The bovine rotavirus(BRV), bovine coronavirus(BCV) and bovine viral diarrhea virus(BVDV) are main viruses of bovine viral diarrhea disease. These viruses could be rapidly amplified by the reverse transcriptase polymerase chain reaction(RT-PCR). This study was conducted to develop rapid and accurate diagnostic methods of these viral diseases by multiplex RT-PCR. Specific primers were designed based on the sequences reported by Chang KO et. al. (1997) and Schroeder BA, et. al. (1990), RNA were prepared from the cultured viruses, first-stranded DNAs were synthesised by reverse transcriptase. PCR were conducted to amplify specific regions of the viruses by multiplex. Three bands such as 1,062bp for BRV, 458bp for BCV, and 300bp for BVDV were successfully produced by multiplex RT-PCR. In conclusion, this result suggested that these viruses could be diagnosed rapidly and accurately by multiplex RT-PCR.
동물세포배양 유래 생물의약품 생산 공정에서 다양한 외래성 바이러스가 오염된 사례가 있기 때문에 바이러스 안전성 보증을 위한 바이러스 검출시험이 필수적이다. Reovirus (Reo), bovine viral diarrhea virus (BVDV), bovine parainfluenza virus (BPIV)는 동물 세포주와 동물 세포 배양 공정에 오염되는 대표적인 RNA 바이러스이다. 세포배양 유래 생물의약품의 안전성을 확보하기 위해, 세포주, 원료물질, 제조공정, 완제품에서 Reo, BVDV, BPIV를 동시에 검출할 수 있는 Multiplex Reverse Transcription (RT)-PCR 시험법을 확립하였다. Reo, BVDV, BPIV에 특이적인 primer를 선별하였으며, multiplex RT-PCR 시험법을 최적화하였다. Reo, BVDV, BPIV를 동시에 검출할 수 있는 multiplex RT-PCR 시험법의 민감도는 각각 $7.76{\times}10^2\;TCID_{50}/ml$, $7.44{\times}10^1\;TCID_{50}/ml$, $6.75{\times}10^1\;TCID_{50}/ml$이었다. 확립된 multiplex RT-PCR을 생물의약품 제조공정 검증에 적용할 수 있는지 확인하기 위하여 인위적으로 각 바이러스를 오염시킨 CHO 세포에서 검출 시험을 실시한 결과 각 바이러스를 감염시킨 CHO 세포와 세포배양 상청액에서 각 바이러스를 검출할 수 있었다. 위와 같은 결과에서 확립된 multiplex RT-PCR시험법은 세포주, 원료물질, 제조공정, 완제품에서 Reo, BVDV, BPIV를 동시에 검출할 수 있는 특이성과 민감성이 우수한 시험법임을 확인하였다.
In April 2009, the H1N1 pandemic influenza virus emerged as a novel influenza virus. The aim of this study was to compare the performances of several molecular assays, including conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), two real-time reverse transcription (rRT)-PCRs, and two multiplex RTPCRs. A total of 381 clinical specimens were collected from patients (223 men and 158 women), and both the Seeplex RV7 assay and rRT-PCR were ordered on different specimens within one week after collection. The concordance rate for the two methods was 87% (332/381), and the discrepancy rate was 13% (49/381). The positive rates for the molecular assays studied included 93.1% for the multiplex Seeplex RV7 assay, 93.1% for conventional reverse transcription (cRT)-PCR, 89.7% for the multiplex Seeplex Flu ACE Subtyping assay, 82.8% for protocol B rRT-PCR, and 58.6% for protocol A rRT-PCR. Our results showed that the multiplex Seeplex assays and the cRT-PCR yielded higher detection rates than rRT-PCRs for detecting the influenza A (H1N1) virus. Although the multiplex Seeplex assays had the advantage of simultaneous detection of several viruses, they were time-consuming and troublesome. Our results show that, although rRT-PCR had the advantage, the detection rates of the molecular assays varied depending upon the source of the influenza A (H1N1)v virus. Our findings also suggest that rRT-PCR sometimes detected virus in extremely low abundance and thus required validation of analytical performance and clinical correlation.
