Bahk, Young Yil;Ahn, Seong Kyu;Jeon, Heung Jin;Na, Byoung-Kuk;Lee, Sung-Keun;Shin, Ho-Joon
Parasites, Hosts and Diseases
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v.60
no.4
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pp.281-288
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2022
Malaria continues to be one of the most crucial infectious burdens in endemic areas worldwide, as well as for travelers visiting malaria transmission regions. It has been reported that 8-aminoquinolines are effective against the Plasmodium species, particularly primaquine, for anti-hypnozoite therapy in P. vivax malaria. However, primaquine causes acute hemolytic anemia in individuals with glucose-6-phosphate dehydrogenase (G6PD) deficiency. Therefore, G6PD deficiency testing should precede hypnozoite elimination with 8-aminoquinoline. Several point-of-care devices have been developed to detect G6PD deficiency. The aim of the present study was to evaluate the performance of a novel, quantitative G6PD diagnostics based on a metagenomic blue fluorescent protein (mBFP). We comparatively evaluated the sensitivity and specificity of the G6PD diagnostic modality with standard methods using 120 human whole blood samples. The G6PD deficiency was spectrophotometrically confirmed. The performance of the G6PD quantitative test kit was compared with that of a licensed control medical device, the G6PD strip. The G6PD quantitative test kit had a sensitivity of 95% (95% confidence interval (CI): 89.3-100%) and a specificity of 100% (95% CI: 94.3-100%). This study shows that the novel diagnostic G6PD quantitative test kit could be a cost-effective and time-efficient, and universally mandated screening tool for G6PD deficiency.
Salmonella enterica serovar Typhimurium isolate HJL777 is a virulent bacterial strain in pigs. The high rate of salmonella infection are at high risk of non-typhoidal salmonella gastroenteritis development. Salmonellosis is most common in young pigs. We investigated changes in gut microbiota and biological function in piglets infected with salmonella via analysis of rectal fecal metagenome and intestinal transcriptome using 16S rRNA and RNA sequencing. We identified a decrease in Bacteroides and increase in harmful bacteria such as Spirochaetes and Proteobacteria by microbial community analysis. We predicted that reduction of Bacteroides by salmonella infection causes proliferation of salmonella and harmful bacteria that can cause an intestinal inflammatory response. Functional profiling of microbial communities in piglets with salmonella infection showed increasing lipid metabolism associated with proliferation of harmful bacteria and inflammatory responses. Transcriptome analysis identified 31 differentially expressed genes. Using gene ontology and Innate Immune Database analysis, we identified that BGN, DCN, ZFPM2 and BPI genes were involved in extracellular and immune mechanisms, specifically salmonella adhesion to host cells and inflammatory responses during infection. We confirmed alterations in gut microbiota and biological function during salmonella infection in piglets. Our findings will help prevent disease and improve productivity in the swine industry.
To elucidate the role and mechanism of microbes, we combined culture-dependent and culture-independent approaches to investigate differences in gut bacterial composition between sows and weaned pigs. Under anaerobic conditions, several nonselective and selective media were used for isolation from fecal samples. All isolated bacteria were identified and classified through 16S rRNA sequencing, and the microbiota composition of the fecal samples was analyzed by metagenomics using next generation sequencing (NGS) technology. A total of 278 and 149 colonies were acquired from the sow and weaned pig fecal samples, respectively. Culturomics analysis revealed that diverse bacterial genus and species belonged to Firmicutes, Actinobacteria, Proteobacteria, and Bacteroidetes were isolated from sow and weaned pigs. When comparing culture-dependent and culture-independent analyses, 191 bacterial species and 2 archaeal bacterial species were detected through culture-independent analysis, and a total of 23 bacteria were isolated through a culture-dependent approach, of which 65% were not detected by metagenomics. In conclusion, culturomics and metagenomics should be properly combined to fully understand the intestinal microbiota, and livestock-derived microbial resources should be informed by culturomic approaches to understand and utilize the mechanism of host-microbe interactions.
Moses Lee;Sang Mee Hwang;Jong Sun Park;Jae Hyeon Park;Jeong Su Park
Parasites, Hosts and Diseases
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v.61
no.2
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pp.202-209
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2023
Lophomonas blattarum is an anaerobic protozoan living in the intestine of cockroaches and house dust mites, with ultramicroscopic characteristics such as the presence of a parabasal body, axial filament, and absence of mitochondria. More than 200 cases of Lophomonas infection of the respiratory tract have been reported worldwide. However, the current diagnosis of such infection depends only on light microscopic morphological findings from respiratory secretions. In this study, we attempted to provide more robust evidence of protozoal infection in an immunocompromised patient with atypical pneumonia, positive for Lophomonas-like protozoal cell forms. A direct search of bronchoalveolar lavage fluid via polymerase chain reaction (PCR), transmission electron microscopy (TEM), and metagenomic next-generation sequencing did not prove the presence of protozoal infection. PCR results were not validated with sufficient rigor, while de novo assembly and taxonomic classification results did not confirm the presence of an unidentified pathogen. The TEM results implied that such protozoal forms in light microscopy are actually non-detached ciliated epithelial cells. After ruling out infectious causes, the patient's final diagnosis was drug-induced pneumonitis. These findings underscore the lack of validation in the previously utilized diagnostic methods, and more evidence in the presence of L. blattarum is required to further prove its pathogenicity.
