Kim, Yong-hwan;Al-Haddawi, MH;Cho, Ho-seong;Kang, Sung-kwi;Cho, Kyoung-oh;Park, Hyung-seon;Lee, Bong-joo;Park, Nam-yong
Korean Journal of Veterinary Research
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v.41
no.4
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pp.535-542
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2001
A multiplex PCR technique was developed for detecting specifically each Mycobacterium bovis, M. tuberculosis, M. avium and M. avium subsp, paratuberculosis, respectively, using clinical samples of field cattle. To apply this novel technique to clinical specimens, blood sample was obtained from live cows comprising 11 intradermal tuberculin test (ITT)-positive and 17 ITT-negative and tested by multiplex PCR. Positive results were obtained from 15 cows by the multiplex PCR, showing that 4 (23.5%) of the 17 ITT-negative cows were multiplex PCR positive. The multiplex PCR results also showed that among the 15 positive cows, 7 (46.7%) were infected with M. bovis, 1 (6.7%) with M. tuberculosis and 7 (46.7%) with M. avium. The sensitivity and specificity of multiplex PCR in comparison with those of ITT were 100% and 76.5%. The correlation between the multiplex PCR and ITT assays with blood samples was considered excellent, 85.7% agreement and ${\kappa}=0.72$. The results obtained, using reference mycobacterial strains and typed clinical samples, show that the multiplex PCR method may be a rapid, sensitive, and specific tool for the differential identification of various mycobacterial strains in a single-step assay. Therefore, multiplex PCR assay is a useful tool for early diagnosis of tuberculosis in live cattle and to identify the species or complex of mycobacterium from clinical samples.
In this study, multiplex PCR and real-time PCR were performed on Theragra chalcogramma (walleye pollock), Pangasianodon hypophthalmus (iridescent shark) and their processed foods, such as changnan-jeot and gaiyang-jeot (salted iridescent shark intestine). Species-specific primers for T. chalcogramma and P. hypophthalmus were designed, and genomic DNA was directly extracted from each sample to perform single PCR and multiplex PCR. As a result of PCR, in the case of single PCR, PCR bands of T. chalcogramma (297 bp) and P. hypophthalmus (132 bp) were identified, and in the case of multiplex PCR, it was confirmed that amplification occurred without cross-reaction between T. chalcogramma and P. hypophthalmus. As a result of checking the PCR sensitivity, the concentration of genomic DNA was detected up to 0.1 ng/µL in both single PCR and multiplex PCR. The real-time PCR results showed that the average Ct value of T. chalcogramma was 20.765±0.691, and the average Ct value of P. hypophthalmus sample was 35.719±1.828 in the T. chalcogramma species-specific primers. In the P. hypophthalmus species-specific primers, the average Ct value of the T. chalcogramma sample was 35.996±1.423, and the mean Ct value of the P. hypophthalmus sample was 20.096±0.793. These results demonstrated the significant differences in the efficiency, specificity and cross-reactivity of species-specific primers in real-time PCR. Based on these findings, 7 of changnan-jeot or gaiyang-jeot products were confirmed by multiplex PCR and real-time PCR, and valid results were confirmed in all samples.
Journal of Practical Agriculture & Fisheries Research
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v.5
no.1
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pp.57-63
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2003
The bovine rotavirus(BRV), bovine coronavirus(BCV) and bovine viral diarrhea virus(BVDV) are main viruses of bovine viral diarrhea disease. These viruses could be rapidly amplified by the reverse transcriptase polymerase chain reaction(RT-PCR). This study was conducted to develop rapid and accurate diagnostic methods of these viral diseases by multiplex RT-PCR. Specific primers were designed based on the sequences reported by Chang KO et. al. (1997) and Schroeder BA, et. al. (1990), RNA were prepared from the cultured viruses, first-stranded DNAs were synthesised by reverse transcriptase. PCR were conducted to amplify specific regions of the viruses by multiplex. Three bands such as 1,062bp for BRV, 458bp for BCV, and 300bp for BVDV were successfully produced by multiplex RT-PCR. In conclusion, this result suggested that these viruses could be diagnosed rapidly and accurately by multiplex RT-PCR.
