Objective: The study was performed to compare the survival rate and the development of day 2 mouse embryos which had freezing procedures done. Methods: We used three different vitrification solutions (EFS, VS14, DPS) and a ultrarapid freezing solution (UFS) for cryopreservation of day 2 mouse embryo. Results: We tested toxicity by exposing embryos to vitirification solutions and a ultrarapid freezing solution. The survival rates are 100%, 97.8%, 95.6% and 100% (EFS, VS14, DPS and UFS). After cultured for 96 hours, hatching rates of each group are 93.5% (no freezing), 95.6% (EFS), 86.4% (VS14), 93.0% (DPS), and 93.0% (UFS). There is no significant differences among groups. The survival rates after thawing cryopreserved embryos are 80.2%, 91.7%, 69.5%, 0% and 91.8% (slow freezing, EFS, VS14, DPS and UFS). Also cultured for 96 hours, the hatching rates are 93.5% (no freezing), 84.1% (slow freezing), 93.9% (EFS), 48.5% (VS14) and 70.1% (UFS). Conclusion: The survival rates of vitrification in EFS solution and ultrarapid freezing are higher than slow freezing (p<0.05). The hatching rate of vitrification in EFS solution cultured for 96 hours is highest, so vitrification of day 2 mouse embryos in EFS solution considered as more effective for cryopreservation.
This study was carried out to investigate the inhibiting or promoting effect of fetal bovine serum fractionated by the molecular weight and to examine the effect of reconstruction of serum fractions on the development of 1- and 2-cell mouse embryos fertilized in vitro (IVEE) . The serum was separated by ultrafiltration or gel filtration methods and added in m-KRB medium for culture of IVFE. The developemental ability(cavitation and hatching) of embryos following culture of day 4 and 6 was compared among fractions. Small molecular weight fraction( <3 kDa) significantly inhibited the development of 1-and 2-cell IVFE to the blastocyst stages, compared with other fractions. One-cell IVFE were more sensitively damaged than 2-cell embryos by that fraction and arrested mainly at 2~4 cell stages. Moreover, small amount(<3%,v /v) of the inhibiting fraction acted even with protein rich fraction(100~30 kDa) and arrested the embryonic development. On the other hand, 100~30 kDa fraction promoted the embryonic development and no inhibiting effect was observed at the level of 50%(v /v) in culture medium In the experiment of gel filtraton, =30 kDa fraction showed the highest promoting effect on the embryonic development, but <4 kDa fraction inhibited significantly the development. These results suggest that serum contains not only small molecular weight inhibitory component(s) but also promoting one rather than albumin on embryonic development. And serum can be more effectively used in the IVF program after removal of inhibitory component(s) by one of above separation methods.
It has been wel known that phospholipase C(PLC) plays an important role in the intracellular signaling in a variety of cell types. However, involvement of PLC in mouse oocyte maturation and preimplantation embryo development remains unknown. The present study examined the expression patterns of the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 during oocyte maturatio and preimplantation embryo development study examined the expression patterns of the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 during oocyte maturation and preimplantation embryo development by the competitive reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR method). PLC \gamma 1 mRNA (0.1 fg) was readily detected in germinal vesicle (GV)-stage oocyte and its level was reduced as meiotic resumption proceeded. PLC-\beta 1 mRNA (<0.1 fg) as detected at low level at GV-stage oocytes and scarcely detected at germinal vescle breakdown (GVBD)-stage oocytes. After fertilization, both PLC \beta 1 and \gamma 1 mRNA levels began to increase at morula-stage embryos (0.2 fg) and were more prominent in blastocyst-stage embryos(1 fg). to elucidate the possible involvement of PLC via protein kinase C(PKC) pathway during oocyte maturation and preimplantation embryo development , the effects of sphingosine (PKC inhibitor), sn-$diC_{8}$(PKC activator) anc U73122 (PLC ingibitor) were examined. Treatment of GV-stage oocytes with sphingosine (20 \mu M) facilitated the meiotic resuption by 10-20 over the control within 1 h as judged by GVBD, whereas U73122 failed to show any significant effect. U73122 (10 \mu M) effectively blocked the compaction of morula, while sn-$diC_{8}$(50 \mu M). In summary, the present study shows that the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 are expressed in a developmental stage-specific manner and PLC-PKC pathway may be involved in early preimplantation embryo development.