A one-step multiplex reverse transcription PCR (RT-PCR) method comprising six primer sets (for the detection of norovirus GI and GII, hepatitis A virus, rotavirus, and astrovirus) was developed to simultaneously detect four kinds of pathogenic viruses. The size of the PCR products for norovirus GI and GII, hepatitis A virus (VP3/VP1 and P2A regions), rotavirus, and astrovirus were 330, 164, 244, 198, 629, and 449 bp, respectively. The RT-PCR with the six primer sets showed specificity for the pathogenic viruses. The detection limit of the developed multiplex RT-PCR, as evaluated using serially diluted viral RNAs, was comparable to that of one-step single RT-PCR. Moreover, this multiplex RT-PCR was evaluated using food samples such as water, oysters, lettuce, and vegetable product. These food samples were artificially spiked with the four kinds of viruses in diverse combinations, and the spiked viruses in all food samples were detected successfully.
Park, Chung Youl;Min, Hyun-Geun;Lee, Hong-Kyu;Maharjan, Rameswor;Yoon, Youngnam;Lee, Su-Heon
식물병연구
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제24권4호
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pp.348-352
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2018
A multiplex reverse transcription-polymerase chain reaction (mRT-PCR) assay was developed for the detection of Clover yellow vein virus (ClYVV), Peanut mottle virus (PeMoV), and Tomato spotted wilt virus (TSWV), which were recently reported to infect soybean and azuki bean in Korea. Species-specific primer sets were designed for the detection of each virus, and their specificity and sensitivity were tested using mixed primer sets. From among the designed primer sets, two combinations were selected and further evaluated to estimate the detection limits of uniplex, duplex, and multiplex RT-PCR. The multiplex RT-PCR assay could be a useful tool for the field survey of plant viruses and the rapid detection of ClYVV, PeMoV, and TSWV in leguminous plants.
We developed multiplex RT-PCR assays that can detect and identify 12 hemagglutinin (H1-H12) and 9 neuraminidase (N1-N9) subtypes that are commonly isolated from avian, swine, and human influenza A viruses. RT-PCR products with unique sizes characteristic of each subtype were amplified by multiplex RT-PCRs, and sequence analysis of each amplicon was demonstrated to be specific for each subtype with 24 reference viruses. The specificity was demonstrated further with DNA or cDNA templates from 7 viruses, 5 bacteria, and 50 influenza A virus-negative specimens. Furthermore, the assays could detect and subtype up to $10^5$ dilution of each of the reference viruses that had an original infectivity titer of $10^6\;EID_{50}/ml$. Of 188 virus isolates, the multiplex RT-PCR results agreed completely with individual RT-PCR subtyping results and with results obtained from virus isolations. Furthermore, the multiplex RT-PCR methods efficiently detected mixed infections with at least two different subtypes of influenza viruses in one host. Therefore, these methods could facilitate rapid and accurate subtyping of influenza A viruses directly from field specimens.
Park, Hong-Lyeol;Yoon, Jae-Seung;Kim, Hyun-Ran;Baek, Kwang-Hee
The Plant Pathology Journal
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제22권2호
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pp.168-173
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2006
To develop the diagnostic method for the viral infection in apple, the partial genes corresponding to the N-terminal region of RNA polymerase of Apple stem grooving virus (ASGV) and coat protein of Apple chlorotic leaf spot virus (ACLSV) were characterized from the infected apple cultivars in Korea. Based on the nucleotide sequences of the characterized partial genes, the virus gene-specific primers were designed for the detection of ASGV and ACLSV infected in species of Malus. The RT-PCR using the primers for the genes of ASGV and ACLSV successfully gave rise to 404 and 566 bp DNA fragments, respectively. Using those viral gene-specific primers, the multiplex RT-PCR assays were also established to diagnose the mixed infection by ASGV and ACLSV simultaneously. Furthermore, the control primers, which have to be included for the RT-PCR as an internal control, were designed using the nucleotide sequence of the gene encoding elongation factor $1{\alpha}(EF1{\alpha})$. This multiplex RT-PCR including the control primers provides more reliable, rapid and sensitive assay for the detection of ASGV and ACLSV infected in Korean apple cultivars.
