To obtain monozygotic multiplets from 8-cell mouse embryos, we artificially constructed chimeric embryos by introducing one blastomere (donor) of 8-cell embryos of Fl hybrid (C57BL/6 X CBA) mice into 4-cell ICR mouse embryos (carrier) of which one blastomere had been previously removed with a micromanipulator. After 42 h of culture, the developmental frequency of chimeric embryos to normal morula and blastocyst was 95% (310/328). When chimeric embryos at morula or blastocvst stage were transferred to pseudopregnant mice,39%, (70/180) of them were born. Most of the offspring (56/70) were the carrier type in coat color, whereas only three of them were the donor type, of which ho were assumed to be derived from single 8-cell donor embryo. Because the two donor type mice Ivere the same sex and produced only the donor type offspring from a testcross, they are probably monozvgotic multiplets of 8-cell mouse embryos. However, since their internal chimerism was not able to be examined, it remains to be determined if their genetic constitutions are identical.
The present experirnents on cryopreservation were carried out to investigate effect of solution toxicity, equilibration time and cell stages on the post-thaw survival of mouse morulae and blastocyst embryos cryopreserved by vitrification in EFS solution. The mouse embryos were exposed to the EFS solution in one step at room temperature, kept in the EFS solution during different period for toxicity test, vitrified in liquid nitrogen and thawed rapidly. After the mouse morulae embryos were exposed to EFS solution for 2 and 5 ruin. at room temperature and then they were washed in 0.5 M sucrose solution and basal mediurn(D-PBS + 10% FCS), they were cultured to examined cryoprotectant toxicity induced injury during exposure, most of embryos developed to expanded blastocysts(100 and 90.0%). However, when the exposure time was extended to 10 and 20 min, these development rates dropped dramatically in 10 ruin. (75.0%) and 20 ruin. (4.5%), respectively. When the compacted morulae were vitrified in EFS solution after equilibration for 2 and 5 min, the embryos have developed to normal blastocyst following thawing, washing and culture processes was 89.3 and 89.6%. However, when the exposure time was expanded to 10 ruin, this survival rate dropped to 68.8%. When the blastocyst were vitrified in EFS solution after equilibration for 2, 5 and 10 minutes, the survival rate of embryos which developed to normal blastocyst following thawing and culture processing were 58.5, 46.7 and 22.4%, respectively. The optimal time of equilibration of mouse morula and blastocysts in EFS solution seemed o be 2 and 5 ruin.
Studies were conducted to seek reasonable methods of rapid freezing of mouse embryos using liquid nitrogen. The effects of the cryoprotectants concentration and the substitution of raffinose to sucrose in freezing and dilution medium on mouse embryo survival rates were determined using the FDA-test. The summarized results are as follows : 1. When 0.3M of sucrose was added into the freezing and dilution medium, FDA scores of embryos were 1.48(1.5M), 3.81(3.0M) and 4.10(4.5M). Higher FDA scores of embryos were obtained in 3.0M and 4.5M glycerol concentrations (P<0.05). 2. With the addition of 0.3M raffinose to the freezing and dilution medium, FDA scores of embryos did not significantly differ between glycerol levels ; 3.97(1.5M), 4.11(3.0M) and 3.54(4.5M). Higher scores of embryos existed in 3.0M glycerol concentration. 3. Concentration of sucrose or raffinose in freezing and dilution medium affected FDA scores of embryos. When sucrose concerations of 0.3, 0.5 and 1.0M were added to the freezing medium, FDA scores of embryos were 3.12, 2.38 and 0, respectively. However, when the same concentrations of raffinose were added to freezing medium, the FDA scores were 4.21, 2.91 and 0. In both cases, better FDA scores of embryos were attained in 0.3M of sucrose or raffinose (P<0.01).