Kim, Ji-Hyun;Rhim, Seong-Ryul;Kim, Kee-Tae;Paik, Hyun-Dong;Lee, Joo-Yeon
Food Science of Animal Resources
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v.34
no.5
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pp.717-723
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2014
A rapid and specific PCR assay for the simultaneous detection of Listeria monocytogenes, Escherichia coli O157:H7, Bacillus cereus, Salmonella spp., and Staphylococcus aureus in foods was developed to reduce the detection time and to increase sensitivity. Multiplex PCR developed in this study produced only actA, fliC, hbl, invA, ileS amplicons, but did not produce any non-specific amplicon. The primer sets successfully amplified the target genes in the multiplex PCR without any non-specific or additional bands on the other strains. The multiplex PCR assays also amplified some target genes from five pathogens, and multiplex amplification was obtained from as little as 1 pg of DNA. According to the results from the sensitivity evaluation, the multiplex PCR developed in this study detected 10 cells/mL of the pathogens inoculated in milk samples, respectively. The results suggested that multiplex PCR was an effective assay demonstrating high specificity for the simultaneous detection of five target pathogens in food system.
Listeria (L.) monocytogenes in samples could not be detected occasioally by faster growth of other Listeria spp. especially L. innocua. The aim of this study was to develop the differential media and multiplex polymerase chain reaction (PCR) assays for the rapid detection of L. monocytogenes. L. monocytogenes colonies were characterized by their ${\beta}$-hemolysis with fluorescence under 366 nm UV light on the Listeria hemolysis agar (LHA). L. innocua, a species commonly present in foods, did not produce ${\beta}$-hemolysis on LHA. Therefore, one or more colonies of L. monocytogenes were easily distinguished from large populations of L. innocua. The multiplex PCR assays were developed to distinguish from L. monocytogenes and other Listeria spp. with two pairs of primers. The primers were designed in 16S rRNA and listeriolysin O gene for specific amplification of all members of the genus Listeria and L. monocytogenes, respectively. The multiplex PCR assays produced 560 and 938 bp products in L. monocytogenes; only 938 bp products in the genus Listeria. The multiplex PCR assays could detect as little as 50 pg of L monocytogenes DNA. These results indicated that the differential media and multiplex PCR assays might be useful diagnostic tools for the rapid detection of L. monocytogenes.
This study was carried out for the purpose of comparing bacterial culture method, single PCR, and multiplex PCR for identification of F. nucleatum and A. actinomycetemcomitans in subgingival plaque of adult periodontitis. Targeting 20 patients with adult periodontitis, the subgingival plaque was collected in teeth, respectively, for #16, #36, #44. A bacillus was cultivated by painting it over the solid selective media of F. nucleatum and A. actinomycetemcomitans. Bacterial species were detected in 0 tooth with 12 pieces, respectively. Through single PCR and multiplex PCR, the positive reaction was indicated in 43 teeth with 45 pieces, respectively, as for F. nucleatum, and in 1 tooth with 4 pieces, respectively, as for A. actinomycetemcomitans. In the comparative analysis between bacterial identification methods. F. nucleatum showed the more statistically significant difference(p=0.0(0) in comparison between single PCR and multiplex PCR. Even A. actinomycetemcomitans was indicated significantly(p=0.067) in a case that is based on 0.1 in significant level in the comparison between single PCR and multiplex PCR. In conclusion, as a result of comparing the bacterial identification methods, the detection frequency was indicated to be higher in PCR than in bacterial culture method. Single PCR and multiplex PCR showed the mutually similar detection frequency. Accordingly, given thinking of economic efficiency, quickness, and reduction in labor force, it is thought to be more efficient method to use single PCR as the bacterial identification method.
