The influence of glucocorticoids on the secretory responses of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh), DMPP, McN-A-343, excess K$\^$+/ and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to clarify the mechanism of its action. The perfusion of the synthetic glucocorticoid dexamethasone (10-100 uM) into an adrenal vein for 20min produced relatively a dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32mM), excess K$\^$+/ (56mM), DMPP (a selective nicotinic receptor agonist, 100uM for 2min), McN-A-343 (a muscarinic receptor agonist, 100uM for 4min), Bay-K-8644 (a calcium channel activator, 10 uM for 4min) and cyclopiazonic acid (a releaser of intracellular Ca$\^$2+/, 10uM for 4min).
Acetylcholine receptors (AChR) including muscarinic and nicotinic AChR are widely expressed and mediate a variety of physiological cellular responses in neuronal and non-neuronal cells. Notably, a functional cholinergic system exists in oral epithelial cells, and nicotinic AChR (nAChR) mediates cholinergic anti-inflammatory responses. However, the pathophysiological roles of AChR in periodontitis are unclear. Here, we show that activation of AChR elicits increased cytosolic $Ca^{2+}([Ca^{2+}]_i)$, transient cytotoxicity, and induction of receptor activator of nuclear factor kappa-B ligand (RANKL) expression. Intracellular $Ca^{2+}$ mobilization in human gingival fibroblast-1 (hGF-1) cells was measured using the fluorescent $Ca^{2+}$ indicator, fura-2/AM. Cytotoxicity and induction of gene expression were evaluated by measuring the release of glucose-6-phosphate dehydrogenase and RT-PCR. Activation of AChR in hGF-1 cells by carbachol (Cch) induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in a dose-dependent manner. Treatment with a high concentration of Cch on hGF-1 cells caused transient cytotoxicity. Notably, treatment of hGF-1 cells with Cch resulted in upregulated RANKL expression. The findings may indicate potential roles of AChR in gingival fibroblast cells in bone remodeling.
We studied the effect of propofol (PPF) on the endothelium-dependent vascular responses in isolated rat thoracic aorta. In aortic rings with endothelium, PPF inhibited the phenylephrine (PE)-induced contraction in a concentration-dependent manner. In PE-precontracted preparations, PPF attenuated the endothelium-dependent relaxation by acetylcholine but not by A23187. And PPF did not attenuate the endothelium-independent relaxation by sodium nitroprusside (SNP). The relaxation induced by acetylcholine in PE-precontracted aortic rings was significantly augmented by zaprinast, a cGMP-specific phosphodiesterase inhibitor, and this augmentation was inhibited by PPF. Although SNP-induced relaxation was significantly augmented by zaprinast, this augmentation was not inhibited by PPF. In preparations preconstricted with PE, the PPF-induced relaxation was inhibited by atropine. In addition, PPF attenuated the vasorelaxation by phosphodiesterase inhibitors (IBMX, Ro20-1724 or zaprinast except milrinone). In vivo, the infusion of acetylcholine and SNP showed decreased arterial blood pressure in rats. The pre-injection of PPF inhibited the acetylcholine-induced blood pressure lowering, but not the SNP-induced blood pressure lowering. These results suggest that PPF can attenuate in part the acetylcholine-induced vasorelaxation and blood pressure lowering through the inhibition of the acetylcholine receptor-mediated endothelium-derived relaxing factor by acting on endothelium. It is considered that the inhibitory effect of PPF on the vasorelaxation is due to the decreased level of cGMP which can be attributed to the inhibition of the muscarinic receptor and/or receptor-G-protein interaction.
An exceptionally conserved sequence that is shared among most G protein-coupled neurotransmitter receptors is an aspartate-arginine-tyrosine triplet that is located at the second cytoplasmic domain. Using the ml subtype of muscarinic acetylcholine receptors as an example, a point mutation of the arginine residue at position 123 into asparagine was induced. This mutation resulted in a complete blockade of the carbachol-induced increases of PI hydrolysis and intracellular $Ca^2$$^{+}$ level, in spite of the expression of the wild-type and mutant receptors at similar concentrations in Chinese hamster ovary cells. In marked contrast, the muscarinic agonist carbachol induced concentration-dependent enhancement of the activity of NO synthase at mutant ml receptors although the enhancement was significantly smaller than at wild-type ml receptors. These data suggest that this highly conserved arginine residue plays an important role in coupling of muscarinic receptors to the second messenger systems and the presence of alternate mechanisms of activation of neuronal NO synthase which might be operative in the absence of large changes in the concentration of cellular $Ca^{2+}$.2+/.
The present study examined effects of a water-soluble fraction from mulberry leaves (ML water fraction) on the circulatory and autonomic nervous systems, which were compared with those of acetylcholine (ACh) used as a reference drug in order to elucidate its mechanism of action. Intravenous administration of ACh or a ML water fraction produced temporary depressor and tachycardiac responses in a dose-dependent manner in unrestrained, conscious Sprague-Dawley rats. The systemic hemodynamic effects of ACh and a ML water fraction were almost completely blocked by pretreatment with atropine, a muscarinic antagonist. The depressor responses to ACh and a ML water fraction were slightly enhanced and prolonged by pretreatment with neostigmine, an anticholinesterase, whereas the tachycardiac responses were remarkably blocked by pretreatment with pentolinium, a ganglionic blocking agent. In vitro experiments using the ileum isolated from rats showed that ACh and a ML water fraction increased ileal contractility in a dose-dependent manner. The increases in ileal contractility were also completely abolished in the presence of atropine. Finally, the specific binding of [$^3H$]quinuclidinyl benzilate, a muscarinic antagonist, to rat cortical synaptic membranes was inhibited by a ML water fraction in a concentration-dependent manner with an IC$_{50}$ value of 9.5 mg/ml. The results suggest that the effects of a ML water fraction are mediated through direct stimulation of muscarinic cholinergic receptors by unknown cholinomimetic substance(s) contained in that fraction.
