Curcumin (diferuloylmethane), a pigment derived from turmeric, has anti-oxidant and anti-inflammatory activities. Accumulating evidence points to a biochemical link between increased oxidative stress and reduced bone density. Osteoclast formation was evaluated in co-cultures of bone marrow stromal cells (BMSC) and whole bone marrow cells (BMC). Expression of receptor activator of nuclear factor-${\kappa}B$ ligand (RANKL) was analyzed at the mRNA and protein levels. Exposure to curcumin led to dose-dependent suppression of osteoclastogenesis in the co-culture system, and to reduced expression of RANKL in $IL-1{\alpha}$-stimulated BMSCs. Addition of RANKL abolished the inhibition of osteoclastogenesis by curcumin, whereas the addition of prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) did not. The decreased osteoclastogenesis induced by curcumin may reduce bone loss and be of potential benefit in preventing and/or attenuating osteoporosis.
We previously showed that γ-glutamyltranspeptidase (GGT), an enzyme involved in glutathione metabolism, in Bacillus subtilis acts as a virulence factor for osteoclastogenesis via the RANKL-dependent pathway. Hence, it can be hypothesized that GGT of periodontopathic bacteria acts as a virulence factor in bone destruction. Because Fusobacterium nucleatum, which is a periodontopathic pathogen, has GGT with a primary structure similar to that of B. subtilis GGT (37.7% identify), the bone-resorbing activity of F. nucleatum GGT was examined here. Recombinant GGT (rGGT) of F. nucleatum was expressed in Escherichia coli and purified using the His tag of rGGT. F. nucleatum rGGT (Fn rGGT) was expressed as a precursor of GGT, and then processed to a heavy subunit and a light subunit, which is characteristic of general GGTs, including the human and B. subtilis enzymes. Osteoclastogenesis was achieved in a co-culture system of mouse calvaria-derived osteoblasts and bone marrow cells. Fn rGGT induced osteoclastogenesis to a level similar to that of B. subtilis rGGT; furthermore, osteoclastogenesis was induced in a dose-dependent manner. These results suggest that F. nucleatum GGT possesses a virulent bone-resorbing activity, which could play an important role in the pathogenesis of periodontitis.
Bone remodeling is a process controlled by the action of two major bone cells; the bone forming osteoblast and the bone resorbing osteoclast. In the process of osteoclastogenesis, stromal cells and osteoblast produce RANKL, OPG, and M-CSF, which in turn regulate the osteoclastogenesis. During the bone resorption by activated osteoclasts, extracellular $Ca^{2+}/{PO_4}^{2-}$ concentration and degraded organic materials goes up, providing the hypertonic microenvironment. In this study, we tested the effects of hypertonicity due to the degraded organic materials on osteoclastogenesis in co-culture system. It was examined the cellular response of osteoblastic cell in terms of osteoclastogenesis by applying the sucrose, and mannitol, as a substitute of degraded organic materials to co-culture system. Apart from the sucrose, mannitol, and NaCl was tested to be compared to the effect of organic osmotic particles. The addition of sucrose and mannitol (25, 50, 100, 150, or 200 mM) to co-culture medium inhibited the number of tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) positive multinucleated cells induced by 10 nM $1{\alpha},25(OH)_2vitaminD_3$ ($1{\alpha},25(OH)_2D_3$). However, NaCl did exert harmful effect upon the cells in this co-culture system, which is attributed to DNA damage in high concentration of NaCl. To further investigate the mechanism by which hypertonicity inhibits $1{\alpha},25(OH)_2D_3$-induced osteoclastogenesis, the mRNA expressions of receptor activator of nuclear factor (NF)-kB ligand (RANKL) and osteoprotegerin (OPG) were monitored by RT-PCR. In the presence of sucrose (50 mM), RANKL mRNA expression was decreased in a dose-dependent manner, while the change in OPG and M-CSF mRNA were not occurred in significantly. The RANKL mRNA expression was inhibited for 48 hours in the presence of sucrose (50 mM), but such a decrement recovered after 72 hours. However, there were no considerable changes in the expression of OPG and M-CSF mRNA. Conclusively, these findings strongly suggest that hypertonic stress down-regulates $1{\alpha},25(OH)_2D_3$-induced osteoclastogenesis via RANKL signal pathway in osteoblastic cell, and may playa pivotal role as a regulator that modulates osteoclastogenesis.
