The Isozyme activities of Lentinula edodes were studied as a preliminary study for genetic analysis after protoplast fusion. The presence of peroxidase, esterase, superoxide dismutase, acid phosphatase, alkaline phosphatase, alcohol dehydrogenase and ${\alpha}-amylase$ was examined. An intracellular buffer-soluble protein from the mycelia was used for enzyme analysis on nondenaturing polyacrylamide gels. The auxotrophs of Lentinula edodes were positive for peroxidase, esterase, superoxide dismutase and acid phosphatase. However, alkaline phosphatase, alcohol dehydrogenase and ${\alpha}-amylase$ were not detected. The esterase and peroxidase were not affected by the various culture age. Isozyme identification may be a useful tool after protoplast fusion.
The feline chemotactic factor(s) for polymorphonuclear cells (PMN) in culture supernatant from mononuclear cells (MNC) treated with egg white derivatives (EWD) were examined. Culture supernatant from MNC treated with EWD and human recombinant (hr) IL-8 remarkably enhanced chemo-taxis of feline PMN. To investigate feline chemotactic factor(s), gel electrophoresis was performed with culture supernatant from MNC treated with EWD under denaturing (18% loading gel/5% stacking gel) and nondenaturing (12.5% loading gel/5% stacking gel) condition. Hr IL-8 and culture supernatant from MNC treated with EWD yielded a distinct band in a molecular weight, 6 to 8 kDa. Eluted solution from gel slices of 6 to 8 kDa band in denaturing condition also enhanced feline PMN chemotaxis. These chemotactic activities of feline PMN induced by culture supernatant from MNC treated with EWD, hr IL-8 and eluted solution were inhibited in a dose-dependent manner by rabbit anti-feline polyclonal IgG (RAF pIgG) and monoclonal antibody (mAb) against hr IL-8. RAF pIgG also showed a binding activity with hr IL-8, suggesting that RAF pIgG against feline IL-8-like chemotactic factor(s) had cross-reactivity with human IL-8. These results suggested that feline MNC treated with EWD might release feline IL-8-like chemotactic factor(s) with a molecular weight, 6 to 8 kDa, which induces the chemotaxis of feline PMN.
Purine nucleoside phosphorylase (PNP) was purified in Micrococcus luteus (M. luteus) using streptomycin sulfate and amomonium sulfate fractionation, three times by a Sephadex G-100 gel filtration and a DEAE-Sephadex A-50 ion exchange chromatography. The enzyme was purified 72 folds with a 11% recovery and showed a single band in a nondenaturing gel electrophoresis. The M. W. of PNP turned out to be 1.35 * 10$^{5}$ delton in G-150 gel filtration chromatography. The stability of the enzyme was increased by treatment with both substrates, MgCI$_{2}$ or CaCI$_{2}$, but not significantly kcal/mol. M. luteus PNP catalyzed the phosphorolysis of inosine, deoxyinosine, guanosine and deoxyguanosine with the Km value of 1.5 * 10$^{-3}$ M, 3.0 * 10$^{-3}$ M, 5.0 * 10$^{-4}$ M, respectively. The enzyme was reacted with adenosine, 1-methylnosine and 1-methylguanosine as substrates, which were shown to be poor substrates for mammalian enzyme.
An outer membrane-associated 2-furaldehyde dehydrogenase, catalyzing the oxidation of 2-furaldehyde to 2-furoic acid from Klebsiella pneumoniae was purified to homogeneity and characterized. The enzyme showed its highly specific dependency on $\beta$-$NAD^{+}$. Enzyme activity was monitored during purification by using substrate 2-furaldehyde and coenzyme $\beta$-$NAD^{+}$ by means of high performance liquid chromatography. The outer membrane was successfully collected by the methods of Percoll density gradient ultracentrifugation and ultracentrifugation after preferential solubilization of the membrane with $Mg^{2+}$ and Triton X-100. The enzyme was purified by the series of procedures including extraction of outer membrane protein with EDTA and lysozume, and fractionation by column chromatography on QAE-Sephades Q-50, and subsequently Sephadex G-100. The enzume showed its optimal activity at $85^{\circ}C$, pH 9.5, and in the presence of 1.5% (vol/vol) Triton X-100. The enzyme exhibited a native molecular size of 88,000 by nondenaturing polyacrylamide gel electrophoresis and had an apparent Km of 4.72mM for 2-furaldehyde.
The A. nidulans expression vector which contained trpC marker gene from A. nidulans was constructed to produce glucoamy]ase. The recombinant plasmid was introduced into auxotrophic mutant A. nidulans B17. Southern blot analysis of the genomic DNA from transformant showed that pKHG2 DNA had integrated into the A. nidulans chromosomes. Northern analysis of the total RNA from transform ant showed that mRNA of glucoamylase gene was synthesized in induction condition. Specific activity of glucoamylase was increased in transform ants. G]ucoamylase was shown to be active in non-denaturing acrylamide gel.