Kim, Eun Jin;Yu, Hyun Jin;Nair, G. Balakrish;Kim, Dong Wook
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.12
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pp.2199-2205
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2016
Vibrio cholerae O1 serogroup Wave 3 El Tor strains are presently prevalent worldwide. The Wave 3 El Tor strains contain a TLC:RS1:CTX array on chromosome 1, and no element is integrated on chromosome 2. A multiplex PCR optimized to identify the TLC:RS1:CTX array of Wave 3 strains has been developed in this study. By using eight primers, the multiplex PCR can identify the characteristic CTX and RS1 array of Wave 3 strains from various arrays of strains belonging to other Waves. The four amplified DNA fragments of Wave 3 strains have been cloned in a vector, which could be used as a positive control for the multiplex PCR. This multiplex PCR and the positive control set could be useful tools for rapid recognition of Wave 3 El Tor strains.
This study examined the prevalence of Brucella spp. and Leptospira interrogans in 360 clinically healthy dogs using multiplex nested PCR. Four dogs (1.1%, 2 females and 2 males) tested positive to Brucella spp. by multiplex nested PCR. Fifty nine (16.4%, 31 females and 28 males) of 360 dogs tested positive L. interrogans. In 1 and 2 of the samples that tested positive to Brucella spp. and L. interrogans, the partial sequences of the virB1 and 16S rRNA genes were identified by direct sequence analysis, respectively. In conclusion, prevalence of Brucella spp. and L. interrogans by multiplex nested PCR revealed low and high, respectively. Multiplex nested PCR is can be useful for early detection of Brucella spp. and L. interrogans in the canine blood from asymptomatic dogs.
This study utilized an analysis method for detecting six microorganisms, such as Actinobacillus actinomycetemcomitans, Campylobacter rectus, Porphyromonas gingivalis, Tannerella forsythus, Treponema denticola, and Prevotella intermedia, triggering periodontal disease, using multiplex real-time polymerase chain reaction (PCR). The analysis including internal control was made by dividing the six species into two groups using four fluorescence dyes, and it was verified that there was no interference or cross-reaction between the target species and different kinds of oral microbial species. Qualitative and quantitative analyses were conducted on each microorganism in various samples, such as saliva and the plaque, using the multiplex real-time PCR and comparative analysis between periodontitis patients and healthy people, revealing obvious differences between them.
Viral safety is an important prerequisite for clinical preparations of mammalian cell culture-derived biopharmaceuticals, because numerous adventitious viruses have been contaminated during the manufacturing process. In particular, Chinese hamster ovary (CHO) cells are highly susceptible to several RNA viruses including reovirus (Reo), bovine viral diarrhea virus (BVDV), and bovine parainfluenza virus (BPIV) and there have been reports of such viral contaminations. Therefore, viral detection during the CHO cell process is necessary to ensure the safety of biopharmaceuticals against viruses. In this study, a multiplex reverse transcription (RT)-PCR assay was developed and subsequently evaluated for its effectiveness as a means to simultaneously detect Reo, BVDV, and BPIV during the manufacture of cell culture-derived biopharmaceuticals. Specific primers for Reo, BVDV, and BPIV were selected, and a multiplex RT-PCR was optimized. The sensitivity of the assay for simultaneous amplification of all viral target RNAs was $7.76{\times}10^2\;TCID_{50}/ml$ for Reo, $7.44{\times}10^1\;TCID_{50}/ml$ for BVDV, and $6.75{\times}10^1\;TCID_{50}/ml$ for BPIV. The multiplex RT-PCR was proven to be very specific to Reo, BVDV, and BPIV and was subsequently applied to the validation of CHO cells artificially infected with each virus. It could detect each viral RNA from CHO cells as well as culture supernatants. Therefore, it was concluded that the multiplex RT-PCR assay can be applied to detection of the adventitious viruses during the manufacture of cell culture-derived biopharmaceuticals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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