the pupose of this study was to investigate the effects of gonadotropin and nitric oxide (NO) on the expression of mouse follicular bad and bax genes that are known induce apoptosis. Large and midium size follicles of immature mice were obtained at 0, 24, and 48 hours time intervals after Pregnant Mare's Serum gonadotropins(PMSG, 5 I.U.) injection. Preovulatory follicles collected at 24 hrs after PMSG injection were cultured with or without various chemicals such as gonadotropin, gonadotropin Releasing hormone(GnRH), testosterone, Sodium nitroprusside (SNP) for 24 hrs at $37^{\circ}C$. After 24 hrs culture, the culture media was used for nitrite assay and total RNA was extracted, subjected to RT-PCT for the analyses of bad and bax expression. We found that expression of bad and bax genes in follicles was markedly reduced before and after in vivo priming with hCG. When the preovulatory follicles were cultured for 24 hrs in culture media with PMSG and hCG, the expression of bad and bax genes was decreased. Moreover, SNP (NO generating agent) can significantly suppress the expression of bad and bax genes in follicles when apoptosis was induced by GnRH agonist and testosterone. At the same time, nitrite production of culture media was increased in GnRH agonist + SNP, testosterone + SNP and SNP treated groups than control group. These data demonstrated for the first time that peptide hormones and NO may play important roles in the regulation of mouse follicular differentiation and may prevent apoptosis via supressing the expression of bad and bax genes.
Recently, production of transgenic animal by nuclear transfer has been known as a useful method. The production of cloned offspring derived from nuclear transfer depends upon a variety of factors such as species, donor cells type and cell cycle, and source of recipient ova. Therefore, we attempted a different transgenic methods using follicular granulosa cells (GCs). In general, ovulated GCs undergoes lutenization and transformation in vitro which might defective effects on developmental potential. In order to avoid the GCs transformation in vitro culture system, we introduced a direct injection of retrovirus into the follicles and then collected them mechanically from ovaries of 6-8 week-old ICR mice. Retrovirus vector constructed with pLN $\beta$ EGFP was injected into the follicles. The follicles are cultured in $\alpha$ -MEM supplemented with human FSH, LH and ITS in Costar Transwell dish for 4 days. Survival rate of virus injected follicles was 52.1% (12/23) and expression rate of EGPP gene was 33.3% (4/12). In this study, we found GCs performed transgenesis in our culture system. In addition, the GCs in follicle may be developed in vivo like environment rather than in vitro environment. Thus, the use of GCs as donor cells may be useful in the nuclear transfer for cloning of genetic modification. Therefore, these results suggest that follicular GCs can be transfected by viral vector during folliculogenesis in vitro.
Objective: Testicular fat deposition has been reported to affect animal reproduction. However, the underlying mechanism remains poorly understood. The present study explored whether sperm meiosis and testosterone synthesis contribute to mouse testicular fat deposition-induced reproductive performance. Methods: High fat diet (HFD)-induced obesity CD1 mice (DIO) were used as a testicular fat deposition model. The serum hormone test was performed by agent kit. The quality of sperm was assessed using a Sperm Class Analyzer. Testicular tissue morphology was analyzed by histochemical methods. The expression of spermatocyte marker molecules was monitored by an immuno-fluorescence microscope during meiosis. Analysis of the synthesis of testosterone was performed by real-time polymerase chain reaction and reagent kit. Results: It was found that there was a significant increase in body weight among DIO mice, however, the food intake showed no difference compared to control mice fed a normal diet (CTR). The number of offspring in DIO mice decreased, but there was no significant difference from the CTR group. The levels of follicle-stimulating hormone were lower in DIO mice and their luteinizing hormone levels were similar. The results showed a remarkable decrease in sperm density and motility among DIO mice. We also found that fat accumulation affected the meiosis process, mainly reflected in the cross-exchange of homologous chromosomes. In addition, overweight increased fat deposition in the testis and reduced the expression of testosterone synthesis-related enzymes, thereby affecting the synthesis and secretion of testosterone by testicular Leydig cells. Conclusion: Fat accumulation in the testes causes testicular cell dysfunction, which affects testosterone hormone synthesis and ultimately affects sperm formation.
The mammalian ovary has a large number of primordial and preantral follicles, which are a potential source of oocytes for the in vitro mass production of embryos. Several in vitro culture systems have been developed to support the growth and development of oocytes from mouse preantral follicles. Under the appropriate condition, meiotically incompetent oocytes from preantral follicles can grow to final size and complete nuclear maturation in vitro. Furthermore, the successful production of live young from in vitro grown and matured oocytes demonstrates that oocytes from preantral follicles are able to acquire full developmental capacity in vitro. However, the efficiency of in vitro production of embryos from mouse preantral follicles is still low. In farm animals as well as human, the growth of oocyte from preantral follicle to the meiotic competence stage has yet to be demonstrate. Therefore, further studies to improve the culture condition or to develope new culture system should be needed in the future. In addition, the visible progress in the establishment of the in vitro culture system for preantral follicles of farm animals and human could help to enlarge the populations of valuable agricultural, phamaceutical product-producing, and endangered animals, and to rescue the oocytes of women about to undergo clinical procedures that jeopardize oocytes.
