RNA polymerase II carboxyl-terminal domain (RNAPII CTD) phosphatases are responsible for the dephosphorylation of the C-terminal domain of the small subunit of RNAPII in eukaryotes. Recently, we demonstrated the identification of several interacting partners with human small CTD phosphatase1 (hSCP1) and the substrate specificity to delineate an appearance of the dephosphorylation catalyzed by SCP1. In this study, using the established cells for inducibly expressing hSCP1 proteins, we monitored the modification of ${\beta}$-O-linked N-acetylglucosamine (O-GlcNAc). O-GlcNAcylation is one of the most common post-translational modifications (PTMs). To gain insight into the PTM of hSCP1, we used the Western blot, immunoprecipitation, succinylayed wheat germ agglutinin-precipitation, liquid chromatography-mass spectrometry analyses, and site-directed mutagenesis and identified the $Ser^{41}$ residue of hSCP1 as the O-GlcNAc modification site. These results suggest that hSCP1 may be an O-GlcNAcylated protein in vivo, and its N-terminus may function a possible role in the PTM, providing a scaffold for binding the protein(s).
p97, a universally conserved AAA+ ATPase, holds a central position in the ubiquitin-proteasome system, orchestrating myriad cellular activities with significant therapeutic implications. This protein primarily interacts with a diverse set of adaptor proteins through its N-terminal domain (NTD), which is structurally located at the periphery of the D1 hexamer ring. While there have been numerous structural elucidations of p97 complexed with adaptor proteins, the stoichiometry has remained elusive. In this work, we present the crystal structure of the p97-N/D1 hexamer bound to the FAF1-UBX domain at a resolution of 3.1 Å. Our findings reveal a 6:6 stoichiometry between the p97 hexamer and FAF1-UBX domain, deepening our understanding from preceding structural studies related to p97-NTD and UBX domain-containing proteins. These insights lay the groundwork for potential therapeutic interventions addressing cancer and neurodegenerative diseases.
In an effort to understand the role of the conserved domain and of the heterologous one-third part of the carboxy terminal domain of transglutaminase C (TGase II), attempts were made to express TGase II cDNA of human origin in yeast Saccharomyces cerevisiae as in a full-length form as well as in a form of C-terminal truncation. The 2$\mu$-based expression plasmids which contained the TGase II cDNA under the gal inducible promoter were introduced into yeast and the maintenance of the full-length and truncated form of the TGase II gene plasmids were confirmed by Southern blot. The expression of the TGase II gene was analysed by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), and western blot analyses. As assayed by [1,4$^{14}$C]-putrescine incorporation into succinylated casein, the full-lenth as well as the truncated forms of recombinant TGase II showed some catalytic activity. These results indicate that the N-terminal homologous domain of human TGase II retains a catalytically active domain. The level of TGase II expressed in yeast, however, was far lower than satisfactory and other expression system should be sought further chracterization of the enzyme. The negative effect of TGase II on the growth of yeast is interesting with respect to the physiological effect of TGase II in cornification of epidermal keratinocytes.
Jeong, Jin Seo;Park, Yeong Taek;Jung, Harin;Park, Su-Hyun;Kim, Ju-Kon
Plant Biotechnology Reports
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제3권2호
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pp.127-134
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2009
Members of the NAM-ATAF-CUC (NAC) protein family are plant-specific transcription factors that contain a highly conserved N-terminal NAC-domain and diverse C-terminal regions. They have been implicated in plant development and abiotic stress responses. To identify interacters of rice NAC-domain proteins (OsNACs), we performed yeast two-hybrid screening of rice cDNA library using OsNAC5 as a bait, and the results showed that OsNAC5 interacts with other OsNACs including itself. To delineate an interacting domain, a series of deletion constructs of four OsNACs were made and transformed into yeast in various combinations. The results revealed that the conserved NAC domain of OsNACs plays a primary role in homodimer and heterodimer formation, and a part of C-terminal sequence is also necessary for the interaction. In vitro pull-down assays using recombinant OsNAC proteins verified the dimer formations, together suggesting that OsNACs may act by forming homodimers and/or heterodimers in plants.
