Arduino, Daniela M.;Esteves, A. Raquel;Domingues, A. Filipa;Pereira, Claudia M.F.;Cardoso, Sandra M.;Oliveira, Catarina R.
BMB Reports
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제42권11호
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pp.719-724
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2009
Recent studies have revealed that endoplasmic reticulum (ER) disturbance is involved in the pathophysiology of neurodegenerative disorders, contributing to the activation of the ER stress-mediated apoptotic pathway. Therefore, we investigated here the molecular mechanisms underlying the ER-mitochondria axis, focusing on calcium as a potential mediator of cell death signals. Using NT2 cells treated with brefeldin A or tunicamycin, we observed that ER stress induces changes in the mitochondrial function, impairing mitochondrial membrane potential and distressing mitochondrial respiratory chain complex Moreover, stress stimuli at ER level evoked calcium fluxes between ER and mitochondria. Under these conditions, ER stress activated the unfolded protein response by an overexpression of GRP78, and also caspase-4 and-2, both involved upstream of caspase-9. Our findings show that ER and mitochondria interconnection plays a prominent role in the induction of neuronal cell death under particular stress circumstances.
Effect of the depletion or oxidation of GSH on mitomycin c (MMC)-induced mitochondrial damage and cell death was assessed in small cell lung cancer (SCLC) cells. MMC induced cell death and the decrease in the GSH contents in SCLC cells, which were inhibited by z-LEHD.fmk (a cell permeable inhibitor of caspase-9), z-DQMD.fmk (a cell permeable inhibitor of caspase-3) and thiol compound, N-acetylcysteine. MMC caused nuclear damage, release of cytochrome c and activation of caspase-3, which were reduced by N-acetylcysteine. The depletion of GSH due to L-butionine-sulfoximine enhanced the MMC-induced cell death and formation of reactive oxygen species in SCLC cells, whereas the oxidation of GSH due to diamide or $NH_2Cl$ did not affect cytotoxicity of MMC. The results show that MMC may cause cell death in SCLC cells by inducing mitochondrial dysfunction, leading to activation of caspase-9 and -3. The MMC-induced change in the mitochondrial membrane permeability, followed by cell death, in SCLC cells may be significantly enhanced by the depletion of GSH. In contrast, the oxidation of GSH may not affect cytotoxicity of MMC.
Ursolic acid, extracted from the traditional Chinese medicine bearberry, can induce apoptosis of gastric cancer cells. However, its pro-apoptotic mechanism still needs further investigation. More and more evidence demonstrates that mitochondrial translocation of cofilin-1 appears necessary for the regulation of apoptosis. Here, we report that ursolic acid (UA) potently induces the apoptosis of gastric cancer SGC-7901 cells. Further mechanistic studies revealed that the ROCK1/PTEN signaling pathway plays a critical role in UA-mediated mitochondrial translocation of cofilin-1 and apoptosis. These findings imply that induction of apoptosis by ursolic acid stems primarily from the activation of ROCK1 and PTEN, resulting in the translocation of cofilin-1 from cytoplasm to mitochondria, release of cytochrome c, activation of caspase-3 and caspase-9, and finally inducing apoptosis of gastric cancer SGC-7901 cells.
Lee, Seung Eun;Koo, Young Do;Lee, Ji Seon;Kwak, Soo Heon;Jung, Hye Seung;Cho, Young Min;Park, Young Joo;Chung, Sung Soo;Park, Kyong Soo
Molecules and Cells
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제38권4호
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pp.356-361
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2015
Mitochondrial dysfunction is associated with insulin resistance and diabetes. We previously showed that retinoid X receptor ${\alpha}$ ($RXR{\alpha}$) played an important role in transcriptional regulation of oxidative phosphorylation (OXPHOS) genes in cells with mitochondrial dysfunction caused by mitochondrial DNA mutation. In this study, we investigated whether mitochondrial dysfunction induced by incubation with OXPHOS inhibitors affects insulin receptor substrate 1 (IRS1) mRNA and protein levels and whether $RXR{\alpha}$ activation or overexpression can restore IRS1 expression. Both IRS1 and $RXR{\alpha}$ protein levels were significantly reduced when C2C12 myotubes were treated with the OXPHOS complex inhibitors, rotenone and antimycin A. The addition of $RXR{\alpha}$ agonists, 9-cis retinoic acid (9cRA) and LG1506, increased IRS1 transcription and protein levels and restored mitochondrial function, which ultimately improved insulin signaling. $RXR{\alpha}$ overexpression also increased IRS1 transcription and mitochondrial function. Because $RXR{\alpha}$ overexpression, knock-down, or activation by LG1506 regulated IRS1 transcription mostly independently of mitochondrial function, it is likely that $RXR{\alpha}$ directly regulates IRS1 transcription. Consistent with the hypothesis, we showed that $RXR{\alpha}$ bound to the IRS1 promoter as a heterodimer with peroxisome proliferator-activated receptor ${\delta}$ ($PPAR{\delta}$). These results suggest that $RXR{\alpha}$ overexpression or activation alleviates insulin resistance by increasing IRS1 expression.
