The implications of nutrient starvation due to aging on the degeneration of the retinal pigment epithelium (RPE) is yet to be fully explored. We examined the involvement of AMPK activation in mitochondrial homeostasis and its relationship with the maintenance of a healthy mitochondrial population and epithelial characteristics of RPE cells under nutrient starvation. Nutrient starvation induced mitochondrial senescence, which led to the accumulation of reactive oxygen species (ROS) in RPE cells. As nutrient starvation persisted, RPE cells underwent pathological epithelial-mesenchymal transition (EMT) via the upregulation of TWIST1, a transcription regulator which is activated by ROS-induced NF-κB signaling. Enhanced activation of AMPK with metformin decelerated mitochondrial senescence and EMT progression through mitochondrial biogenesis, primed by activation of PGC1-α. Thus, by facilitating mitochondrial biogenesis, AMPK protects RPE cells from the loss of epithelial integrity due to the accumulation of ROS in senescent mitochondria under nutrient starvation.
Severe acute respiratory syndrome-associated coronavirus (SARS-CoV), a distant member of the Group 2 coronaviruses, has recently been identified as the etiological agent of severe acute respiratory syndrome (SARS). The genome of SARS-CoV contains four structural genes that are homologous to genes found in other coronaviruses, as well as six subgroup-specific open reading frames (ORFs). ORF3 encodes a predicted 154-amino-acid protein that lacks similarity to any known protein, and is designated 3b in this article. We reported previously that SARS-CoV 3b is predominantly localized in the nucleolus, and induces G0/G1 arrest and apoptosis in transfected cells. In this study, we show that SARS-CoV 3b fused with EGFP at its N- or C- terminus co-localized with a mitochondriaspecific marker in some transfected cells. Mutation analysis of SARS-CoV 3b revealed that the domain spanning amino acids 80 to 138 was essential for its mitochondria localization. These results provide new directions for studies of the role of SARS-CoV 3b protein in SARS pathogenesis.
Nitric oxide (NO)-induced protein S-nitrosylation triggers mitochondrial dysfunction and was related to cell senescence. However, the exact mechanism of these damages is not clear. In the present study, to investigate the relationship between in vitro aging and NO-induced protein S-nitrosylation, oocytes were treated with sodium nitroprusside dihydrate (SNP), and the resultant S-nitrosylated proteins were detected through biotin-switch assay. The results showed that levels of protein S-nitroso thiols (SNO)s and expression of S-nitrosoglutathione reductase (GSNOR) increased, while activity and function of mitochondria were impaired during oocyte aging. Addition of SNP, a NO donor, to the oocyte culture led to accelerated oocyte aging, increased mitochondrial dysfunction and damage, apoptosis, ATP deficiency, and enhanced ROS production. These results suggested that the increased NO signal during oocyte aging in vitro, accelerated oocyte degradation due to increased protein S-nitrosylation, and ROS-related redox signaling.
Objectives: The all anti-obesity drugs currently approved by the US Food and Drug Administration work by reducing energy intake. In fact, no approved drug targets energy expenditure. In Korean medicine, it is known to Qi or Yang invigorating therapy could increase energy metabolism. Aconitum carmichaeli Debx (ACD) is a Yang invigorating herb, often used for treat obesity in Korean medicine. In the present study, the authors investigated the regulatory effects of ACD in energy metabolism and mitochondrial biogenesis in C2C12 skeletal muscle cells. Methods: The water extract of ACD (0.2, 0.5 and 1.0 mg/ml) were treated in differentiated C2C12 cells. The protein or mRNA levels of target genes were analyzed and mitochondrial mass were investigated. Results: ACD activated the expressions of peroxisome proliferator-activated receptor gamma coactivator 1-alpha ($PGC-1{\alpha}$), nuclear respiratory factor 1 and TFAM and increased mitochondrial mass. ACD also increased adenosin monophosphate-activated protein kinase (AMPK), and acetyl-CoA carboxylase. Conclusions: This study suggests that ACD has the potential to increase energy metabolism and mitochondrial biogenesis by activating AMPK and $PGC1{\alpha}$.