Park, Chung Youl;Park, Jeongran;Lee, Geunsik;Yi, Seung-In;Kim, Byeong Hoon;Eom, Jung Sik;Lee, Som Gyeol;Kim, Hongsup
식물병연구
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제24권3호
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pp.233-236
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2018
A multiplex RT-PCR (mRT-PCR) assay was developed for the detection of the recently reported viruses, Cherry virus A (CVA), Little cherry virus 1 (LChV-1), and Little cherry virus 2 (LChV-2), in cherry plants in Korea. Eight sets of primers were designed for each virus and their specificity was tested by using various combinations of mixed primer sets. From the designed primer sets, one combination was selected and further evaluated to estimate the optimum temperature and detection limits of the mRT-PCR. A newly developed mRT-PCR assay was also tested using 20 cherry samples collected in the field. This mRT-PCR assay may be a useful tool for field surveys of diseases and the rapid detection of these three viruses in cherry plants.
목 적:호흡기 감염의 증상이 없는 소아들을 대상으로 다중 역전사중합효소연쇄반응법(multiplex reverse transcription-polymerase chain reaction; mRT-PCR)을 이용하여 비인두 상주균의 이환율을 알아보고자 하였다. 방 법:2008년 7월 25일부터 28일까지 33명의 소아들을 대상으로 비강 면봉채취법으로 검체를 채취하였으며, 이들은 검체 채취 당시 심각한 호흡기 감염의 증상이 없었다. 모아진 검체에서 DNA를 추출한 후 multiplex primer set ($Seeplex^{(R)}$ PneumoBacter ACE Detection, Seegene, Seoul, Korea)로 PCR을 진행하였다. 증폭된 반응산물은 2% agarose gel과 전기 영동 자동화 시스템인 screen tape system (Lab901, Scottland, UK)에 각각 전기 영동하여 확인하였다. 결 과:전체 33명의 소아 중 남아는 15명 여아는 18명이었으며, 나이는 3.2세에서 16.3세로 중앙값은 8.2세였다. mRT-PCR 결과 30명(90.9%)의 소아들에서 양성을 보였으며(S. pneumoniae, H. influenzae, C. pneumoniae, B. pertussis), 이들 중 13명(39.4%)에서 2가지 이상의 균이 검출되었다. 균의 종류로는 12명(36.4%)에서는 S. pneumoniae와 H. influenzae, 1명(3.0%)에서는 S. pneumoniae, H. influenzae와 C. pneumoniae이 검출되었다.. 결 론:mRT-PCR은 비인두 상주균의 동정에 있어서 민감도가 높은 방법으로 생각된다. 하지만 비인두 상주균에 대한 PCR 결과가 소아들의 임상 양상과 어느 정도 일치할지에 대해서는 더 많은 연구가 필요할 것으로 생각된다.
목적: 본 연구는 30일 이상 90일 미만의 발열이 있는 영아에서 경험적 항생제 사용에 미치는 요소를 조사하였다. 방법: 2010년 1월부터 2016년 12월까지 부산대학교 어린이병원에 발열이 있는 이전에 건강했던 영아를 대상으로 임상양상, 검사소견, 항생제 사용에 대해 의무기록을 후향적으로 분석하였다. 호흡기 바이러스는 다중 역전사 중합 연쇄반응검사로 검출하여 1-3일 후 보고되었고, enterovirus는 중합 연쇄반응검사로 검출하여 수시간 만에 보고되었다. 결과: 366명의 대상자 중 129명은 경험적 항생제를 사용하였고 237명은 경험적 항생제를 사용하지 않았다. 입원 전 발열기간이 긴 경우와 호흡기 증상이 있을 때, 아파보일 때, CRP 상승 시 경험적 항생제 사용이 많았다. 경험적 항생제를 사용하지 않은 환자의 재입원율이 낮았다. Enterovirus polymerase chain reaction (PCR)이 검출된 대부분의 환자는 경험적 항생제를 사용하지 않았다. Respiratory virus multiplex reverse transcriptase (RT)-PCR 결과는 경험적 항생제 사용에 차이를 보이지 않았다. 결론: 본 연구에서 respiratory virus multiplex RT-PCR은 항생제 처방에 영향을 주지 않았고 enterovirus PCR은 항생제 처방에 영향을 주었다. Respiratory virus multiplex RT-PCR 결과가 신속하게 보고된다면 항생제 사용에 영향을 줄 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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