Michelle Miguel;Seon-Ho Kim;Sang-Suk Lee;Yong-Il Cho
Animal Bioscience
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v.36
no.9
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pp.1453-1464
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2023
Objective: This study investigated the changes in bacterial communities within decomposing swine microcosms, comparing soil with or without intact microbial communities, and under aerobic and anaerobic conditions. Methods: The experimental microcosms consisted of four conditions: UA, unsterilized soil-aerobic condition; SA, sterilized soil-aerobic condition; UAn, unsterilized soil-anaerobic condition; and San, sterilized soil-anaerobic condition. The microcosms were prepared by mixing 112.5 g of soil and 37.5 g of ground carcass, which were then placed in sterile containers. The carcass-soil mixture was sampled at day 0, 5, 10, 30, and 60 of decomposition, and the bacterial communities that formed during carcass decomposition were assessed using Illumina MiSeq sequencing of the 16S rRNA gene. Results: A total of 1,687 amplicon sequence variants representing 22 phyla and 805 genera were identified in the microcosms. The Chao1 and Shannon diversity indices varied in between microcosms at each period (p<0.05). Metagenomic analysis showed variation in the taxa composition across the burial microcosms during decomposition, with Firmicutes being the dominant phylum, followed by Proteobacteria. At the genus level, Bacillus and Clostridium were the main genera within Firmicutes. Functional prediction revealed that the most abundant Kyoto encyclopedia of genes and genomes metabolic functions were carbohydrate and amino acid metabolisms. Conclusion: This study demonstrated a higher bacteria diversity in UA and UAn microcosms than in SA and SAn microcosms. In addition, the taxonomic composition of the microbial community also exhibited changes, highlighting the impact of soil sterilization and oxygen on carcass decomposition. Furthermore, this study provided insights into the microbial communities associated with decomposing swine carcasses in microcosm.
Jun Hyung Lee;San Kim;Eun Sol Kim;Gi Beom Keum;Hyunok Doo;Jinok Kwak;Sriniwas Pandey;Jae Hyoung Cho;Sumin Ryu;Minho Song;Jin Ho Cho;Sheena Kim;Hyeun Bum Kim
Journal of Animal Science and Technology
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v.65
no.4
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pp.856-864
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2023
There are a variety of microorganisms in the animal intestine, and it has been known that they play important roles in the host such as suppression of potentially pathogenic microorganisms, modulation of the gut immunity. In addition, the gut microbiota and the livestock growth performance have long been known to be related. Therefore, we evaluated the interrelation between the growth performance and the gut microbiome of the pigs from 3 different farms, with pigs of varied ages ready to be supplied to the market. When pigs reached average market weight of 118 kg, the average age of pigs in three different farms were < 180 days, about 190 days, and > 200 days, respectively. Fecal samples were collected from pigs of age of 70 days, 100 days, 130 days, and 160 days. The output data of the 16S rRNA gene sequencing by the Illumina Miseq platform was filtered and analyzed using Quantitative Insights into Microbial Ecology (QIIME)2, and the statistical analysis was performed using Statistical Analysis of Metagenomic Profiles (STAMP). The results of this study showed that the gut microbial communities shifted as pigs aged along with significant difference in the relative abundance of different phyla and genera in different age groups of pigs from each farm. Even though, there was no statistical differences among groups in terms of Chao1, the number of observed operational taxonomic units (OTUs), and the Shannon index, our results showed higher abundances of Bifidobacterium, Clostridium and Lactobacillus in the feces of pigs with rapid growth rate. These results will help us to elucidate important gut microbiota that can affect the growth performance of pigs.
Min-Gul Kim;Suin Kim;Ji-Young Jeon;Seol Ju Moon;Yong-Geun Kwak;Joo Young Na;SeungHwan Lee;Kyung-Mi Park;Hyo-Jin Kim;Sang-Min Lee;Seo-Yeon Choi;Kwang-Hee Shin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.28
no.2
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pp.153-164
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2024
This study aimed to identify metabolic biomarkers and investigate changes in intestinal microbiota in the feces of healthy participants following administration of Lactococcus lactis GEN-001. GEN-001 is a single-strain L. lactis strain isolated from the gut of a healthy human volunteer. The study was conducted as a parallel, randomized, phase 1, open design trial. Twenty healthy Korean males were divided into five groups according to the GEN-001 dosage and dietary control. Groups A, B, C, and D1 received 1, 3, 6, and 9 GEN-001 capsules (1 × 1011 colony forming units), respectively, without dietary adjustment, whereas group D2 received 9 GEN-001 capsules with dietary adjustment. All groups received a single dose. Fecal samples were collected 2 days before GEN-001 administration to 7 days after for untargeted metabolomics and gut microbial metagenomic analyses; blood samples were collected simultaneously for immunogenicity analysis. Levels of phenylalanine, tyrosine, cholic acid, deoxycholic acid, and tryptophan were significantly increased at 5-6 days after GEN-001 administration when compared with predose levels. Compared with predose, the relative abundance (%) of Parabacteroides and Alistipes significantly decreased, whereas that of Lactobacillus and Lactococcus increased; Lactobacillus and tryptophan levels were negatively correlated. A single administration of GEN-001 shifted the gut microbiota in healthy volunteers to a more balanced state as evidenced by an increased abundance of beneficial bacteria, including Lactobacillus, and higher levels of the metabolites that have immunogenic properties.