Kim, Na-Ri;Youm, Jae-Boum;Joo, Hyun;Kim, Hyung-Kyu;Kim, Eui-Yong;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제9권4호
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pp.187-193
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2005
Several signal transduction pathways have been implicated in ischemic preconditioning induced by the activation of ATP-sensitive $K^+$$(K_{ATP})$ channels. We examined whether protein kinase C (PKC) modulated the activity of $K_{ATP}$ channels by recording $K_{ATP}$ channel currents in rabbit ventricular myocytes using patch-clamp technique and found that phorbol 12,13-didecanoate (PDD) enhanced pinacidil-induced $K_{ATP}$ channel activity in the cell-attached configuration; and this effect was prevented by bisindolylmaleimide (BIM). $K_{ATP}$ channel activity was not increased by $4{\alpha}-PDD$. In excised insideout patches, PKC stimulated $K_{ATP}$ channels in the presence of 1 mM ATP, and this effect was abolished in the presence of BIM. Heat-inactivated PKC had no effect on channel activity. PKC-induced activation of $K_{ATP}$ channels was reversed by PP2A, and this effect was not detected in the presence of okadaic acid. These results suggest that PKC activates $K_{ATP}$ channels in rabbit ventricular myocytes.
The whole mitochondrial genome (14,915 nt) of Pollicipes mitella (Crustacea, Maxillopoda, Cirripedia, Thoracica) was sequenced and characterized. It is the shortest of the 31 completely sequenced crustacean mitochondrial genomes, with the exception of a copepod Tigriopus japonicus (14,628 nt). It consists of the usual 13 protein-coding genes, 22 tRNA genes, 2 rRNA genes, and 1 relatively short non-coding region (294 nt). The thoracican cirripeds apart from Megabalanus volcano have the same arrangement of protein-coding genes as Limulus polypemus, but there are frequent tRNA gene translocations (at least 8). Some interesting translocation features that may be specific to the thoracican cirriped lineage are as follows: 1) trnK-trnQ lies between the control region and trnI, 2) trnA-trnE lies between trnN and trnS1, 3) trnP lies between ND4L and trnT, and 4) trnY-trnC lies between trnS2 and ND1. In P. mitella there are two trnL genes (L1 and L2) in the typical crustacean positions (ND1-L1-LrRNA and CO1-L2-CO2). The present result is compared and discussed with the other three cirriped mitochondrial genomes from one pedunculate (Pollicipes polymerus) and two sessiles (Tetraclita japonica and M. volcano) published so far. Mitochondrial protein phylogenies reconstructed by the BI and ML algorithms show that the thoracican Cirripedia is monophyletic (BPP 100/BP 100) and associated with Remipedia (BPP 98/BP 35). In addition, Oligostraca, including Ostracoda, Branchiura, and Pentastomida, is a monophyletic group (BPP 99/BP 68), and is basal to all the other examined arthropods. Remipedia + Cirripedia appears as an independent lineage within Arthropoda, apart from Thoracopoda (Malacostraca, Branchiopda, and Cephalocarida). The Thoracopoda is paraphyletic to Hexapoda. The present result suggests that the monophylies of Crustacea and Maxillopoda should be reconsidered.
Mitochondria are cellular organelles that perform various functions within cells. They are responsible for ATP production, cell-signal regulation, autophagy, and cell apoptosis. Because the mitochondrial proteins that perform these functions need Ca2+ ions for their activity, mitochondria have ion channels to selectively uptake Ca2+ ions from the cytoplasm. The ion channel known to play the most important role in the Ca2+ uptake in mitochondria is the mitochondrial calcium uniporter (MCU) holo-complex located in the inner mitochondrial membrane (IMM). This ion channel complex exists in the form of a complex consisting of the pore-forming protein through which the Ca2+ ions are transported into the mitochondrial matrix, and the auxiliary protein involved in regulating the activity of the Ca2+ uptake by the MCU holo-complex. Studies of this MCU holo-complex have long been conducted, but we didn't know in detail how mitochondria uptake Ca2+ ions through this ion channel complex or how the activity of this ion channel complex is regulated. Recently, the protein structure of the MCU holo-complex was identified, enabling the mechanism of Ca2+ uptake and its regulation by the MCU holo-complex to be confirmed. In this review, I will introduce the mechanism of action of the MCU holo-complex at the molecular level based on the Cryo-EM structure of the MCU holo-complex to help understand how mitochondria uptake the necessary Ca2+ ions through the MCU holo-complex and how these Ca2+ uptake mechanisms are regulated.