The present study was undertaken to examine the influence of glucocorticoids on the secretory responses of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh), DMPP, McN-A-343, excess K^+$ and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to clarify the mechanism of its action. The perfusion of the synthetic glucocorticoid dexamethasone (10-100\;{\mu}M$) into an adrenal vein for 20 min produced a dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), excess K^+$ (a membrane-depolarizor 56 mM), DMPP (a selective nicotinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 2 min), McN-A-343 (a muscarinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 4 min), Bay-K-8644 (a calcium channel activator, 10\;{\mu}M$ for 4 min) and cyclopiazonic acid (a releaser of intracellular $Ca^{2+}$, 10\;{\mu}M$ for 4 min). Similarly, the preperfusion of hydrocortisone (30\;{\mu}M$) for 20 min also attenuated significantly the secretory responses of CA evoked by nicotinic and muscarinic receptor stimulation as well as membrane-depolarization, $Ca^{2+}$ channel activation and the release of intracellular $Ca^{2+}$. Furthermore, even in the presence of betamethasone (30{\mu}M$), CA secretion evoked by ACh, excess K^+$, DMPP and McN-A-343 was also markedly inhibited. Taken together, the present results suggest that glucocorticoids cause the marked inhibition of CA secretion evoked by both cholinergic nicotinic and muscarinic receptor stimulation from the isolated perfused rat adrenal gland, indicating strongly that this inhibitory effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium as well as the release of intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells.
The effects of various autonomic blocking agents to perivascular nerve stimulation were investigated on isolated coronary artery of pig. 1. The magnitude of contractile response to perivascular nerve stimulation increased with increasing frequency(280Hz) of stimulation. 2. The contractions to perivascular nerve stimulation(40V, 40Hz, 0.5msec, 1min) were increased by pretreatment of the cholinestrase inhibitor, physostigmine. 3. The contraction to perivascular nerve stimulation(40V, 40Hz, 0.5msec, 1min) was antagonised by the muscarinic antagonist, atropine. 4. The contraction to perivascular nerve stimulation(40V, 40Hz, 0.5msec, 1min) was blocked by the neural blocker, tetrodotoxin. 5. The contractions to perivascular nerve stimulation(40V, 40Hz, 0.5msec, 1min) were not significantly affected by the ${\alpha}$-adrenergic antagonist, phentolamine or ${\beta}$-adrenergic antagonist, propranolol. 6. The contractile response by the acetylcholine was increased by the pretreatment of cholinestrase inhibitor, physostigmine. This findings suggest that the powerful excitatory action by the perivascular nerve stimulation may be linked to muscarinic receptor by cholinergic nerve excitation in coronary artery of pig.
Adenosine (Ado) is an important mediator of the endogenous defense against ischemia-induced injury in the heart. The action of Ado is mediated by activation of G protein-gated inwardly rectifying $K^+$ (GIRK) channels. In turn, GIRK channels are inhibited by reducing phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate ($PIP_2$) through Gq protein-coupled receptors (GqPCRs). We previously found that GIRK channels activated by acetylcholine, a muscarinic M2 acetylcholine receptor agonist, are inhibited by GqPCRs in a receptor-specific manner. However, it is not known whether GIRK channels activated by Ado signaling are also regulated by GqPCRs. Presently, this was investigated in mouse atrial myocytes using the patch clamp technique. GIRK channels were activated by $100\;{\mu}M$ Ado. When Ado was repetitively applied at intervals of 5~6 min, the amplitude of second Ado-activated GIRK currents ($I_{K(Ado)}$) was $88.3{\pm}3.7%$ of the first $I_{K(Ado)}$ in the control. Pretreatment of atrial myocytes with phenylephrine, endothelin-1, or bradykinin prior to a second application of Ado reduced the amplitude of the second $I_{K(Ado)}$ to $25.5{\pm}11.6%$, $30.5{\pm}5.6%$, and $96.0{\pm}2.7%$, respectively. The potency of $I_{K(Ado)}$ inhibition by GqPCRs was different with that observed in acetylcholine-activated GIRK currents ($I_{K(ACh)}$) (endothelin-1>phenylephrine>bradykinin). $I_{K(Ado)}$ was almost completely inhibited by $500\;{\mu}M$ of the $PIP_2$ scavenger neomycin, suggesting low $PIP_2$ affinity of $I_{K(Ado)}$. Taken together, these results suggest that the crosstalk between GqPCRs and the Ado-induced signaling pathway is receptor-specific. The differential change in $PIP_2$ affinity of GIRK channels activated by Ado and ACh may underlie, at least in part, their differential responses to GqPCR agonists.
Berberine $(10^{-7}-10^5M)$ increased the contractility dose-dependently in isolated rabbit ileal and jejunal segments. Atropine and hemicholinium abolished this response but not mecamylamine. Berberine$(10^{-8}-10^5M)$ enhanced the transmurally-stimulated(80 V, 0.5 ms, 0.05 Hz) twitch response in the isolated guinea-pig ileal segments. Atropine and hemicholinium also abolished this response but not mecamylamine. Effect of KCI, carbachol and histamine were not affected by pretreatment with berberine$(10^{-5}M)$. The results of our study suggest that berberine increases the intestinal contractility by increasing a small amount of acetylcholine release from the postganglionic parasympathetic nerve terminal but not by a direct activation of muscarinic receptors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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