[Purpose] The purpose of the study was to determine the combined effects of resveratrol supplementation with high-flow LSS on mitochondrial biogenesis in human vascular endothelial cells. [Methods] Cultured human umbilical vein endothelial cells were treated with 20 μM of RSV. For the shear experiments, cells grown to a >90% confluence were exposed to physiological levels of LSS (5 to 20 dyne/cm2) for 12 to 36 hours using a cone and plate shear apparatus. Gene expressions were analyzed by western blotting. [Results] Depletion of mitochondrial integrity was directly associated with increase in endothelial activation/dysfunction. The expressions of mitochondrial biogenesis regulator genes, such as SIRT1, PGC-1α, and TFAM, and the mitochondrial contents were significantly increased after treatment with both resveratrol and high-flow LSS for 12 hours. However, supplementation of resveratrol to high-flow LSS for a prolonged duration had no synergistic effect on the levels of mitochondrial biogenesis regulator gene expressions and mitochondrial content compared to the LSS treatment alone. [Conclusion] The present study demonstrated that the supplementation of resveratrol to high-flow LSS has no synergistic effects on enhancing mitochondrial integrity in human vascular endothelial cells.
The pro-apoptotic BCL-2 family protein BID activates BAK and/or BAX, which form oligomeric pores in the mitochondrial outer membrane. This results in the release of cytochrome c into the cytoplasm, initiating the apoptotic cascade. Here, we utilized liposomes encapsulating sulfo-rhodamine at a controlled temperature to improve upon a previously reported assay system with enhanced sensitivity and specificity for measuring membrane permeabilization by BID-dependent BAK activation. BAK activation was inhibited by BCL-$X_L$ protein but not by a mutant protein with impaired anti-apoptotic activity. With the assay system, we screened a chemical library and identified several compounds including trifluoperazine, a mitochondrial apoptosis-induced channel blocker. It inhibited BAK activation by direct binding to BAK and blocking the oligomerization of BAK.
Ceramide induces cell death in a variety of cell types however, the underlying molecular mechanisms related to renal epithelial cells remain unclear. The present study was undertaken to determine the role of extracellular signal-regulated protein kinase (ERK) in ceramide-induced cell death in renal epithelial cells. An established renal proximal tubular cell line of opossum kidney (OK) cells was used for this research. Ceramide induced apoptotic cell death in these cells. Western blot analysis showed that ceramide induced activation of ERK. The ERK activation and cell death induced by ceramide were prevented by the ERK inhibitor PD98059. Ceramide caused cytochrome C release from mitochondria into the cytosol as well as activation of caspase-3. Both effects were prevented by PD98059. The ceramide-induced cell death was also prevented by a caspase inhibitor. These results suggest that ceramide induces cell death through an ERK-dependent mitochondrial apoptotic pathway in OK cells.
Cordyceps militaris is well known as a traditional medicinal mushroom and has been shown to exhibit immunostimulatory and anticancer activities. In this study, we investigated the apoptosis induced by an aqueous extract of C. militaris (AECM) via the activation of caspases and altered mitochondrial membrane permeability in human breast cancer MDA-MB-231 cells. Exposure to AECM induced apoptosis, as demonstrated by a quantitative analysis of nuclear morphological change and a flow cytometric analysis. AECM increased hyperpolarization of mitochondrial membrane potential and promoted the activation of caspases. Both the cytotoxic effect and apoptotic characteristics induced by AECM treatment were significantly inhibited by z-DEVD-fmk, a caspase-3 inhibitor, which demonstrates the important role of caspase-3 in the observed cytotoxic effect. AECM-induced apoptosis was associated with the inhibition of Akt activation in a time-dependent manner, and pretreatment with LY294002, a PI3K/Akt inhibitor, significantly increased AECM-induced apoptosis. The results indicated that AECM-induced apoptosis may relate to the activation of caspase-3 and mitochondria dysfunctions that correlate with the inactivation of Akt.
During T cell activation, mitochondrial content increases to meet the high energy demand of rapid cell proliferation. With this increase, the level of reactive oxygen species (ROS) also increases and causes the rapid apoptotic death of activated cells, thereby facilitating T cell homeostasis. Nicotinamide (NAM) has previously been shown to enhance mitochondria quality and extend the replicative life span of human fibroblasts. In this study, we examined the effect of NAM on $CD8^+$ T cell activation. NAM treatment attenuated the increase of mitochondrial content and ROS in T cells activated by CD3/CD28 antibodies. This was accompanied by an accelerated and higher-level clonal expansion resulting from attenuated apoptotic death but not increased division of the activated cells. Attenuation of ROS-triggered pro-apoptotic events and upregulation of Bcl-2 expression appeared to be involved. Although cells activated in the presence of NAM exhibited compromised cytokine gene expression, our results suggest a means to augment the size of T cell expansion during activation without consuming their limited replicative potential.
Kim, Na-Ri;Youm, Jae-Boum;Joo, Hyun;Kim, Hyung-Kyu;Kim, Eui-Yong;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제9권4호
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pp.187-193
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2005
Several signal transduction pathways have been implicated in ischemic preconditioning induced by the activation of ATP-sensitive $K^+$$(K_{ATP})$ channels. We examined whether protein kinase C (PKC) modulated the activity of $K_{ATP}$ channels by recording $K_{ATP}$ channel currents in rabbit ventricular myocytes using patch-clamp technique and found that phorbol 12,13-didecanoate (PDD) enhanced pinacidil-induced $K_{ATP}$ channel activity in the cell-attached configuration; and this effect was prevented by bisindolylmaleimide (BIM). $K_{ATP}$ channel activity was not increased by $4{\alpha}-PDD$. In excised insideout patches, PKC stimulated $K_{ATP}$ channels in the presence of 1 mM ATP, and this effect was abolished in the presence of BIM. Heat-inactivated PKC had no effect on channel activity. PKC-induced activation of $K_{ATP}$ channels was reversed by PP2A, and this effect was not detected in the presence of okadaic acid. These results suggest that PKC activates $K_{ATP}$ channels in rabbit ventricular myocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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