Specific interaction of the epsin N-terminal homology(ENTH) domain with the plasma membrane appears to bridge other related proteins to the specific regions of the membrane that are invaginated to form endocytic vesicles. An additional $\alpha$-helix, referred to as helix 0 (H0), is formed in the presence of the soluble ligand inositol-1,4,5-trisphosphate [$Ins(1,4,5)P_3$] at the N terminus of the ENTH domain (amino acid residues 3-15). The ENTH domain alone and full-length epsin cause tubulation of liposomes made of brain lipids. Thus, it is believed that H0 is membrane-inserted when it is coordinated with the phospholipid phosphatidylinositol-4,5-bisphosphate [$PtdIns(4,5)P_2$], resulting in membrane deformation as well as recruitment of accessory factors to the membrane. However, formation of H0 in a real biological membrane has not been demonstrated. In the present study, the membrane structure of H0 was determined by measurement of electron paramagnetic resonance (EPR) nitroxide accessibility. H0 was located at the phosphate head-group region of the membrane. Moreover, EPR line-shape analysis indicated that no pre-formed H0-like structure were present on normal acidic membranes. $PtdIns(4,5)P_2$ was necessary and sufficient for interaction of the H0 region with the membrane. H0 was stable only in the membrane. In conclusion, the H0 region of the ENTH domain has an intrinsic ability to form H0 in a $PtdIns(4,5)P_2$-containing membrane, perhaps functioning as a sensor of membrane patches enriched with $PtdIns(4,5)P_2$ that will initiate curvature to form endocytic vesicles.
The p97 adenosine triphosphatase is a key player in protein homeostasis, responsible for unfolding ubiquitylated substrates. It engages with various adaptor proteins through its N-terminal domain, with the p97-p47 complex attracting particular attention for its involvement in membrane remodeling. Although the structures of p97 in complex with the Ubiquitin regulatory X (UBX) domain from various adaptors have been reported, the stoichiometry is conflicting. Here, we report the crystal structure of the p97 N-D1 hexamer in complex with the p47 UBX domain at a resolution of 2.7 Å. The structure reveals a stoichiometry of 6:6 between the p97 N-D1 and the p47 UBX domain. These findings provide valuable insights into the binding stoichiometry of p97 N-D1 and p47 UBX domain, which are crucial for understanding the role of p97 and adaptor proteins in cellular processes such as the ubiquitin-proteasome pathway, membrane fusion, and cell cycle regulation.
Histones, nuclear proteins that interact with DNA to form nucleosomes, are essential for both the regulation of transcription and the packaging of DNA within chromosomes. The N-terminal domain of histone H4 which contains four acetylation sites at lysines, may play a separate role in chromatin structure from the remainder of the H4 chain. NMR data suggest that H4NTP peptide does have relating disordered structure at physiological pH, however, it has a defined structure at lower pH conditions. The solution structure calculated from NMR data shows a well structured region comprising residues of Val21-Asp24. In addition, our results suggest that the H4NTP prefers an extended backbone conformation at acetylation sites, however, it (especially Lys 12 ) became more defined structures after acetylation for its optimum function.
