The purpose of this study was to investigate the effect of Bee Venom on the lipopolysaccharide(LPS), sodium nitroprusside(SNP), hydrogen peroxide($H_2O_2$)-induced expressions of cyclooxygenase-2(COX-2), p38, jun N-terminal Kinase(JNK) and extra-signal response kinase(ERK) in RAW 264.7 cells, a murine macrophage cell line. Method : The expressions of COX-2, p38, JNK and ERK were determined by western blotting with corresponding antibodies. Results : 1. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly LPS and SNP-induced expression of COX-2 compared with control, respectively. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited insignificantly $H_2O_2$-induced expression of COX-2 compared with control, respectively. 2. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly LPS, SNP and $H_2O_2$-induced expression of p38 compared with control, respectively. 3. The 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly SNP-induced expression of JNK compared with control, respectively. All of bee venom inhibited insignificantly LPS and $H_2O_2$-induced expression of JNK compared with control, respectively. 4. The $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited significantly SNP-induced expression of ERK, the $0.5\;{\mu}g/ml$ of bee venom increased significantly $H_2O_2$-induced expression of ERK compared with control. The 0.5, 1 and $5\;{\mu}g/ml$ of bee venom inhibited insignificantly LPS-induced expression of ERK compared with control, respectively.
Skeletal muscle atrophy is a common phenomenon during the prolonged muscle disuse caused by cast immobilization, extended aging states, bed rest, space flight, or other factors. However, the cellular mechanisms of the atrophic process are poorly understood. In this study, we investigated the involvement of mitogen-activated protein kinase (MAPK) in the expression of muscle-specific RING finger 1 (MuRF1) during atrophy of the rat gastrocnemius muscle. Histological analysis revealed that cast immobilization induced the atrophy of the gastrocnemius muscle, with diminution of muscle weight and cross-sectional area after 14 days. Cast immobilization significantly elevated the expression of MuRF1 and the phosphorylation of p38 MAPK. The starvation of L6 rat skeletal myoblasts under serum-free conditions induced the phosphorylation of p38 MAPK and the characteristics typical of cast-immobilized gastrocnemius muscle. The expression of MuRF1 was also elevated in serum-starved L6 myoblasts, but was significantly attenuated by SB203580, an inhibitor of p38 MAPK. Changes in the sizes of L6 myoblasts in response to starvation were also reversed by their transfection with MuRF1 small interfering RNA or treatment with SB203580. From these results, we suggest that the expression of MuRF1 in cast-immobilized atrophy is regulated by p38 MAPK in rat gastrocnemius muscles.
Although previous studies have demonstrated that BMP9 is highly capable of inducing osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells, the molecular mechanism involved remains to be fully elucidated. In this study, we showed that BMP9 simultaneously promotes the activation of Smad1/5/8, p38 and ERK1/2 in C3H10T1/2 cells. Knockdown of Smad4 with RNA interference reduced nuclear translocation of Smad1/5/8, and disrupted BMP9-induced osteogenic differentiation. BMP9-induced osteogenic differentiation was blocked by p38 inhibitor SB203580, whereas enhanced by ERK1/2 inhibitor PD98059. SB203580 decreased BMP9-activated Smads singling, and yet PD98059 stimulated Smads singling in C3H10T1/2 cells. The effects of inhibitor were reproduced with adenovirus expressing siRNA targeted p38 and ERK1/2, respectively. Taken together, our findings revealed that Smads, p38 and ERK1/2 are involved in BMP9-induced osteogenic differentiation. Also, it is noteworthy that p38 and ERK1/2 may play opposing regulatory roles in mediating BMP9-induced osteogenic differentiation of C3H10T1/2 cells.
Mitogen-activated protein kinase (MAPK) is an important signaling pathway in living beings in response to extracellular stimuli. There are 5 main subgroups manipulating by a set of sequential actions: ERK(ERK1/ERK2), c-Jun N(JNK/SAPK), p38 MAPK($p38{\alpha}$, $p38{\beta}$, $p38{\gamma}$ and $p38{\delta}$), and ERK3/ERK4/ERK5. When stimulated, factors of upstream or downstream change, and by interacting with each other, these groups have long been recognized to be related to multiple biologic processes such as cell proliferation, differentiation, death, migration, invasion and inflammation. However, once abnormally activated, cancer may occur. Several components of the MAPK network have already been proposed as targets in cancer therapy, such as p38, JNK, ERK, MEK, RAF, RAS, and DUSP1. Among them, alteration of the RAS-RAF-MEK-ERK-MAPK(RAS-MAPK) pathway has frequently been reported in human cancer as a result of abnormal activation of receptor tyrosine kinases or gain-of-function mutations in genes. The reported roles of MAPK signaling in apoptotic cell death are controversial, so that further in-depth investigations are needed to address these controversies. Based on an extensive analysis of published data, the goal of this review is to provide an overview on recent studies about the mechanism of MAP kinases, and how it generates certain tumors, as well as related treatments.
