식품공업 분야에서 특정 성분의 분리, 정제, 농축은 매우 중요한 단위공정으로써 추출(Extraction), 여과(Filtration), 증류(Distillation), 증발(Evaporation)등의 조작을 통하여 실시되고 있다. 최근 들어 화학공업, 기계공업, 식품공업의 지속적인 발전에 힘입어 단위조작을 효율적으로 실시할 수 있는 기술로써 국내의 산업화되고 있는 것이 분리막 기술이다. 현재 식품공업 분야에서 활용되고 있는 분리막공정의 종류는 정밀여과(Microfiltration), 한외여과(Ultrafiltration), 초정밀여과(Nanofiltration), 역삼투(Reverse Osmosis) 시스템으로 유제품, 조미료, 음료공업, 장유산업, 기능성 인자의 분리 등에 공업적으로 점차 그 도입 가능성이 증가하고 있다.
Molecular association of glucose transporters with the other proteins in the plasma membrane was assessed by gel electrophoresis and immunoblot techniques. Approximately $31.5{\pm}5.1%$ of GLUT-4, $64.8{\pm}2.7%$ of clathrin, 48.7% of total protein in the plasma membrane (PM) were found insoluble upon extraction with 1% Tx-100. Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis revealed that the Tx-100 insoluble PM fraction contained about 4 major polypeptides with apparent molecular weight of above 200, 100-120, 80 and 30-35 KDa that were readily removed upon wash with a high pH buffer which is known to remove clathrin and 0.5 M Tris-buffer which is known to remove assembly proteins (AP). Immunoblotting of GLUT4 and clathrin against specific antibodies showed that GLUT-4 and clathrin were co-solubilized up to 84.6% and 82.7% respectively by wash with a high pH buffer and 1% Tx-100. When the membrane was pre-washed with a high pH buffer and 0.5 M Tris solution, GLUT4 and clathrin were not solubilized further suggesting that GLUT4 molecules are in molecular association with clathrin, AP and/or other extrinsic membrane proteins in plasma membrane and the formation of clathrin-coated structures might be involved in insulin stimulated glucose transporter translocation mechanism.
The dried sea tangle added for soup prepatation to improved the taste in Korean and Japaness for long time. Attempts were made to develop the best procedures for extraction and removal of alginate by ultrafiltration and diafiltration. The summerized results of this study are as follows: 1) For hot water extraction in temperature range of 60~100$^{\circ}C$ for 4 hours, the higher temperature resulted higher yields in solids and protein. 2) Optimum sea tangle hot water extraction condition were 60~65$^{\circ}C$ for 1 hour which was cheap operating cost and high yield of good taste components. 3) The membrane flux was more higher GR 51 PP. and increase of flow rate permeate flow rate was accordingly increased. but limiting flow volume was 3.7 l/min. 4) It was found that ultration was relatively of higher recovery rate, solid and taste components, and low rejection coefficient rate than diafiltration.
The secretion of the alkaliphilic Bacillus sp. S-1 extracellular pullulanase involves translocation across the cytoplasmic membrane of the Gram-positive bacterial cell envelope. Translocation of the intracellular pullulanase PUL-I, was traced to elucidate the mechanism and pathway of protein secretion from an alkaliphilic Bacillus sp. S-1. Pullulanase could be slowly bue quantitatively released into the medium during growth of the cells in medium contianing proteinase K. The released pullulanase lacked the N-terminal domain. The N-terminus is the sole membrane anchor in the pullulanase protein and was not affected by proteases, confirming that it is not exposed on the cell surface. Processing of a 180,000M$\_$r/ pullulanase to a 140,000M$\_$r/ polypeptide has been demonstrated in cell extracts using antibodies raised against 140,000M$\_$r/ extracellular form. Processing of the 180,000 M$\_$r/ protein occured during the preparation of extracts in an alkaline pH condition. A modified rapid extraction procedure suggested that the processing event also occured in vivo. Processing apparently increased the activity of pullulanase. The western blotting analysis with mouse anti-serum against 140-kDa extracellular pullulanase PUL-E showed that PUL-I is processed into PUL-X via intermediate form of PUL-E. Possible explanationa for the translocation are discussed.
The rat is an accepted model for studying human psychiatric/neurological disorders. We provide a protocol for total soluble protein extraction using trichloroacetic acid/acetone (TCA/A) from rat (female) whole brain, 10 brain regions and the pituitary gland, and show that two-dimensional gel electrophoresis (2-DGE) using precast immobilized pH (4-7) gradient (IPG) strip gels (13 cm) in the first dimension yields clean silver nitrate stained protein profiles. Though TCA/A precipitation may not be "ideal", the important choice here is the selection of an appropriate lysis buffer (LB) for solubilizing precipitated proteins. Our results reveal enrichment of protein spots by use of individual brain regions rather than whole brain, as well as the presence of differentially expressed spots in their proteomes. Thus individual brain regions provide improved protein coverage and are better suited for differential protein detection. Moreover, using a phosphoprotein-specific dye, ingel detection of phosphoproteins was demonstrated. Representative high-resolution silver nitrate stained proteome profiles of rat whole brain total soluble protein are presented. Shortcomings apart (failure to separate membrane proteins), gel-based proteomics remains a viable option, and 2-DGE is the method of choice for generating high-resolution proteome maps of rat brain and brain regions.