Cryopreservation affects osmotic tolerance and intracellular ion concentration through changes in expression levels of water and ion channels. Control of these changes is important for cell survival after cryopreservation. Relatively little is known about changes in $K^+$ channel expression compared to water channel expression. This study was performed to investigate changes in TASK-2 channel (KCNK5: potassium channel, subfamily K, member 5), a member of two-pore domain $K^+$ channel family, in cryopreserved mouse ovaries. Cryopreservation increased TASK-2 mRNA expression in mouse ovaries. In addition, TASK-2 protein expression was upregulated in vitrified and slowly frozen ovaries. TASK-2 protein was expressed in all area of granulosa cells that surround the oocyte within the follicle, except nucleus. Viability of cells overexpressed with TASK-2 was higher than that of vector-transfected cells. Our results found that TASK-2 expression was increased by cryopreservation and overexpression of TASK-2 decreased cryopreservation-induced cell death. These results suggest that TASK-2 upregulation might reduce cryodamage.
In order to know when the cumulus cells of mouse follicles get ability to expand in vitro, the oocyte cumulus complexes obtained from different growing ages of mice were cultured in the medium containing HCG and their rate of expansion were observed and at the same time their maturation rate was examined. The growth of follicles was also checked by histological method. It was impossible to isolate the oocyte-cumulus complexes from 13 or 15 days old mouse ovaries. The oocyte-cumulus complexes collected from 17 days old mouse were partially induced to expanded by HCG, and from 19 days, most of the complexes were induced to full expansion. The rate of cumulus cell expansion by HCG and the oocyte maturation increased steadly during the growing ages to adult. Thus, the time for follicles to get competence for expansion and maturation seems to be closely related. Antral follicles were appeared from 17 days old mice and Graafian follicles were seen from 21 days old mice. The competence for cumulus expansion increased during follicle growth up to 21 days old mice.
The present study, using immunohistochemical procedure, was carried out to determine the localization of immunostainable $\beta$-endorphin cells in the mouse ovarian tissues. Mature female mice were perfused with 4% neutral buffered paraformaldehyde under anesthesia and then frozen-sections were immunostained with anti $\beta$-endorphin antiserum according to ABC technique. Immunoreactive $\beta$-endorphin was found in the luteal cells of corpus lutea, but not in the thecal cells. More strong immunostaining signak were observed in large corpus luteum, in particular, the regressing luteal cells. Primary and secondary follicles did not show any immunoreactivity of $\beta$-endorphin, but granulosa cells lining the antral cavity of large antral follicles contained immunoreactive $\beta$-endorphin.
Hairless (HR), a transcriptional cofactor, is highly expressed in the skin and brain. To characterize the effects of HR expression in the skin, we examined its capacity for transcriptional regulation of its target genes in mouse skin and keratinocytes. We found that Foxe1 mRNA expression was suppressed in HR-overexpressing skin, as well as in HR-expressing keratinocytes. In turn, Msx1 expression was downregulated contingent on Foxe1 downregulation in skin and keratinocytes. We also found that expression of Sfrp1 was also correlated with that of Foxe1. Further investigation of the mechanisms involved in the transcriptional regulation of these genes will facilitate our understanding of the relationship among genes involved in hair follicle morphogenesis and cycling.
Kim, Young Eun;Choi, Hyung Chul;Lee, In-Chul;Yuk, Dong Yeon;Lee, Hyosung;Choi, Bu Young
Biomolecules & Therapeutics
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v.24
no.6
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pp.572-580
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2016
3-Deoxysappanchalcone (3-DSC) has been reported to possess anti-allergic, antiviral, anti-inflammatory and antioxidant activities. In the present study, we investigated the effects of 3-DSC on the proliferation of human hair follicle dermal papilla cells (HDPCs) and mouse hair growth in vivo. A real-time cell analyzer system, luciferase assay, Western blot and real-time polymerase chain reaction (PCR) were employed to measure the biochemical changes occurring in HDPCs in response to 3-DSC treatment. The effect of 3-DSC on hair growth in C57BL/6 mice was also examined. 3-DSC promoted the proliferation of HDPCs, similar to Tofacitinib, an inhibitor of janus-activated kinase (JAK). 3-DSC promoted phosphorylation of ${\beta}$-catenin and transcriptional activation of the T-cell factor. In addition, 3-DSC potentiated interleukin-6 (IL-6)-induced phosphorylation and subsequent transactivation of signal transducer and activator of transcription-3 (STAT3), thereby increasing the expression of cyclin-dependent kinase-4 (Cdk4), fibroblast growth factor (FGF) and vascular endothelial growth factor (VEGF). On the contrary, 3-DSC attenuated STAT6 mRNA expression and IL4-induced STAT6 phosphorylation in HDPCs. Finally, we observed that topical application of 3-DSC promoted the anagen phase of hair growth in C57BL/6 mice. 3-DSC stimulates hair growth possibly by inducing proliferation of follicular dermal papilla cells via modulation of $WNT/{\beta}$-catenin and STAT signaling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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