Background: The current conventional drug susceptibility test (DST) for Mycobacterium tuberculosis (Mtb) takes several weeks of incubation to obtain results. As a rapid method, molecular DST requires only a few days to get the results but does not fully cover the phenotypic resistance. A new rapid method based on the ability of viable Mtb bacilli to hydrolyze fluorescein diacetate to free fluorescein with detection of fluorescent mycobacteria by flow cytometric analysis, was recently developed. Methods: To evaluate this cytometric method, we tested 39 clinical isolates which were susceptible or resistant to isoniazid (INH) or rifampin (RIF), or ethambutol (EMB) by phenotypic or molecular DST methods and compared the results. Results: The susceptibility was determined by measuring the viability rate of Mtb and all the isolates which were tested with INH, RIF, and EMB showed susceptibility results concordant with those by the phenotypic solid and liquid media methods. The isolates having no mutations in the molecular DST but resistance in the conventional phenotypic DST were also resistant in this cytometric method. These results suggest that the flow cytometric DST method is faster than conventional agar phenotypic DST and may complement the results of molecular DST. Conclusion: In conclusion, the cytometric method could provide quick and more accurate information that would help clinicians to choose more effective drugs.
Early and accurate detection of drug resistant Mycobacterium tuberculosis can improve both the treatment outcome and public health control of tuberculosis. A number of molecular-based techniques have been developed including ones using probe molecules that target drug resistance-related mutations. Although these techniques are highly specific and sensitive, mixed signals can be obtained when the drug resistant isolates are mixed with drug susceptible isolates. In order to overcome this problem, we developed a new drug susceptibility test (DST) for one of the most effective anti-tuberculosis drug, isoniazid. This technique employed a microplate hybridization assay that quantified signals from each probe molecule, and was evaluated using clinical isolates. The evaluation analysis clearly showed that the microplate hybridization assay was an accurate and rapid method that overcame the limitations of DST based on conventional molecular techniques.
Background: The emergence of drug-resistant tuberculosis (TB), is a major menace to cast off TB worldwide. Line probe assay (LPA; GenoType MTBDRplus ver. 2) and Xpert MTB/RIF assays are two rapid molecular TB detection/diagnostic tests. To compare the performance of LPA and Xpert MTB/RIF assay for early diagnosis of rifampicin-resistant (RR) TB in acid-fast bacillus (AFB) smear-positive and negative sputum samples. Methods: A total 576 presumptive AFB patients were selected and subjected to AFB microscopy, Xpert MTB/RIF assay and recent version of LPA (GenoType MTBDRplus assay version 2) tests directly on sputum samples. Results were compared with phenotypic culture and drug susceptibility testing (DST). DNA sequencing was performed with rpoB gene for samples with discordant rifampicin susceptibility results. Results: Among culture-positive samples, Xpert MTB/RIF assay detected Mycobacterium tuberculosis (Mtb) in 97.3% (364/374) of AFB smear-positive samples and 76.5% (13/17) among smear-negative samples, and the corresponding values for LPA test (valid results with Mtb control band) were 97.9% (366/374) and 58.8% (10/17), respectively. For detection of RR among Mtb positive molecular results, the sensitivity of Xpert MTB/RIF assay and LPA (after resolving discordant phenotypic DST results with DNA sequencing) were found to be 96% and 99%, respectively. Whereas, specificity of both test for detecting RR were found to be 99%. Conclusion: We conclude that although Xpert MTB/RIF assay is comparatively superior to LPA in detecting Mtb among AFB smear-negative pulmonary TB. However, both tests are equally efficient in early diagnosis of AFB smear-positive presumptive RR-TB patients.
Tuberculosis (TB) remains an unsolved community health problem since identification of its causing microorganism called Mycobacterium tuberculosis (MTB) by Robert Koch in 1882. Annually, eight million TB cases are newly reported and 2~3 million patients die from TB. Pulmonary TB is highly infectious and untreated pulmonary TB patients are believed to infect >10 people in a year. The conventional methods for diagnosis of TB are chest X-ray and isolation of the causing microorganisms from patient specimens. Screening of TB is conducted with smeared sputum in slides, and TB is confirmed by identification of MTB in cultured specimens. One of the fatal pitfalls of screening detection for smeared sputum is that it is impossible to distinguish MTB and other acid-fast bacilli (AFB) because they are stained equally with Ziehl-Neelsen (ZN) stain. Culture of MTB is the most reliable method for diagnosis of TB but it takes 4~8 weeks. In this report, we suggest a fast and highly-reliable MTB detection method that distinguishes AFB in sputum samples. Purified DNA from the AFB stained slide samples offered by The Korean Institute of Tuberculosis were used to detect infected MTB in patients. PCR, real-time PCR and reverse blot hybridization assay (REBA) methods were applied to purified DNA. Conclusively, the real-time PCR method was confirmed to produce high sensitivity and we were able to further detect drug-resistant MTB with REBA.