Humanin (HN) is a mitochondrial peptide that exhibits cytoprotective actions against various stresses and diseases. HN has been shown to induce the phosphorylation of AMP-activated protein kinase (AMPK), which is a negative regulator of receptor activator of nuclear factor-${\kappa}B$ ligand (RANKL). However, the role of HN in osteoclastogenesis or other skeletal disorders remains unknown. Here, we examined whether HN regulates osteoclastogenesis via AMPK activation using bone marrow-derived macrophage (BMM) cultures. Our results show that HN inhibited RANKL-induced osteoclast formation and reduced the expression of genes involved in osteoclastogenesis, including nuclear factor of activated T-cells cytoplasmic 1, osteoclastassociated receptor, cathepsin K, and tartrate-resistant acid phosphatase. Moreover, HN increased the levels of phosphorylated AMPK protein; compound C, an AMPK inhibitor, recovered HN-induced osteoclast differentiation. In addition, we found that HN significantly decreased the levels of RANKL-induced reactive oxygen species in BMMs. Therefore, these results indicate that HN plays an important role in osteoclastogenesis and may function as an inhibitor of bone disorders via AMPK activation.
Kim, Soo-Jin;Kang, So-Young;Shin, Hyun-Hee;Choi, Hye-Seon
Molecules and Cells
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제20권3호
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pp.364-370
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2005
We show that sulforaphane inhibits osteoclastogenesis in the presence of macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) and receptor for activation of nuclear factor-${\kappa}B$ ligand (RANKL) in osteoclast (OC) precursors. Sulforaphane, an aliphatic isothiocyanate, is a known cancer chemo-preventative agent with anti-oxidative properties. Nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$) is a critical transcription factor in RANKL-induced osteoclastogenesis, and electrophoretic mobility shift assays (EMSAs) and assay of NF-${\kappa}B$-mediated secreted alkaline phosphatase (SEAP) revealed that sulforaphane selectively inhibited NF-${\kappa}B$ activation induced by RANKL. Inhibition may involve interaction of sulforaphane with thiol groups, since it was prevented by reducing agents.
Receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand (RANKL) triggers the differentiation of bone marrow-derived monocyte/macrophage precursor cells (BMMs) of hematopoietic origin into osteoclasts through the activation of mitogen-activated protein (MAP) kinases and transcription factors. Recently, reactive oxygen species (ROS) and antioxidant enzymes were shown to be closely associated with RANKL-mediated osteoclast differentiation. Although glutaredoxin2 (Glrx2) plays a role in cellular redox homeostasis, its role in RANKL-mediated osteoclastogenesis is unclear. We found that Glrx2 isoform b (Glrx2b) expression is induced during RANKLmediated osteoclastogenesis. Over-expression of Glrx2b strongly enhanced RANKL- mediated osteoclastogenesis. In addition, Glrx2b-transduced BMMs enhanced the expression of key transcription factors c-Fos and NFATc1, but pre-treatment with SB203580, a p38-specific inhibitor, completely blocked this enhancement. Conversely, down-regulation of Glrx2b decreased RANKL- mediated osteoclastogenesis and the expression of c-Fos and NFATc1 proteins. Also, Glrx2b down-regulation attenuated the RANKL-induced activation of p38. Taken together, these results suggest that Glrx2b enhances RANKL-induced osteoclastogenesis via p38 activation.
Heme oxygenase (HO-1) catalyzes heme to carbon monoxide (CO), biliverdin/bilirubin, and iron and is known to prevent the pathogenesis of several human diseases. We assessed the beneficial effect of heme degradation products on osteoclastogenesis induced by receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand (RANKL). Treatment of RAW264.7 cells with CORM-2 (a CO donor) and bilirubin, but not with iron, decreased RANKL-induced osteoclastogenesis, with CORM-2 having a more potent anti-osteogenic effect. CORM-2 also inhibited RANKL-induced osteoclastogenesis and osteoclastic resorption activity in marrow-derived macrophages. Treatment with hemin, a HO-1 inducer, strongly inhibited RANKL-induced osteoclastogenesis in wild-type macrophages, but was ineffective in $HO-1^{+/-}$ cells. CORM-2 reduced RANKL-induced NFATc1 expression by inhibiting IKK-dependent NF-${\kappa}B$ activation and reactive oxygen species production. These results suggest that CO potently inhibits RANKL-induced osteoclastogenesis by inhibiting redox-sensitive NF-${\kappa}B$-mediated NFATc1 expression. Our findings indicate that HO-1/CO can act as an anti-resorption agent and reduce bone loss by blocking osteoclast differentiation.
The receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand (RANKL) signal is an activator of tumor necrosis factor receptor-associated factor 6 (TRAF6), which leads to the activation of NF-${\kappa}B$ and other signal transduction pathways essential for osteoclastogenesis, such as $Ca^{2+}$ signaling. However, the intracellular levels of inositol 1,4,5-trisphosphate ($IP_3$) and $IP_3$-mediated cellular function of RANKL during osteoclastogenesis are not known. In the present study, we determined the levels of $IP_3$ and evaluated $IP_3$-mediated osteoclast differentiation and osteoclast activity by RANKL treatment of mouse leukemic macrophage cells (RAW 264.7) and mouse bone marrow-derived monocyte/macrophage precursor cells (BMMs). During osteoclastogenesis, the expression levels of $Ca^{2+}$ signaling proteins such as $IP_3$ receptors ($IP_3Rs$), plasma membrane $Ca^{2+}$ ATPase, and sarco/endoplasmic reticulum $Ca^{2+}$ ATPase type2 did not change by RANKL treatment for up to 6 days in both cell types. At 24 h after RANKL treatment, a higher steady-state level of $IP_3$ was observed in RAW264.7 cells transfected with green fluorescent protein (GFP)-tagged pleckstrin homology (PH) domains of phospholipase C (PLC) ${\delta}$, a probe specifically detecting intracellular $IP_3$ levels. In BMMs, the inhibition of PLC with U73122 [a specific inhibitor of phospholipase C (PLC)[ and of $IP_3Rs$ with 2-aminoethoxydiphenyl borate (2APB; a non-specific inhibitor of $IP_3Rs$) inhibited the generation of RANKL-induced multinucleated cells and decreased the bone-resorption rate in dentin slice, respectively. These results suggest that intracellular $IP_3$ levels and the $IP_3$-mediated signaling pathway play an important role in RANKL-induced osteoclastogenesis.
Yang, Yu-Mi;Jung, Hwi-Hoon;Lee, Sung Jun;Choi, Hyung-Jun;Kim, Min Seuk;Shin, Dong Min
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권1호
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pp.65-71
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2013
The transient receptor potential melastatin type 7 (TRPM7) channel is a widely expressed non-selective cation channel with fusion to the C-terminal alpha kinase domain and regarded as a key regulator of whole body $Mg^{2+}$ homeostasis in mammals. However, the roles of TRPM7 during osteoclastogenesis in RAW264.7 cells and bone marrow-derived monocyte/macrophage precursor cells (BMMs) are not clear. In the present study, we investigate the roles of TRPM7 in osteoclastogenesis using methods of small interfering RNA (siRNA), RT-PCR, patch-clamp, and calcium imaging. RANKL (receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand) stimulation did not affect the TRPM7 expression and TRPM7-mediated current was activated in HEK293, RAW264.7, and BMM cells by the regulation of $Mg^{2+}$. Knock-down of TRPM7 by siTRPM7 reduced intracellular $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) increases by 0 mM $[Mg^{2+}]_e$ in HEK293 cells and inhibited the generation of RANKL-induced $Ca^{2+}$ oscillations in RAW264.7 cells. Finally, knock-down of TRPM7 suppressed RANKL-mediated osteoclastogenesis such as activation and translocation of NFATc1, formation of multinucleated cells, and the bone resorptive activity, sequentially. These results suggest that TRPM7 plays an essential role in the RANKL-induced $[Ca^{2+}]_i$ oscillations that triggers the late stages of osteoclastogenesis.
Lysophosphatidic acid (LPA) is known to play a critical role in breast cancer metastasis to bone. In this study, we tried to investigate any role of LPA in the regulation of osteoclastogenic cytokines from breast cancer cells and the possibility of these secretory factors in affecting osteoclastogenesis. Effect of secreted cytokines on osteoclastogenesis was analyzed by treating conditioned media from LPA-stimulated breast cancer cells to differentiating osteoclasts. Result demonstrated that IL-8 and IL-11 expression were upregulated in LPA-treated MDA-MB-231 cells. IL-8 was induced in both MDA-MB-231 and MDA-MB-468, however, IL-11 was induced only in MDA-MB-231, suggesting differential LPARs participation in the expression of these cytokines. Expression of IL-8 but not IL-11 was suppressed by inhibitors of PI3K, NF-kB, ROCK and PKC pathways. In the case of PKC activation, it was observed that $PKC{\delta}$ and $PKC{\mu}$ might regulate LPA-induced expression of IL-11 and IL-8, respectively, by using specific PKC subtype inhibitors. Finally, conditioned Medium from LPA-stimulated breast cancer cells induced osteoclastogenesis. In conclusion, LPA induced the expression of osteolytic cytokines (IL-8 and IL-11) in breast cancer cells by involving different LPA receptors. Enhanced expression of IL-8 by LPA may be via ROCK, PKCu, PI3K, and NFkB signaling pathways, while enhanced expression of IL-11 might involve $PKC{\delta}$ signaling pathway. LPA has the ability to enhance breast cancer cells-mediated osteoclastogenesis by inducing the secretion of cytokines such as IL-8 and IL-11.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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