In the present study, mouse follicular oocytes and 2-cell embryos(late -zygote stage embryos included) were cultured on the electric pad for electric stimulation in the culture incubator. In addition, follicular oocytes and embryos were tested for maturation and development under higher temperature condition($39^{\circ}C$).Mouse follicular oocyte maturation were not affected by anion electric stimulation and there is no significant difference in GBVD and MI between the control and experiment group after 4hr culture. In the embryo culture, it was found that more morula and blastocyst were found in the electric stimulation group rather than the control(96hr). This may seem to be caused with cytoplasmic $Ca^{2+}$ transient rise by electric stimulation(anion pad). On the other hand higher temperature incubation ($39^{\circ}C$) on the anion pad caused all the embryos degenerated within $12h{\sim}24hr$ culture. This was quite different from large animal embryos(bovine, pig, sheep), in which beneficial effect of high temperature incubation for oocyte maturation and embryo development were found.
The present study investigated the effect of treatment with nocodazole on the efficiency of cell cycle synchronization and development of mouse 4-cefl embryos. In addition, developmental ability of reconstituted embryos that received nuclei from 4-cell embryos synchronized with nocodazole at M phase was examined in vitro and in vivo. (1) When 4-cell blastorneres exposed to culture medium containing l$\mu$g /ml nocodazole for 2, 4, 6 and 8 hrs, 40% (40/10l), 75% (l19/159), 85% (87/102) and 97% (155/160) of nuclei were synchronized at M phase, respectively. (2) Treated with nocodazole for 4 hrs, the proportion of 4-cell embryos developed to blastocysts (98%, 60/61) was not significanUy different from that of the control embryos (98%, 196/201). However, the developmental ability of 4-cell embryos treated for 8 (87%, P<0.05)and 12 hrs (76%, P
Kim, E.Y.;Uhm, S.J.;Kim, M.K.;Yoon, S.H.;Park, S.P.;Chung, K.S.;Lim, J.H.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
/
v.24
no.1
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pp.13-20
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1997
The objective of this study was to determine the effect of EGF on the preimplantation development of mouse IVF embryos and their ICM and TE cell number. And also, we examined the expression of EGF-R protein on embryonic development by indirect immunofluorescence. The results obtained in these experiments were summarized as follows; Group culture (5 embryos/ 25 ${\mu}l$) showed more improved development rate to blastocyst than singly culture. This inferior development of singly cultured 2-cell embryos improved by the addition of EGF. Especially, 2-cell embryos cultured singly in 10 ng/ml of EGF (62.4%) indicated significant difference in development to blastocyst compared with control group (47.9%). Also, cell number of ICM and TE by differential labelling showed the increased pattern in the EGF treatment group. The stimulating effect of EGF with the development level was significantly increased after 4-cell stage (p<0.05). ICM proportion also showed the increased pattern with the developmental level in the EGF treatment group. In addition, expression of EGF-R by indirect immunofluorescence detected after 4-cell stage. Therefore, EGF could stimulate preimplantation mouse embryo development by binding with expressed EGE-R after 4-cell stage and produce the more increased ICM and TE cell number of blastocyst.
Junction-mediating and regulatory protein (JMY) is a regulator of both transcription and actin filament assembly. The actin-regulatory activity of JMY is based on a cluster of three actin-binding Wiskott-Aldrich syndrome protein homology 2 (WH2) domains that nucleate actin filaments directly and promote nucleation of the Arp2/3 complex. In addition to these activities, we examined the activity of JMY generation in early embryo of mice carrying mutations in the JMY gene by CRISPR/Cas9 mediated genome engineering. We demonstrated that JMY protein shuttled expression between the cytoplasm and the nucleus. Knockout of exon 2, CA (central domain and Arp2/3-binding acidic domain) and NLS-2 (nuclear localization signal domain) on the JMY gene by CRISPR/Cas9 system was effective and markedly impeded embryonic development. Additionally, it impaired transcription and zygotic genome activation (ZGA)-related genes. These results suggest that JMY acts as a transcription factor, which is essential for the early embryonic development in mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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