This study was carried out investigate the effect of water quality and the kind of media on the in vitro development of 1-cell and stage mouse embryos. $F_1$ hybrid mice were superovulated and timely mated. 1-cell stage and 2-cell stage mouse embryos were recruited and taken into Ham's F-10 or m-KRB media which was made of two of two kinds of water having different quality, highly purified water and tap water. 2-cell stage embryos grew up well in vitro to blastocyst or hatching blastocyst regardless of the composition of culture media, but 1-cell stage mouse embryo didn't develop well to blastocyst or hatching blastocyst in simple media like m-KRB. These results meant in vitro devleopment of 1-cell stage mouse embryo neded complex media like Ham's F-10 which contained abundant protein components. In case of quality control for water, in vitro fertilization program. observation of in vitro development of 2-cell mouse embryos up to blastocyst or hatching blastocyst media such as m-KRB would be efficatious in detecting the difference of water quality.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.102-102
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2002
Heparin-bindin epidermal growth factor (HB-EGF) is one of the EGF family to be expressed at the time of implantation in the mouse uterus. Although HB-EGF has been shown to stimulate the development of embryo and uterus in the mouse, its correlation between cell adhesion molecules remains undefined. Integrin $\alpha$$_{ν}$$\beta$$_3$, one of the cell adhesion molecules, is an important mediator of cell-substratum and cell-cell adhesion in implantation. In the present studies, we investigated the effects of HB-EGF on the embryonic development, initiation of implantation and expression of integrin $\alpha$$_{ν}$$\beta$$_3$ in in vitro culture, blocking of HB-EGF, RT-PCR and immunofluores cence analysis. The results showed that HB-EGF significantly improved the developmental rate of hatched embryos (24.1%, p<0.01) and outgrowth embryos (42.5%, p<0.01). On the other hand, this growth factor showed no offset before the hatching embryonic stage. Analysis of RT-PCR showed that HB-EGF upregulated the expression level of integrina $\alpha$$_{ν}$$\beta$$_3$ subunit genes on the preimplantation embryo and outgrowth of blastocyst (120hr and 144hr after hCG injection). Immunofluorescence analysis showed that the integrin $\alpha$$_{ν}$$\beta$$_3$ subunits localized at the pericellular borders and cell-cell contact areas. Increase in fluorescence intensity was observed in the HB-EGF treated embryos. Intrauterine injection of an anti-HB-EGF antiserum at day 3 significantly decreased the number of implantation sites (14.4, p<0.01) and significantly increased the number of recovered embryos(6.4, p<0.05) at day 5. From these results, it imply that HB-EGF improve the embryo development and accelerated the expression of integrin $\alpha$$_{ν}$$\beta$$_3$ in the preimplantation mouse embryos.
Kim, Ju-Hwan;Park, Kee-Sang;Lee, Taek-Hoo;Chun, Sang-Sik;Song, Hai-Bum
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.27
no.1
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pp.1-7
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2000
Objective: Mammalian embryos undergo changes of energy environment for transfer from oviduct to uterus. Also, the human reproductive organ (oviduct, uterus) contains energy sources of different concentration (oviduct - glucose: 0.5 mM, pyruvate: 0.32 mM, lactate: 10.5 mM; uterus - goucose: 3.15 mM, pyruvate: 0.1mM, lactate: 5.87 mM, respectively). This study was conducted to examine the effect of these energy sources added in DMEM with glutamine on the mouse embryo development. Methods: There was used ICR female mouse. Two cell embryos of mouse are collected by method of 'flushing'. Flushing fluid was used Ham's F-10 added to 20% FBS. The collected 2 cell embryos were cultured in media such as Control (only DMEM), group A and B (DMEM supplemented with 0.5 mM and 3.15 mM glucose), and group C and D (DMEM supplemented with 0.1 mM and 0.32 mM pyruvate), and group E and F (DMEM supplemented with 5.87 mM and 10.5 mM lactate). All experimental media supplemented with 20% hFF, respectively. Pattern of embryo development was observed to interval at 24hr during 96hr. Results : The media with glutamine added glucose (group A: 51.0%; group B: 48.4%) was significantly (p<0.05) higher than other experimental group in development into the morula stage after 24 hr in culture, but not significantly different compared with control and the rate of development into the blastocyst was significantly (p<0.05) low in the both of pyruvate (group C: 7.9% group D: 6.8%) and lactate (group E: 7.1%, group F: 7.1%) treatment group after 48 hr in culture. Development into the blastocyst and hatched balstocyst after 72 hr in culture revealed similarly in control (81.9%) and glucose treatment group (group A: 83.3%, group B: 82.8%). However, development into the hatched and attached blastocyst after 96hr in culture revealed significantly (p<0.05) development in the glucose treatment group (group A: 82.3%, group B: 78.5%) than control (63.2%), and its of pyruvate (group C: 34.1%, group D: 34.1%) and lactate (group E: 25.9%, group F: 33.3%) treatment group were significantly (p<0.05) lower than control similar to previous observations. Conclusion : The glucose added to the DMEM with only glutamine, as energy source, was highly to the rate of development compared with control, but the other energy sources were not, synthetically. Above refer to, the human reproductive organ (oviduct, uterus) contains energy sources of different concentration. Thus, further studies are will examine continuously to effects by interaction of different energy sources in the mouse embryo development, and these results will provide to foundation on the human embryo culture.
