately 1 copy. In addition, developed PCR and nested PCR primer set was validated with twenty samples of underground water at random, of which ten samples showed specific band without non-specific reaction. We expect this study will be used to diagnose HuEAdV-41 from various samples.
Proviral DNAs from HIV-1-infected CD4+ T cells (Molt/LAV cells) were amplified and detected in infected individual cells using polymerase chain reaction and in rifu hybridization. In this in situ PCR, three parameters were considered to achieve effective amplification and retention of amplificants inside the cells by making high molecular weight PCR products intracellularly, forming agarose matrix against the cells, and maintaining the appropriate PCR temperature profile. Over the cycles of ampliHcationl tailed primers with complementary overhanging sequences at their 5' sides manufactured high molecular weight products by using short primary products as a repeating unit. Agarose matrix could prevent the diffusion of the amplificants from the cells. Use of Thermanox coverslip inside the PCR tube offered target cells a similar temperature profile to that of conventional PCR in solution.
The reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) was used for the detection of bovine coronavirus (BCV) in fecal samples by using reverse transcriptase and two primers which flanked M gene sequence of 407bp. RT-PCR detected bovine coronavirus specifically, but did not detect mouse hepatitis virus (MHV), transmissible gastroenteritis virus (TGEV), and bovine rotavirus (BRV). The M gene sequences of MHV are homologus to that of BCV, but minor differences exist in the primer regions, preventing annealing of the primers. Detection of BCV using RT-PCR was compared with ELISA and the agreement of BCV detection by RT-PCR and ELISA was 95.3%. RNA detection in positive clinical specimens was significantly better by PCR than immunological detection of BCV by ELISA.
Background: Angelica gigas, A. sinensis, and A. acutiloba are commercially important in the herbal medicine market, and among them, A. gigas has the highest economic value and price. However, their similar morphological traits are often used for fraud. Despite their importance in herbal medicine, recognition of the differences between Angelica species is currently inadequate. Methods and Results: A multiplex polymerase chain reaction (PCR) method was developed for direct detection and identification of A. gigas, A. sinensis, and A. acutiloba. The gene for the distinction of species was targeted at ITS in the nucleus and trnC-petN gene in chloroplasts. The optimized multiplex PCR in the present study utilized each Angelica species-specific primer pairs. Each primer pair yielded products of 229 base pairs (bp) for A. gigas, 53 bp for A. sinensis, 170 bp for A. acutiloba. Additionally non-specific PCR products were not detected in similar species by species-specific primers. Conclusions: In the present study, a multiplex-PCR assay, successfully assessed the authenticity of Angelica species (A. gigas, A. sinensis, and A. acutiloba). and whole genome amplification (WGA) was performed after DNA extraction to identify, the species in the product. The detection method of raw materials developed in the present study could be applied to herbal medicine and health functional food management.
본 연구는 methicillin 내성 Staphylococcus aureus (MRSA)에 특이적인 유전자인 mecA 유전자를 검출하기 위하여 전라북도의 두 병원에서 황색포도상구균 31주를 분리하였다. 이중 penicillin에 내성인 20균주를 디스크 확산법을 이용하여 methicillin, oxacillin, ampicillin, vancomycin, penicillin에 대한 다약제 내성 성상을 확인하였고, 중합효소 연쇄반응(PCR)을 이용하여 mecA 유전자를 확인하였다. 디스크 확산법을 실시한 결과 methicillin 내성균주는 20균주 중 10주 (50%)였다. Methicillin에 내성인 10균주를 PCR법으로 확인한 결과 7주에서 554 bp의 DNA증폭이 관찰되어 mecA 유전자가 존재함을 확인하였다.
In this work, thermal design of a PCR chip for LOC is systematically conducted. From the numerical simulation of a PCR chip based on the finite volume method, how to control the average temperature of a PCR chip and the temperature difference between the denaturation zone and the annealing zone is presented. The average temperature is shown to be controlled by adjusting heat input and a cooler as well as a heater is shown to be necessary to obtain three individual temperature zones for polymerase chain reaction. To reduce the time required, a heat sink for the cooler is not included in the calculation domain for the PCR chip and heat sink design is conducted separately by using a compact modeling method, the porous medium approach.