Background: This study was aimed to differentiate two forms of CTLA-4 (CD152) in activated peripheral blood lymphocyte and clarify the mechanism how cytoplasmic form of this molecule is targeted to cell surface. Methods: For this purpose we generated 2 different anti-human CD152 peptide antibodies and 5 different N'-terminal deletion mutant CTLA4Ig fusion proteins and carried out a series of Western blot and ELISA analyses. Antipeptide antibodies made in this study were anti-CTLA4pB and anti-CTLA4pN. The former recognized a region on extracellular single V-like domain and the latter recognized N'-terminal sequence of leader domain of human CD152. Results: In Western blot, the former antibody recognized recombinant human CTLA4Ig fusion protein as an antigen. And this recognition was completely blocked by preincubating antipeptide antibody with the peptide used for the antibody generation at the peptide concentration of 200 ug/ml. These antibodies were recognized human CD152 as a cytoplasmic sequestered- and a membrane bound- forms in phytohemagglutinin (PHA)-stimulated peripheral blood lymphocyte (PBL). These two forms of CD152 were further differentiated by using anti-CTLA4pN and anti-CTLA4pB antibodies such that former recognized cytosolic form only while latter recognized both cytoplasmic- and membraneforms of this molecule. Furthermore, in a transfection expression study of 5 different N'-terminal deletion mutant CTLA4Ig, mutated proteins were secreted out from transfected cell surface only when more than 6 amino acids from N'-terminal were deleted. Conclusion: Our results implies that cytosolic form of CTLA-4 has leader sequence while membrane form of this molecule does not. And also suggested is that at least N'-terminal 6 amino acid residues of human CTLA-4 are required for regulation of targeting this molecule from cytosolic- to membrane- area of activated human peripheral blood T lymphocyte.
To gain insight into the structure and function of repressor proteins of bacteriophages of gram-positive bacteria, repressor of temperate Staphylococcus aureus phage ${\phi}11$ was undertaken as a model system here and purified as an N-terminal histidine-tagged variant (His-CI) by affinity chromatography. A ~19 kDa protein copurified with intact His-CI (~ 30 kDa) at low level was resulted most possibly due to partial cleavage at its Ala-Gly site. At ~10 nM and higher concentrations, His-CI forms significant amount of dimers in solution. There are two repressor binding sites in ${\phi}11$ cI-cro intergenic region and binding to two sites occurs possibly by a cooperative manner. Two sites dissected by HincII digestion were designated operators $O_L$ and $O_R$, respectively. Equilibrium binding studies indicate that His-CI binds to $O_R$ with a little more strongly than $O_L$ and binding species is probably dimeric in nature. Interestingly His-CI binding affinity reduces drastically at elevated temperatures ($32-42^{\circ}C$). Both $O_L$ and $O_R$ harbor a nearly identical inverted repeat and studies show that ${\phi}11$ repressor binds to each repeat efficiently. Additional analyses indicate that ${\phi}11$ repressor, like $\lambda$ repressor, harbors an N-terminal domain and a C-terminal domain which are separated by a hinge region. Secondary structure of ${\phi}11$ CI even nearly resembles to that of $\lambda$ phage repressor though they differ at sequence level. The putative N-terminal HTH (helix-turn-helix) motif of ${\phi}11$ repressor belongs to the HTH -XRE-family of proteins and shows significant identity to the HTH motifs of some proteins of evolutionary distant organisms but not to HTH motifs of most S. aureus phage repressors.
Park, Seong-Hyun;Yu, Kyung-Lee;Jung, Yu-Mi;Lee, Seong-Deok;Kim, Min-Jeong;You, Ji-Chang
BMB Reports
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제51권7호
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pp.338-343
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2018
Transcription termination factor-1 (TTF-I) is an RNA polymerase 1-mediated transcription terminator and consisting of a C-terminal DNA-binding domain, central domain, and N-terminal regulatory domain. This protein binds to a so-called 'Sal box' composed of an 11-base pair motif. The interaction of TTF-I with the 'Sal box' is important for many cellular events, including efficient termination of RNA polymerase-1 activity involved in pre-rRNA synthesis and formation of a chromatin loop. To further understand the role of TTF-I in human immunodeficiency virus (HIV)-I virus production, we generated various TTF-I mutant forms. Through a series of studies of the over-expression of TTF-I and its derivatives along with co-transfection with either proviral DNA or HIV-I long terminal repeat (LTR)-driven reporter vectors, we determined that wild-type TTF-I downregulates HIV-I LTR activity and virus production, while the TTF-I Myb-like domain alone upregulated virus production, suggesting that wild-type TTF-I inhibits virus production and trans-activation of the LTR sequence; the Myb-like domain of TTF-I increased virus production and trans-activated LTR activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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