The non-viral delivery of genes into macrophages, known as hard-to-transfect cells, is a challenge. In this study, the microporation of a CpG-free and small plasmid (pCGfd-GFP) showed high transfection efficiency, sustainable transgene expression, and good cell viability in the transfections of Raw 264.7 and primary bone marrow-derived macrophages. The non-viral method using the pCGfd vector encoding anti-EGFR single-chain Fv fused with Fc (scFv-Fc) generated the macrophages secreting anti-EGFR scFv-Fc. These macrophages effectively phagocytized tumor cells expressing EGFR through the antibody-dependent mechanism, as was proved by experiments using EGFR-knockout tumor cells. Finally, peri-tumoral injections of anti-EGFR scFv-Fc-secreting macrophages were shown to inhibit tumor growth in the xenograft mouse model.
Park, Ji-Young;Gratton, Stephanie;Benjamin, Maynor;Lim, Jomg Sung;Desimone, Joseph
Korean Chemical Engineering Research
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v.45
no.5
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pp.493-499
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2007
Polymeric hydrogel particles were fabricated to demonstrate the scale-up possibilities with the Particle Replication In Non-wetting Templates (PRINT) process. A permanently etched, specifically designed master was made on a silicon wafer using conventional photolithography, then reactive ion etching. The master and substrate were used repeatedly to make a large number of identical elastomeric perfluoropolyethers (PFPE) replica molds. The PFPE replica molds were used to fabricate and harvest individual, monodisperse micron-sized particles using the PRINT process. A water-soluble polymer adhesive was used as a sacrificial layer for harvesting particles. Particles were composed of biodegradable poly (ethylene glycol) diacrylate (PEG-diA), and aminoethylacrylate (AEM) and 2-acryloxyethyltrimethyl ammonium chloride (AETMAC) were added to them for improving the uptake of the cells. This study suggested PRINT used to produce the uniformed and shape specific biodegradable polymer is the effective technique for the non viral vector for the drug and the gene delivery.
Non-viral gene carriers continue to attract a great deal of interest due to advantageous safety profile. Among the non-viral gene carriers, cationic liposomes or synthetic gene carriers are efficient DNA carriers in vitro. but their in vivo applications are greatly hampered because of low biocompatibility. On the other hand, chitosan, a natural cationic polysaccharide, is a candidate non-viral vector for gene delivery because of its low cytotoxicity and high positive charges. In this work, targeted gene carrier was synthesized to target artery wall cells using low molecular water-soluble chitosan (LMWSC). The molecular weight $(M_W)$ and degree of de acetylation (DDA) of LMWSC were measured by relative viscometer and Kina titration. respectively. The structure of LMWSC was analyzed by measuring FTIR, $^1H-NMR,\;and\;^{13}C-NMR$. AWBP-PEG-g-LMWSC was synthesized by conjugation of the artery wall binding peptide (AWBP), a specific targeting peptide, to the end of pegylated LMWSC as a gene carrier to target artery wall cells. The synthesized AWBP-PEG-g-LMWSC were analyzed by measuring FTIR, $^1H-NMR$, zeta -potentiometer, and atomic force microscopy (AFM).
Polyethylenimine (PEI) has been used as a non-viral gene delivery carrier. To improve the efficacy of transfection, transferrin was incorporated by covalent linkage to PEI. As a model plasmid DNA, pHME185/b-gal, a mammalian expression vector was used. The transferrin-polyethylenimine (TfPEI) was synthesized by conjugate PEI with transferrin using sodium periodateand and characterized by FT-IR and 1H-NMR. (omitted)
Gene therapy is fundamentally a sophisticated drug delivery technology to cure a disease by the transfer of genetic material to modify living cells. In other words, the gene is used as a therapeutic drug much like a chemical compound is employed in chemotherapy. Currently almost 600 clinical trials are underway worldwide since the first clinical trials carried out in 1990 to treat adenosine deaminase deficiency using retroviral vectors. Despite the great progress still is there no gene therapy product being approved as a new drug. This is partly due to a lack of an ideal gene delivery system that is safe and can provide stable, optimal level production of the therapeutic proteins in the cell. This review covers the current status of several different biological and physico-chemical agents that are being developed as gene delivery vehicles. Although gene therapy promises great hopes toward the cure of a broad spectrum of genetic and acquired diseases, the success of gene therapy heavily asks for the development of vector systems for safe and efficient application in humans.