The present study was carried out for the rapid and accurate detection of Anaplasma marginale in cattle using Polymerase Chain Reaction. One pair of primer, BAP-2 and AL34S, were designed to amplify a 409 Up fragment of the A marginale membrane surface protein encoding beta($msp{\beta}l$) gene with a hilly sensitive and specific PCR. A marginale isolated from naturally infected calf in Chonbuk area were used to obtain target genomic DNA for PCR. This study showed that a 409 bp of $msp{\beta}l$ gene fragment could be detected as little as 15 fg of purified A marginale genomic DNA. The amplified fragment with PCR was checked for the identification of $msp{\beta}l$ gene by enzyme restriction and sequencing. Also, the target DNA extracted directly from blood were used in the PCR reactions without prior purification to shorten the detection time. The PCR in the present study was considered convenient and rapid method for the detection of A marginale in whole blood of infected cattle.
The purpose of this study was to develop Peptoniphilus mikwangii-specific quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) primers based on the 16S ribosomal RNA (16S rDNA) gene. The specificity of the primers was determined by conventional PCR using 29 strains of 27 oral bacterial species including P. mikwangii. The sensitivity of the primers was determined by qPCR using the purified genomic DNA of P. mikwangii KCOM $1628^T$ (40 ng to 4 fg). The data showed that the qPCR primers (RTB134-F4/RTB134-R4) could detect P. mikwangii strains exclusively and as little as 40 fg of the genomic DNA of P. mikwangii KCOM $1628^T$. These results suggest that the developed qPCR primer pair can be useful for detecting P. mikwangii in epidemiological studies of oral bacterial infectious diseases.
In this study, we try to establish the rapid and specific detection system for Salmonella species. The PhoE gene of Salmonella species was amplified with two specific primers, ST5 and ST8c, using PCR. The probe prepared from the amplified PhoE gene was sequenced and applied for Southern blot analysis. After PCR with ST5 and ST8c primers for PhoE gene, DNA bands of expected size(365bp) from 7 different Salmonella species were detected, but not from 12 enterobacteriaceae and 3 gram positive bacteria. PCR was highly sensitive to detect up to 10fg of purified DNA template and to identify Salmonella species with only 320 heat-lysed bacterial cells. The inhibition of PCR amplification from stool specimen was occurred with 50-fold dilution but disappeared over 100 fold dilution of samples. It was confirmed that the PhoE genes were amplified and cloned with over 97% nacleotide sequence homology of PCR products compared with that of S. typhfmurium LT2. The DNA probe derived from S. typhimurium TA 3,000 showed highly specific and sensitive reaction with PCR products of all tested Salmonella species. These results indicate that PCR was rapid and sensitive detection method for Salmonella species and DNA probe prepared from S. typhimurium TA 3,000 was specific to identify PCR products of different Salmonella species.
Based upon the nucleotide sequence of As strain of cucumber mosaic virus (CMV-As0 RNA4, coat protein (CP) gene was selected for the design of oligonucleotide primers of polymerase chain reaction (PCR) for detection and identification of the virus. Reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) was performed with a set of 18-mer CMV CP-specific primers to amplify a 671 bp fragment from crude nucleic acid extracts of virus-infected leaf tissues as well as purified viral RNAs. The minimum concentrations of template viral RNA and crude nucleic acids from infected tobacco tissue required to detect the virus were 1.0 fg and 1:65,536 (w/v), respectively. No PCR product was obtained when potato virus Y-VN RNA or extracts of healthy plants were used as templates in RT-PCR using the same primers. The RT-PCR detected CMV-Y strain as well as CMV-As strain. Restriction analysis of the two individual PCR amplified DNA fragments from CMV-As and CMV-Y strains showed distinct polymorphic patterns. PCR product from CMV-As has a single recognition site for EcoRI and EcoRV, respectively, and the product from CMV-Y has no site for EcoRI or EcoRV but only one site for HindIII. The RT-PCR was able to detect the virus in the tissues of infected pepper, tomato and Chinese cabbage plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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