Acetolactate synthase (ALS) catalyzes the first common step in the biosynthesis of branchedchain amino acids, valine, leucine, and isoleucine. ALS is the target site for several structually diverse classes of herbicides including sulfonylureas, imidazolinones. and triazolopyrimidines. We have purified ALS from etiolated barley shoots to homogeneity. The five major purification steps are ammonium sulfate fractionation, DEAE anion exchange, hydroxylapatite, Bio-Gel A gel filtration, and low pressure Mono-Q chrornatoqraphy. Approximately 170-fold purification was achieved and the yield was 0.45% of initial activity in the crude extract. Both SDS-PAGE and Western blot analysis showed a single polypeptide of ALS with an apparent molecular mass of 64 kDa. The result of nondenaturing gel electrophoresis with activity staining indicated that the molecular mass of its native form is approximately 225 to 250 kDa. The values of $K_m$ for pyruvate. pl. and optimum pH of ALS were determined to be 2.0 mM, 5.2. and 7.0. respectively Feedback inhibition studies showed that ALS is more susceptible to leucine than valine. And $IC_{50}$ value of Cadre, a class of irnidazolinones, is about $1.5\mu{M}$ for ALS.
The chlorophyll-protein complexes were separated from thylakoid membranes of Spinach oleracea and Zoysia japonica by two gel Systems of LiDodSO4-PAGE and LiDodSo4/Urea- PAGE under nondenaturing conditions. Seven chlorophyll~protein complexes of CPI*, CPI, CPII*. CP47, CP43, CP29 and CPII were fractionated from both S,oleracea and Zjaponica by LiDodSO4-PAGE. CPI, CP47 and CP43 contained more chlorophyll a than chlorophyll b. The patterns of their absorption spectra at room temperature were similliar to that of chlorophyll a, judging by their UV-spedtroscopy. On the other hand, CPII* and CPII contained approximately equim-olar quantities of chlorophyll a and b. Additional five chlorophyll-protein complexes not separated in the LiDodSO4-PAGE system were electrophoretically isolated from both S, oleracea and Zjaponica by LiDodSO4/Urca-PAGE. The chlorophyll-protein complex just above LRCII $\alpha$in the gel appears CCII-RC separeted recently. 23 kDa and 20 kDa cho-protein complexes is probably LHCIa and LHCIb as judged from their molecular weight. Two novel chlorophyll~protein complexes designated "CPI7" and "CPI6" were fractionate by this gel system. Their molecular weights respectively. Although the stoichiometry of their components and their roles in thylakoid membranes are not apparant, It is thought that they are another kinds of LHCI.other kinds of LHCI.
In order to study the role of the protein shell in both iron uptake and iron core formation of ferritin, we constructed a deletion mutant of the ferritin gene and expressed the mutant gene in Escherichia coli, This mutant was obtained by introducing an amber mutation at position Pro-157 and a deletion of the 19 amino acid residues at the carboxy-terminus of the recombinant tadpole H-chain ferritin. The deleted amino acids correspond to E-helix forming the hydrophobic channel in the protein. E. coli harboring the plasmid pTHP157, which contains the deleted gene, was grown at $23^{\circ}C$ in the presence of 0.1 mM IPTG, and the induced protein appeared to be partly soluble. Nondenaturing polyacrylamide gel electrophoresis showed that the expressed mutant H-chains coassemble into holoprotein, suggesting that E-helix is not necessary for assembly of the subunits as reported for human H-chain ferritin. Its ability in iron core formation was proven in an Fe staining gel, the result disagreeing with the observation that the hydrophobic channel is necessary for iron core formation in human H-chain ferritin.
A hyperthermophilic bacterium Thernotoga maritima produced thermostable ${\beta}-glucosidase$. The gene encoding ${\beta}-glucosidase$ from T. maritima MSB8 was cloned and expressed in Escherichia coli. The en-zyme (BgIB) hydrolyzed ${\beta}-glucosidase$ linkages between glucose and alkyl, aryl of saccharide groups such as salicin, arbutin, and $_pNPG$. The insert DNA contained ORF with 2,166 bp encodes a 721 amino acids (calculated molecular mass of 80,964 and pl of 4.93). The amino a.id sequence of BglB showed the similarity to family 3 glycosyl hydrolases. The molecular weight of the enzyme was estimated to be approximately 81kDa by MUG-nondenaturing PAGE (4-methylumbelliferyl 13-D-glucoside-nondenaturing polyacrylamide gel electophoresis) and SDS-PACE. The ${\beta}-glucosidase$ exhibited maximal activity at pH 7.0 and $80^{\circ}C$. By exchanging two possible residues (Glu-232 and Asp-242) to Ala by site-directed mutagenesis method, it was found that these were essential for enzymatic activity.
The kinetics of dimerization of a newly synthesized thyroglobulin (Tg), the precursor protein in the manufacture of thyroid hormone, was investigated in the endoplasmic reticulum of thyrocytes FRTL-5 cell line. The folded monomeric Tg was first detectable in a conformationally unstable form, from the examination of lysates of pulse labeled cultured thyrocytes by denaturing and nondenaturing gel electrophoresis by 15 min after biosynthesis. The first dimeric Tg was formed by 30 min after; the monomer declined and the dimer progressively increased, and 40 min after remarkable dimeric Tg form was found. Finally, dimerization was complete at 60 min after.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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