Objective: The Id family of helix-loop-helix proteins are thought to affect the balance between cell growth and differentiation by negatively regulating the function of basic-helix-loop-helix (bHLH) transcriptional factors. The aim of this study was to investigate the expression pattern of Ids (Id-1, -2, -3, and -4) in preimplantation mouse embryos at mRNA and protein levels. Methods: Oocytes and preimplantation embryos were collected from reproductive organs of female ICR mice following superovulation. RT-PCR was performed to investigate the mRNA expression patterns of Id genes and their protein were localized by immunofluorescence analysis. Results: Id-1 and Id-3 mRNAs were strongly expressed at the germinal vesicle (GV) oocyte and the blastocyst stages. Id-2 mRNA was expressed throughout preimplantation embryo development, but Id-4 was not expressed. Immunofluorescence showed that Id-1 and Id-2 were predominantly localized in cytoplasmic region, but the immunofluorescence signal of Id-3 was weak throughout preimplantation embryo development. Conclusion: These data show for the first time that Ids are expressed in preimplantation mouse embryos and suggest that Ids may play an important role in early preimplantation embryo development and uterine physiological changes.
The present study was to assess the effect of ultrarapid freezing on the development of 1-cell mouse zygote using cryoprotectants, DMSO (dimethyl sulfoxide) or PROH (1,2-propanediol). We investigated the effect of the type and concentration of cryoprotectant, and of the temperature and time of prefreezing equilibration on their capacity to develop to the blastocyst stage in vitro. The concenration, the equilibration temperature, and the exposure time seemed to serve as an important factor in ultrarapid freezing of 1-cell mouse zygotes. In addition to the exposure time and the concentration of cryoprotectant appeared to playa key role in the development of the embryo. In general, the development of the embryo was more effective at $3^{\circ}C$ than $23^{\circ}C$ and 4.5 M than 3 M for 3 to 5 minutes. At $23^{\circ}C$ the development of the embryo was stimulated by DMSO while at $3^{\circ}C$ it was stimulated by PROH. Thus it has been suggested that there exists a correlation between the concentration of cryoprotectants and exposure time in the development of the embryo. In conclusion, we found that for ultrarapid freezing of mouse 1-cell embryos in DMSO, or PROH-based solution, viability shown optimum depending on the cryoprotectant, the concentration of the cryoprotectant and on the temperature and the duration of equilibration.
Follicular fluid meiosis-activating sterol (FF-MAS) has been suggested as a positive factor which could improve the oocyte quality and subsequent embryo development after in vitro fertilization. However, FF-MAS is a highly lipophilic substance and is hard to detect in studying the relationship between MAS and quality of oocyte maturation. The present study focused on the expression of lanosterol 14${\alpha}$-demethylase (LDM), a key enzyme that converts lanosterol to FF-MAS, on mouse oocyte maturation and its potency on development. LDM expression was strong in gonadotropin-primed germinal vesicle stage oocytes, weak after germinal vesicle breakdown (GVBD), and then strong in MII stage oocytes. The LDM-specific inhibitor azalanstat significantly inhibited oocyte fertilization (from 79.4% to 68.3%, p<0.05). Also, azalanstat (5 to 50 ${\mu}M$) decreased the percentage of blastocyst development dosedependently (from 78.7% to 23.4%, p<0.05). The specific inhibition of sterol ${\Delta}14$-reductase and ${\Delta}7$-reductase by AY9944 accumulates FF-MAS and could increase blastocyst development rates. Additionally, in the AY9944 group, the rate of inner cell mass (ICM)/ total cells was similar to that of in vivo development, but the rate was significantly decreased in azalanstat treatment. In conclusion, LDM, the key enzyme of FF-MAS production, may play an important role in fertilization and early development of the mouse embryo, especially in vitro.
These experiments were carried out to determine the effect of cell stage in embryo bisection on the sub-Sequent in vitro and in vivo development in mouse. The embryos of ICR mouse were microsurgicaily bisected at 2-cell, 4-cell, 8-cell, morula and blastocyst stage using a microsurgical blade attached a micromanipulator. These demi-embryos without zona pellucida were cultured up to blastocyst stage and transferred to pseudopregnant mice, and the development of these demi-embryos was compared with the results of intact embryos of the corresponding cell stage. The successful rate of mouse embryo bisection at 4-cell stage (59.0%) was significantly (p <0.05) lower than those at 8-cell (75.6%), 2ce11 (80.7%) or morula stage (84.8%), and highest at blastocyst stage (95.7%). When the bisected embryos without any damage from microsurgery were cultured in vitro up to blastocyst,the in vitro de'velopment of demi-embroys bisected at morula to blastocyst was 91.6 to 95.3%, which was similar to the culture result of intact embryos of corresponding stage. However, the in vitro development of demi-em-bryos bisected at 2- to 8-cell stage was signiflcantiy (p <0.05) lower.The post-transfer implantation rate of demi-embryos developed in vitro to eu-blastocyst were 19.6 and 25.4% in demi-embryos bisected at morula and blastocyst stage,respectively and not significantly (P <0.05)different from the result of intact embryos of the same stage. However, the implantation rates of demi-embryos bisected at 2- or 8-cell stage were significantly (P <0.05) lower than the result from the intact embryos of the corresponding stage.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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