락토페린 결합단백질(Lactoferrin-binding proteins, LBP)은 젖소유방염 원인균인 Streptococcus uberis의 막단백질로서 그 특성에 관해서는 잘 규명되어 있지 않지만, 특히 최근에는 스트렙토코커스성 유방염의 독성인자로서 중요시되고 있다. 본 연구에서는 S. uberis 네 가지 균주를 대상으로 LBP를 보다 효율적으로 추출하기 위하여 mutanolysin 및 sodium dodecyl sulfate(SDS)를 이용한 두 가지 다른 추출 방법을 사용하였다. 추출된 세균단백질을 SDS-polyacrylamide gel electrophoreis(SDS-PAGE)로 전기영동을 하였고, 겔을 니트로셀룰로스 막으로 이동시켰다. Rabbit anti-bovine lactoferrin 항체와 HRP-conjugated donkey anti-rabbit IgG 항체를 사용하여 LBP를 검출하였다. 이러한 웨스턴 블롯팅 분석을 통해 SDS 추출법이 mutanolysin 추출법에 비해 보다 효율적으로 110 kDa 및 112 kDa의 LBP를 추출할 수 있음을 증명하였다.
Park, Wan-Je;Cho, Yang-Je;Ahn, Dong-Ho;Jung, Sang-Bo;Lee, Na-Gyong;Kim, Hyun-Su;Hahm, Kyung-Soo;Kim, Yu-Sam
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제7권2호
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pp.144-150
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1997
We developed a simple and efficient method to prepare a Pseudomonas vaccine of outer membrane (OM) proteins free from lipopolysaccharide (LPS). A three step purification process including extraction, ultrafiltration and ultracentrifugation effectively removed LPS from the OM protein fraction. Approximately 2 mg of the OM proteins was obtained from 1 g of wet cell. LPS contaminant in the vaccine preparation was less than 0.003% (w/w) of protein and protease activity was not detectable. To achieve a wide range of protection, OM proteins prepared from four attenuated P. aeruginosa strains were mixed in equal amounts and used as a vaccine, which elicited in rabbits a high titer of antibody reactive to all of the seven Fisher types. The antisera from the immunized rabbit had a strong reactivity to vaccine proteins larger than 25 kDa. In a burned mouse infection model, immunization with the vaccine significantly enhanced bacterial clearance in the Pseudomonas infected skin. The vaccination also provided mice an excellent protection against Pseudomonas infection (11, 16). Data on antigenicity, mutagenicity, acute, subacute toxicity and pharmacological tests confirmed the safety of the vaccine (1, 3, 10, 12, 17). These data demonstrate that this method can be applied to manufacture a bacterial vaccine of OM proteins with safety and prophylactic efficacy at a practical low cost.
Digoxigenin (DIG) was used to prepare nucleic acid probe for the detection of RNA of potato leafroll virus (PLRV) in the potato leaf extracts. The 0.6 kb coat protein (CP) gene cDNA of PLRV in plasmid pSPT 18 vector was labeled with digoxigenin by in vitro run-off transcription and then used for cRNA probe. In the several buffers tested for increase the total RNA extraction efficiency AMES buffer was the most suitable for this detection method. The RNA extracts from potato leaves shown symptoms of PLRV were dot blotted onto nylon membrane and hybridized with labeled RNA probes. After hybridization, labeled RNA bound to PLRV RNA on membrane was detected with anti-digoxigenin alkaline phosphatase. 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-phosphate/nitroblue tetrazolium (NBT) salt and CSPD were used as substrate for colorimetric and film exposure detection, respectively. These detection methods were very sensitive allowing for detection of 1/32 diluted total RNA extract from 100 mg leaf tissue.
Some properties of $\beta$-1, 3-glucan synthase system in Saccharamyces cerevisiae were investigated. By extraction with detergent and salt, the membrane preparations could be dissociated into two components, one soluble, the other still membrane bound. Both components, in addition to GTP, were necessary for the activity of $\beta$-1, 3-glucan synthase like other fungi. The protective effect of guanosine nucleotides on the soluble factor pointed to the possibility that this fraction contained a GTP-binding protein. Addition of increasing amounts of soluble factor to a constant amount of insoluble catalytic factor, vice versa, gave rise to a saturation curve. These results, including different types of evidence, indicate that the soluble factor and the catalytic factor form a complex.
Klebsiella pneumoniae의 세포외막으로부터 2-furaldehyde를 2-furoic acid로 산화시키는 2-furaldehyde dehydrogenase를 분리하여 그 특성을 조사하였다. 이 효소는 $\beta$-$NAD^{+}$를 특이적으로 요구하였다. 분리과정중의 효소활성도는 2-furaldehyde를 기질로 사용하고 $\beta$-$NAD^{+}$를 조효소로 사용하면서 high performance liquid chromatography에 의해 측정 되었다. 세포외막은 Percoll의 밀도흉배에 의한 초원심분리방법과 $Mg^{2+}$, Triton X-100으로 용해시킨 후, 초원심분리시키는 방법으로 수집되었다. 세포외막단백질은 EDTA와 lysozyme을 처리함으로서 얻어졌고, 효소는 QAE-Sephadex Q-504 S Sephadex G-100-을 사용하면서 column chromatography 방법에 의해 분리되었다. 본 효소는 $85^{\circ}C$, PH9.5, 그리고 1.5% (vol/vol) Triton X-100의 존재하에서 최대활성을 보여주었다. 효소의 분자량은 nondenaturing polyacrylamide gel e electrophoresis의 결과, 88, 000.으로 추정되었고, 2-furaldehyde에 대한 효소의 Km값은 4.72 mM 이였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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