Seul Ki Park;Chan Young Jeong;Hyeok Gyu Kwon;Ji Hae Lee;Sang Kuk Kang;Seong-Wan Kim;Seong-Ryul Kim;Jong Woo Park
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.48
no.1
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pp.42-47
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2024
The value of silkworms as functional health food materials has increased, as has the interest in its disease control for stable production, and in the economic value of entomopathogenic microorganisms. In this study, we isolated and identified disease-causing fungi from white muscardine silkworms, and confirmed whether this strain could produce white muscardine silkworms. For the analysis of the cause of white muscardine disease in the infected silkworms, the fungi and prokaryotes causing the disease were identified, isolated, and identified using metagenome analysis. Metagenomic analysis detected a large amount of the fungus Metarhizium rileyi in silkworms, and a large amount of the bacterium Enterococcus mundtii, which was presumed to be the causative agent of the disease. For accurate identification of the fungi, these were purified by culture medium, and sequencing and phylogenetic tree analyses were performed using an internal transcribed spacer. As a result, M. rileyi, Cladosporium cladosporioides, and C. tenuissimum were identified. In general, M. rileyi is known to form green conidia, but in this study, white-yellow conidia were formed, indicating that the exact causative agent of the fungal disease cannot be estimated by diagnosing the symptoms. Thus, a diagnostic method is necessary for the continuously collection of required pathogens, and identifying their morphological and genetic characteristics.
The accumulating evidence substantiates the indispensable role of gut microbiota in modulating the pathogenesis of type 2 diabetes. Uncovering the intricacies of the mechanism is imperative in aiding disease control efforts. Revealing key bacterial species, their metabolites and/or metabolic pathways from the vast array of gut microorganisms can significantly contribute to precise treatment of the disease. With a high prevalence of type 2 diabetes in Inner Mongolia, China, we recruited volunteers from among the Mongolian population to investigate the relationship between gut microbiota and the disease. Fecal samples were collected from the Volunteers of Mongolia with Type 2 Diabetes group and a Control group, and detected by metagenomic analysis and untargeted metabolomics analysis. The findings suggest that Firmicutes and Bacteroidetes phyla are the predominant gut microorganisms that exert significant influence on the pathogenesis of type 2 diabetes in the Mongolian population. In the disease group, despite an increase in the quantity of most gut microbial metabolic enzymes, there was a concomitant weakening of gut metabolic function, suggesting that the gut microbiota may be in a compensatory state during the disease stage. β-Tocotrienol may serve as a pivotal gut metabolite produced by gut microorganisms and a potential biomarker for type 2 diabetes. The metabolic biosynthesis pathways of ubiquinone and other terpenoid quinones could be the crucial mechanism through which the gut microbiota regulates type 2 diabetes. Additionally, certain Clostridium gut species may play a pivotal role in the progression of the disease.
Meju, a fermented soybean brick, is a key component in soybean foods like doenjang and ganjang, harboring a variety of microorganisms, including bacteria and fungi. These microorganisms significantly contribute to the nutritional and sensory characteristics of doenjang and ganjang. Amplicon-based next-generation sequencing was applied to investigate how the microbial communities of meju fermented at low and high temperatures differ and how this variation affects the microbial communities of doenjang, a subsequently fermented soybean food. Our metagenomic data showed distinct patterns depending on the fermentation temperature. The microbial abundance in the bacterial community was increased under both temperatures during the fermentation of meju and doenjang. Weissella was the most abundant genus before the fermentation of meju, however, it was replaced by Bacillus at high temperature-fermented meju and lactic acid bacteria such as Weissella and Latilactobacillus at low temperature-fermented meju. Leuconostoc, Logiolactobacillus, and Tetragenococcus gradually took over the dominant role during the fermentation process of doenjang, replacing the previous dominant microorganisms. Mucor was dominant in the fungal community before and after meju fermentation, whereas Debaryomyces was dominant under both temperatures during doenjang fermentation. The dominant fungal genus of doenjang was not affected regardless of the fermentation temperature of meju. Strong correlations were shown for specific bacteria and fungi linked to specific fermentation temperatures. This study helps our understanding of meju fermentation process at different fermentation temperatures and highlights different bacteria and fungi associated with specific fermentation periods which may influence the nutritional and organoleptic properties of the final fermented soybean foods doenjang.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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