Kim, Shi-Yeon;Min, Kyoung-Jin;Joe, Eun-Hye;Min, Do-Sik
한국식물생명공학회:학술대회논문집
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한국식물생명공학회 2004년도 생명공학 실용화를 위한 비젼
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pp.74-79
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2004
Little is known about the effect of epigallocatechin-3 gallate (ESCG), a major constituent of green tea, on the expression of cyclooxygenase (COX)-2. Here, we studied the role of phospholipase D (PLD) isozymes in EGCG-induced COX-2 expression. Stimulation of human astrocytoma cells (U87) with EGCG induced formation of phosphatidylbutanol, a specific product of PLD activity, and synthesis of COX-2protein and its product, prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$). Pretreatment of cells with 1-butanol, but not 3-butanol, suppressed EGCG-induced COX-2 expression and $PGE_2$ synthesis. Furthermore, evidence that PLD was involved in EGCG-induced COX-2 expression w3s provided by the observations that COX-2 expression was stimulated by over-expression of PLD1 or PLD2 isozymes and treatment with phosphatidic acid(PA), and that prevention of PA dephosphorylation by 1-propranolol significantly potentiated COX-2expression Induced by EGCG. EGCG induced activation of p38 mitogen-activated protein kinase (p38MAPK), and specific Inhibition of p38 MAPK dramatically abolished EGCG-Induced PLD activation, COX-2 expression, and $PGE_2$ formation. Moreover, protein kinase C (PKC) inhibition suppressed EGCG-induced p38 MAPK activation, COX-2 expression, and $PGE_2$ accumulation. The same pathways as those obtained in the astrocytoma cells were active in primary rat astrocytes, suggesting the relevance of the findings. Collectively, our results demonstrate for the first time that PLD isozymes mediate EGCG-induced COX-2 expression through PKC and p38 in immortalized astroglial line and normal astrocyte cells.
Purpose : This study is to examine the ability of Rhizoma Scirpi (RS) to induce HeLa cell viability. Methods : We culture HeLa cell which is human metrocarcinoma cell in D-MEM included 10% fetal bovine serum(Hyclone Laboratories) below $37^{\circ}C$, 5% CO2. Then we observed apoptosis of log phage cell which is changed cultivation liquid 24 Hours periodically. Results : 1. RS induces mitochondria membrane potential collapse. 2. P38 MAPK is involved in RS-induced death in HeLa cells. 3. P38 MAPK is involved in RS-induced apoptosis in HeLa cells. 4. P38 MAPK reguates RS-induced caspase-3, -8 and -9 activation in HeLa cells. 5. The inhibition of caspase regulates RS-induced cell death in HeLa cells. 6. RS induces mitochondria membrane potential collapse in HeLa cells. 7. P38 MPK is involved in the regulation of Bcl-2 and Bfu in HeLa cells.8. RS regulates the expression of Bcl-2 and Bax in HeLa cells. 9. SR induces p38 MAPK activation in HeLa cells. Conclusion : RS induces apoptosis in HeLa cells via p38 MAPK activation.
The pro-inflammatory cytokines tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF${\alpha}$) and interleukin (IL)-$1{\beta}$ are crucial mediators involved in chronic inflammatory diseases. Inflammatory signal pathways regulate inflammatory cytokine expression-mediated by p38 mitogen activated protein kinase (p38MAPK). Therefore, considerable attention has been given to p38MAPK as a target molecule for the development of a novel anti-inflammatory therapeutics. BIRB 796, one of p38MAPK inhibitor, is a candidate of therapeutic drug for chronic inflammatory diseases. In this study, we investigated the effect of BIRB 796 on inflammatory cytokine productions by lipopolysaccharide (LPS) in different immune cell types. BIRB 796 reduced LPS-mediated IL-8 production in THP-1 cells but not in Raw 264.7 cells. Further analysis of signal molecules by western blot revealed that BIRB 796 sufficiently suppressed LPS-mediated phosphorylation of p38MAPK in both cell types whereas it failed to block inhibitor of kappa B (I-${\kappa}B$) degradation in Raw 264.7 cells. Taken together, these results suggest that the anti-inflammatory function of BIRB 796 depends on cell types.