Cardiomyopathy is an inherited or acquired disease of the myocardium, which can result in severe ventricular dysfunction. Mitochondrial dysfunction is involved in the pathological process of cardiomyopathy. Many dysfunctions in cardiac mitochondria are consequences of mutations in nuclear or mitochondrial DNA followed by alterations in transcriptional regulation, mitochondrial protein function, and mitochondrial dynamics and energetics, presenting with associated multisystem mitochondrial disorders. To ensure correct diagnosis and optimal management of mitochondrial dysfunction in cardiomyopathy caused by multiple pathogenesis, multidisciplinary approaches are required, and to integrate between clinical and basic sciences, ideal translational models are needed. In this review, we will focus on experimental models to provide insights into basic mitochondrial physiology and detailed underlying mechanisms of cardiomyopathy and current mitochondria-targeted therapies for cardiomyopathy.
Park, Kyu-Sang;Wiederkehr, Andreas;Wollheim, Claes B.
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제16권1호
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pp.71-77
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2012
Mitochondrial dynamics and distribution is critical for their role in bioenergetics and cell survival. We investigated the consequence of altered fission/fusion on mitochondrial function and motility in INS-1E rat clonal ${\beta}$-cells. Adenoviruses were used to induce doxycycline-dependent expression of wild type (WT-Mfn1) or a dominant negative mitofusin 1 mutant (DN-Mfn1). Mitochondrial morphology and motility were analyzed by monitoring mitochondrially-targeted red fluorescent protein. Adenovirus-driven overexpression of WT-Mfn1 elicited severe aggregation of mitochondria, preventing them from reaching peripheral near plasma membrane areas of the cell. Overexpression of DN-Mfn1 resulted in fragmented mitochondria with widespread cytosolic distribution. WT-Mfn1 overexpression impaired mitochondrial function as glucose- and oligomycin-induced mitochondrial hyperpolarization were markedly reduced. Viability of the INS-1E cells, however, was not affected. Mitochondrial motility was significantly reduced in WT-Mfn1 overexpressing cells. Conversely, fragmented mitochondria in DN-Mfn1 overexpressing cells showed more vigorous movement than mitochondria in control cells. Movement of these mitochondria was also less microtubule-dependent. These results suggest that Mfn1-induced hyperfusion leads to mitochondrial dysfunction and hypomotility, which may explain impaired metabolism-secretion coupling in insulin-releasing cells overexpressing Mfn1.
Mitochondria are responsible for supplying of most of the cell's energy via oxidative phosphorylation. However, mitochondria also can be deleterious for a cell because they are the primary source of reactive oxygen species, which are generated as a byproduct of respiration. Accumulation of mitochondrial and cellular oxidative damage leads to diverse pathologies. Thus, it is important to maintain a population of healthy and functional mitochondria for normal cellular metabolism. Eukaryotes have developed defense mechanisms to cope with aberrant mitochondria. Mitochondria autophagy (known as mitophagy) is thought to be one such process that selectively sequesters dysfunctional or excess mitochondria within double-membrane autophagosomes and carries them into lysosomes/vacuoles for degradation. The power of genetics and conservation of fundamental cellular processes among eukaryotes make yeast an excellent model for understanding the general mechanisms, regulation, and function of mitophagy. In budding yeast, a mitochondrial surface protein, Atg32, serves as a mitochondrial receptor for selective autophagy that interacts with Atg11, an adaptor protein for selective types of autophagy, and Atg8, a ubiquitin-like protein localized to the isolation membrane. Atg32 is regulated transcriptionally and post-translationally to control mitophagy. Moreover, because Atg32 is a mitophagy-specific protein, analysis of its deficient mutant enables investigation of the physiological roles of mitophagy. Here, we review recent progress in the understanding of the molecular mechanisms and functional importance of mitophagy in yeast at multiple levels.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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