P19 cells are pluripotent embryonal carcinoma cells and can be differentiated into neuronal cell type by treatment with retinoic acid (RA) and aggregation culture. Cannabinoids are the active components of Cannabis sativa and they have diverse pharmacologic activities, such as pain control, anti-inflammatory effects, neuro-protection effects and tumor regression. Cannabinoids also involved in neuronal proliferation, migration, differentiation and survival in developing brain. Here, we studied the role of cannabinoids on neuronal differentiation of P19 cells. Treatment with cannabinoids increased the neuronal differentiation induced by RA and also promoted transcriptional activity of neurogenin 1, key transcription factor for neuronal differentiation of P19 cells. These results suggest that the cannabinoids can accelerate neuronal differentiation of P19 cells.
It has been reported that ganglioside GT1b is expressed during neuronal cell differentiation from undifferentiated mouse embryonic stem cells (mESCs), which suggests that ganglioside GT1b has a direct effect on neuronal cell differentiation. Therefore, this study was conducted to evaluate the effect of exogenous addition of ganglioside GT1b to an in vitro model of neuronal cell differentiation from undifferentiated mESCs. The results revealed that a significant increase in the expression of ganglioside GT1b occurred during neuronal differentiation of undifferentiated mESCs. Next, we evaluated the effect of retinoic acid (RA) on GT1b-treated undifferentiated mESCs, which was found to lead to increased neuronal differentiation. Taken together, the results of this study suggest that ganglioside GT1b plays a crucial role in neuronal differentiation of mESCs.
Kim, Jung-Hee;Lee, Tae-Young;Yoo, Kyung-Hyun;Lee, Hyo-Soo;Cho, Sun-A;Park, Jong-Hoon
BMB Reports
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v.41
no.2
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pp.146-152
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2008
In the presence of NGF, PC12 cells extend neuronal processes, cease cell division, become electrically excitable, and undergo several biochemical changes that are detectable in developing sympathetic neurons. We investigated the expression pattern of the apoptosis-related genes at each stage of neuronal differentiation using a cDNA microarray containing 320 apoptosis-related rat genes. By comparing the expression patterns through time-series analysis, we identified candidate genes that appear to regulate neuronal differentiation. Among the candidate genes, HO2 was selected by real-time PCR and Western blot analysis. To identify the roles of selected genes in the stages of neuronal differentiation, transfection of HO2 siRNA in PC12 cells was performed. Down-regulation of HO2 expression causes a reduction in neuronal differentiation in PC12 cells. Our results suggest that the HO2 gene could be related to the regulation of neuronal differentiation levels.
Dung, To Thi Mai;Yi, Young-Su;Heo, Jieun;Yang, Woo Seok;Kim, Ji Hye;Kim, Han Gyung;Park, Jae Gwang;Yoo, Byong Chul;Cho, Jae Youl;Hong, Sungyoul
BMB Reports
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v.49
no.8
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pp.437-442
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2016
We aimed to study the role of protein L-isoaspartyl methyltransferase (PIMT) in neuronal differentiation using basic fibroblast growth factor (bFGF)-induced neuronal differentiation, characterized by cell-body shrinkage, long neurite outgrowth, and expression of neuronal differentiation markers light and medium neurofilaments (NF). The bFGF-mediated neuronal differentiation of PC12 cells was induced through activation of mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling molecules [MAPK kinase 1/2 (MEK1/2), extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2), and p90RSK], and phosphatidylinositide 3-kinase (PI3K)/Akt signaling molecules PI3Kp110β, PI3Kp110γ, Akt, and mTOR. Inhibitors (adenosine dialdehyde and S-adenosylhomocysteine) of protein methylation suppressed bFGF-mediated neuronal differentiation of PC12 cells. PIMT-eficiency caused by PIMT-specific siRNA inhibited neuronal differentiation of PC12 cells by suppressing phosphorylation of MEK1/2 and ERK1/2 in the MAPK signaling pathway and Akt and mTOR in the PI3K/Akt signaling pathway. Therefore, these results suggested that PIMT was critical for bFGF-mediated neuronal differentiation of PC12 cells and regulated the MAPK and Akt signaling pathways.