Tumor necrosis factor alpha (TNF-α) is a principal regulator of inflammation and immunity. The proinflammatory properties of TNF-α can be attributed to its ability to activate the enzyme cytosolic phospholipase A2 (cPLA2), which generates potent inflammatory lipid mediators, eicosanoids. L-glutamine (Gln) plays physiologically important roles in various metabolic processes. We have reported that Gln has a potent anti-inflammatory activity via rapid upregulation of mitogen-activated protein kinases (MAPKs) phosphatase (MKP)-1, which preferentially dephosphorylates the key proinflammatory enzymes, p38 MAPK and cytosolic phospholipase A2 (cPLA2). In this study, we have investigated whether Gln could inhibit TNF-α-induced cPLA2 activation. Gln inhibited TNF-α-induced increases in cPLA2 phosphorylation in the lungs and blood levels of the cPLA2 metabolites, leukotrine B4 (LTB4) (lipoxygenase metabolite) and prostaglandin E2 (PGE2) (cyclooxygenase metabolite). TNF-α increased p38 and cPLA2 phosphorylation and blood levels of LTB4 and PGE2, which were blocked by the p38 inhibitor SB202190. Gln inhibited TNF-α-induced p38 and cPLA2 phosphorylation and production of the cPLA2 metabolites. Such inhibitory activity of Gln was no longer observed in MKP-1 small interfering RNA-pretreated animals. Our data indicate that Gln inhibited TNF-α-induced cPLA2 phosphorylation through MKP-1 induction/p38 inhibition, and suggest that the utility of Gln in inflammatory diseases in which TNF-α plays a major role in their pathogenesis.
Oral bacterial infections substantially affect the development of various periodontal diseases and oral cancers. However, the molecular mechanisms underlying the association between Fusobacterium nucleatum (F. nucleatum ), a major periodontitis (PT)-associated pathogen, and these diseases require extensive research. Previously, our RNA-sequencing analysis identified a few hundred differentially expressed genes in patients with PT and peri-implantitis (PI) than in healthy controls. Thus, in the present study using oral squamous cell carcinoma (OSCC) cells, we aimed to evaluate the effect of F. nucleatum infection on genes that are differentially regulated in patients with PT and PI. Human oral squamous cell carcinoma cell lines OSC-2O, HSC-4, and HN22 were used. These cells were infected with F. nucleatum at a multiplicity of infection of 100 for 3 hours at 37℃ in 5% CO2. Gene expression was then measured using reverse-transcription polymerase chain reaction. Among 18 genes tested, the expression of CSF3, an inflammation-related cytokine, was increased by F. nucleatum infection. Additionally, F. nucleatum infection increased the phosphorylation of AKT, p38 MAPK, and JNK in OSC-20 cells. Treatment with p38 MAPK (SB202190) and JNK (SP600125) inhibitors reduced the enhanced CSF3 expression induced by F. nucleatum infection. Overall, this study demonstrated that F. nucleatum promotes CSF3 expression in OSCC cells through p38 MAPK and JNK signaling pathways, suggesting that p38 MAPK and JNK inhibitors may help treat F. nucleatum-related periodontal diseases by suppressing CSF3 expression.
Dexmedetomidine displays multiple mechanisms of neuroprotection in ameliorating ischemic brain injury. In this study, we explored the beneficial effects of dexmedetomidine on blood-brain barrier (BBB) integrity and neuroinflammation in cerebral ischemia/reperfusion injury. Sprague-Dawley rats were subjected to middle cerebral artery occlusion (MCAO) for 1.5 h and reperfusion for 24 h to establish a rat model of cerebral ischemia/reperfusion injury. Dexmedetomidine (9 ㎍/kg) was administered to rats 30 min after MCAO through intravenous injection, and SB203580 (a p38 MAPK inhibitor, 200 ㎍/kg) was injected intraperitoneally 30 min before MCAO. Brain damages were evaluated by 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride staining, hematoxylin-eosin staining, Nissl staining, and brain water content assessment. BBB permeability was examined by Evans blue staining. Expression levels of claudin-5, zonula occludens-1, occludin, and matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) as well as M1/M2 phenotypes-associated markers were assessed using immunofluorescence, RT-qPCR, Western blotting, and gelatin zymography. Enzyme-linked immunosorbent assay was used to examine inflammatory cytokine levels. We found that dexmedetomidine or SB203580 attenuated infarct volume, brain edema, BBB permeability, and neuroinflammation, and promoted M2 microglial polarization after cerebral ischemia/reperfusion injury. Increased MMP-9 activity by ischemia/reperfusion injury was inhibited by dexmedetomidine or SB203580. Dexmedetomidine inhibited the activation of the ERK, JNK, and p38 MAPK pathways. Moreover, activation of JNK or p38 MAPK reversed the protective effects of dexmedetomidine against ischemic brain injury. Overall, dexmedetomidine ameliorated brain injury by alleviating BBB permeability and promoting M2 polarization in experimental cerebral ischemia/reperfusion injury model by inhibiting the activation of JNK and p38 MAPK pathways.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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