Cephalosporin-C deacetylase (CAH) catalyzes the deacetylation of cephalosporin derivatives. A novel gene encoding the CAH from Bacillus sp. KCCM10143 was cloned and sepuenced. The uncleotide sequence contained an open reading frame encoding a polypeptide consisting of 217 amino acids and a molecular weight of 24 kDa which was in good agreement with the value obtained by sodium dodecylsulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. An expression plasmid was constructed by inserting the CAH gene into the region of the pTrc99A expression vector. An active from of the CAH protein was expressed in the soluble fraction obtained after cell disruption. in fermentation using a 5-1 jar fementer, the transformant E. coli JM109 (pDST654) produced 4.12 U of CAH per ml of culture during 16 h of incubation.
Background: Multidrug-resistant tuberculosis (MDR-TB) is an increasing public health problem and poses a serious threat to global TB control. Fluoroquinolone (FQ) and aminoglycoside (AG) are essential anti-TB drugs for MDR-TB treatment. REBA MTB-FQ$^{(R)}$ and REBA MTB-KM$^{(R)}$ (M&D, Wonju, Korea) were evaluated for rapid detection of FQ and kanamycin (KM) resistance in MDR-TB clinical isolates. Methods: M. tuberculosis (n=67) were isolated and cultured from the sputum samples of MDR-TB patients for extracting DNA of the bacilli. Mutations in genes, gyrA and rrs, that have been known to be associated with resistance to FQ and KM were analyzed using both REBA MTB-FQ$^{(R)}$ and REBA MTB-KM$^{(R)}$, respectively. The isolates were also utilized for a conventional phenotypic drug susceptibility test (DST) as the gold standard of FQ and KM resistance. The molecular and phenotypic DST results were compared. Results: Sensitivity and specificity of REBA MTB-FQ$^{(R)}$ were 77 and 100%, respectively. Positive predictive value and negative predictive value of the assay were 100 and 95%, respectively, for FQ resistance. Sensitivity, specificity, positive predictive value and negative predictive value of REBA MTB-KM$^{(R)}$ for detecting KM resistance were 66%, 94%, 70%, and 95%, respectively. Conclusion: REBA MTB-FQ$^{(R)}$ and REBA MTB-KM$^{(R)}$ evaluated in this study showed excellent specificities as 100 and 94%, respectively. However, sensitivities of the assays were low. It is essential to increase sensitivity of the rapid drug resistance assays for appropriate MDR-TB treatment, suggesting further investigation to detect new or other mutation sites of the associated genes in M. tuberculosis is required.
Arokoyo, Dennis S.;Oyeyipo, Ibukun P.;Du Plessis, Stefan S.;Chegou, Novel N.;Aboua, Yapo G.
Toxicological Research
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제34권4호
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pp.325-332
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2018
The mechanism of the previously reported antidiabetic effect of Basella alba is unknown. This study investigated the role of B. alba aqueous leaf extract in the modulation of inflammatory cytokines and islet morphology in streptozotocin-induced diabetic rats. Forty male Wistar rats, between 8 and 10 weeks old, were randomly divided into four groups (n = 10) and administered the following treatments: Healthy control (H-c) and Diabetic control (D-c) animals received normal saline 0.5 mL/100 g body weight daily, while Healthy Treatment (H-Ba) and Diabetic Treatment (D-Ba) rats received the plant extract 200 mg/kg body weight daily. All treatments were administered by oral gavage. Diabetes was induced in D-c and D-Ba rats by a single intraperitoneal injection of streptozotocin (55 mg/kg body). The body weight and fasting blood sugar (FBS) levels were recorded every week for 4 weeks, after which the rats were euthanized and samples collected for further analysis. After the experiment, FBS level was significantly reduced (p < 0.0001) in rats in the D-Ba group, but increased (p < 0.001) in rats in the D-c group. The absolute (H-c and H-Ba vs D-c, p < 0.05) and relative (D-Ba vs H-c, p < 0.05; D-Ba vs H-Ba, p < 0.005) weights of the pancreases were significantly higher after the experiment. The rats in the D-c group had significantly higher levels of serum interleukin-$1{\beta}$ (p < 0.001 vs H-c; p < 0.05 vs H-Ba and D-Ba) and monocyte chemotactic protein-1 (p < 0.0001), but lower levels of interleukin-10 (p < 0.05) in comparison with the other groups. Histopathological examination revealed severe interstitial congestion, reduced islet area (p < 0.0001), and increased islet cell density in the D-c group compared with those in the D-Ba group. From these findings, it was concluded that the aqueous extract of B. alba stimulates the recovery of beta-islet morphology in streptozotocininduced diabetic rats by modulating the peripheral production of inflammatory cytokines.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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