It is becoming increasingly evident that significant changes in gene expression occur during the course of neuronal differentiation. Thus, it should be possible to gain information about the biochemical events by identifying differentially expressed genes in neuronal differentiation The PC12 cell line is a useful model system to investigate the molecular mechanism underlying neuronal differentiation and has been used extensively for the study of the molecular events that underlie the biological actions of nerve growth factor (NGF). In this study, we report an application of the recently described mRNA differential display method to analyze differential gene expression during neuronal differentiation. Using this technique, we have identified several cDNA tags expressed differentially during neuronal differentiation. Interestingly, one of these clones was cytochrome c oxidase subunit I (COX I) gene. The differential expression of COX I gene was confirmed by Northern blot analysis as well as RT-PCR. Southern blot analysis of the genomic DNA of PC12 cells revealed that COX I is a single gene. Induction of the oxidative enzyme might reflect the energy requirement in neuronal differentiation.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2002.06b
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pp.46-46
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2002
Cdk5, a neuronal Cdc2-like kinase, exhibits a variety of functions in neuronal differentiation and neurocytoskeleton dynamics as well as neuronal degeneration and cell death. However, its role in retinoic acid (RA)-induced differentiation has not been reported yet. We newly found that RA treatment of SK-N-BE(2)C, human neuroblastoma, increased expression of Cdk5 concomitantly with a neuronal specific activator, p35.(omitted)
Cells assemble stress granules (SGs) to protect their RNAs from exposure to harmful chemical reactions induced by environmental stress. These SGs release RNAs, which resume translation once the stress is relieved. During stem cell differentiation, gene expression is altered to allow cells to adopt various functional and morphological features necessary to differentiate. This process induces stress within a cell, and cells that cannot overcome this stress die. Here, we investigated the role of SGs in the progression of stem cell differentiation. SGs aggregated during the neuronal differentiation of human bone marrow-mesenchymal stem cells, and not in cell lines that could not undergo differentiation. SGs were observed between one and three hours post-induction; RNA translation was restrained at the same time. Immediately after disassembly of SGs, the expression of the neuronal marker neurofilament-M (NF-M) gradually increased. Assembled SGs that persisted in cells were exposed to salubrinal, which inhibited the dephosphorylation of eukaryotic translation initiation factor 2 subunit 1 (eIF2α), and in eIF2α/S51D mutant cells. When eIF2α/S51A mutant cells differentiated, SGs were not assembled. In all experiments, the disruption of SGs was accompanied by delayed NF-M expression and the number of neuronally differentiated cells was decreased. Decreased differentiation was accompanied by decreased cell viability, indicating the necessity of SGs for preventing cell death during neuronal differentiation. Collectively, these results demonstrate the essential role of SGs during the neuronal differentiation of stem cells.
The principal objective of this study was to evaluate the chemopreventive and therapeutic effects of a combination of all-trans-retinoic acid (RA) and knockdown of delta-like 1 homologue (Drosophila) (DLK1) on neuroblastoma, the most common malignant disease in children. As unfavorable neuroblastoma is poorly differentiated, neuroblastoma cell was induced differentiation by RA or DLK1 knockdown. Neuroblastoma cells showed elongated neurite growth, a hallmark of neuronal differentiation at various doses of RA, as well as by DLK1 knockdown. In order to determine whether or not a combination of RA and DLK1 knockdown exerts a greater chemotherapeutic effect on neuroblastoma, cells were incubated at 10 nM RA after being transfected with SiRNA-DLK1. Neuronal differentiation was increased more by a combination of RA and DLK1 knockdown than by single treatment. Additionally, in order to assess the signal pathway of neuroblastoma differentiation induced by RA and DLK1 knockdown, treatment with the specific MEK/ERK inhibitors, U0126 and PD 98059, was applied to differentiated neuroblastoma cells. Differentiation induced by RA and DLK1 knockdown increased ERK phosphorylation. The MEK/ERK inhibitor U0126 completely inhibited neuronal differentiation induced by both RA and DLK1 knockdown, whereas PD98059 partially blocked neuronal differentiation. After the withdrawal of inhibitors, cellular differentiation was fully recovered. This study is, to the best of our knowledge, the first to demonstrate that the specific inhibitors of the MEK/ERK pathway, U0126 and PD98059, exert differential effects on the ERK phosphorylation induced by RA or DLK1 knockdown. Based on the observations of this study, it can be concluded that a combination of RA and DLK1 knockdown increases neuronal differentiation for the control of the malignant growth of human neuroblastomas, and also that both MEK1 and MEK2 are required for the differentiation induced by RA and DLK1 knockdown.
The PC12 is the widely used cell line to study neuronal differentiation. We had extensively investigated the details of protein expression in differentiated PC12 cells by proteomic analysis. The cells were incubated at the presence of nerve growth factor. We had analyzed the expression changes in the differentiating PC12 cells by 2-dimensional electrophoresis and the identification of the proteins using MALDI-TOF MS. By comparing expression pattern in the time course, we identified the candidate genes which are associated with neuronal differentiation. Among these genes, we performed real-time PCR analysis to validate $Idh3{\alpha}$ expression by the time course. To identify the function of $Idh3{\alpha}$ in neuronal differentiation stage, the transfection of $Idh3{\alpha}$ to PC12 cells was performed. As a result, we proved that up-regulation of $Idh3{\alpha}$ causes reduction in neural differentiation of PC12 cells. Based on these data, we suggest that $Idh3{\alpha}$ plays a role to the neuronal differentiation.
Oh, Mihee;Kim, Sun Young;Byun, Jeong-Su;Lee, Seonha;Kim, Won-Kon;Oh, Kyoung-Jin;Lee, Eun-Woo;Bae, Kwang-Hee;Lee, Sang Chul;Han, Baek-Soo
BMB Reports
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v.54
no.12
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pp.626-631
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2021
Janus kinase 2 (JAK2), a non-receptor tyrosine kinase, is a critical component of cytokine and growth factor signaling pathways regulating hematopoietic cell proliferation. JAK2 mutations are associated with multiple myeloproliferative neoplasms. Although physiological and pathological functions of JAK2 in hematopoietic tissues are well-known, such functions of JAK2 in the nervous system are not well studied yet. The present study demonstrated that JAK2 could negatively regulate neuronal differentiation of mouse embryonic stem cells (ESCs). Depletion of JAK2 stimulated neuronal differentiation of mouse ESCs and activated glycogen synthase kinase 3β, Fyn, and cyclin-dependent kinase 5. Knockdown of JAK2 resulted in accumulation of GTP-bound Rac1, a Rho GTPase implicated in the regulation of cytoskeletal dynamics. These findings suggest that JAK2 might negatively regulate neuronal differentiation by suppressing the GSK-3β/Fyn/CDK5 signaling pathway responsible for morphological maturation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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