Transgenic animals have been widely used for developmental biology studies, as disease models, and even in industry such as transgenic bioreactor animals. For transgenic birds, quail has the great advantages of small body size, short generation time, and frequent egg production. To date, retroviral or lentiviral transduction has been used to generate transgenic quail for various purposes. However, the efficiency of transgenic offspring production with these methods is relatively low and viral vector usage has safety issues. Unfortunately, non-viral transgenesis has not been established in quail due to a deficiency of stem cell and germ cell culture systems. In this study, we established a direct in ovo lipofection method that could be used to create transgenic quail without germline-competent cells or viruses. To optimize the injection stage during embryo development, the liposome complex (containing piggyBacCMV-GFP and transposase plasmids) was introduced into an embryonic blood vessel at 50 hr, 55 hr or 60 hr. GFP expression was detected in various tissues (heart, kidney, liver and stomach) on day 12 of incubation under a fluorescence microscope. Additionally, GFP-positive cells were detected in the recipient embryonic gonads. In conclusion, the direct in ovo lipofection method with the piggyBac transposon could be an efficient and useful tool for generating transgenic quail.
Siti Nur Atikah Aishah Suhaimi;Izzati Abdul Halim Zaki;Zakiah Mohd Noordin;Nur Sabiha Md Hussin;Long Chiau Ming;Hanis Hanum Zulkifly
Clinical and Experimental Vaccine Research
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v.12
no.4
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pp.265-290
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2023
Rare but serious thrombotic incidents in relation to thrombocytopenia, termed vaccine-induced immune thrombotic thrombocytopenia (VITT), have been observed since the vaccine rollout, particularly among replication-defective adenoviral vector-based severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 vaccine recipients. Herein, we comprehensively reviewed and summarized reported studies of VITT following the coronavirus disease 2019 (COVID-19) vaccination to determine its prevalence, clinical characteristics, as well as its management. A literature search up to October 1, 2021 using PubMed and SCOPUS identified a combined total of 720 articles. Following the PRISMA (Preferred Reporting Items for Systematic Reviews and Meta-Analyses) guideline, after screening the titles and abstracts based on the eligibility criteria, the remaining 47 full-text articles were assessed for eligibility and 29 studies were included. Findings revealed that VITT cases are strongly related to viral vector-based vaccines, which are the AstraZeneca COVID-19 vaccine (95%) and the Janssen COVID-19 vaccine (4%), with much rarer reports involving messenger RNA-based vaccines such as the Moderna COVID-19 vaccine (0.2%) and the Pfizer COVID-19 vaccine (0.2%). The most severe manifestation of VITT is cerebral venous sinus thrombosis with 317 cases (70.4%) and the earliest primary symptom in the majority of cases is headache. Intravenous immunoglobulin and non-heparin anticoagulant are the main therapeutic options for managing immune responses and thrombosis, respectively. As there is emerging knowledge on and refinement of the published guidelines regarding VITT, this review may assist the medical communities in early VITT recognition, understanding the clinical presentations, diagnostic criteria as well as its management, offering a window of opportunity to VITT patients. Further larger sample size trials could further elucidate the link and safety profile.
Inefficiency of in vivo gene transfer using currently available vectors reflects a major hurdle in cancer gene therapy. Both viral and non-viral approaches have been described to improve gene transfer efficiency but suffer from a number of limitations. Here we tested an adenovirus carrying the small peptide ligand derived from heregulin${\beta}$ EGF-like domain onto fiber, the adenoviral capsid protein, to deliver transgene to ovarian cancer cells which overexpress ErbB, the cognate receptors for heregulin. The attachement of 53 amino acids to fiber didn't affect on the fiber's trimer structure that is critical for the viral entry to cells. The fiber-modified adenovirus can mediate entry and expression of a ${\beta}$-galactosidase into cancer cells in an increased efficiency compared the unmodified adenovirus. Particularly, the gene transfer efficiency was improved up to 5 times in OVCAR3 cells, an ovarian cancer cell line. Such transduction systems hold promise for delivering genes to ErbB receptor overexpressing cancer cells, and could be used for future cancer gene therapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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