[ $C_8$ ]functionalized magnetic nanoparticles were synthesized by coating magnetic $Fe_3O_4$ nanoparticles with silicaamine groups using 3-aminopropyltriethoxysilane and by subsequently modifying the amine groups with chloro(dimethyl)octylsilane to produce octyl groups on the surface of the MNPs. The $C_8$-functionalized MNPs were used to enrich peptides from tryptic protein digests of myoglobin and ${\alpha}$-casein. The enriched peptides were analyzed by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry (MALDI-TOF-MS). MALDI-MS was also used to investigate desalting of the $C_8$-functionalized MNPs. Sample solutions were prepared in 1.0 M NaCl, and the successful removal of salt was observed. Enrichment with $C_8$-functionalized MNPs was very effective for separating and concentrating tryptic peptides.
Angiotensin I, a model decapeptide, was glycosylated and partially hydrolyzed with HCl (6 N, 80 $^{\circ}C$, 4 h), aminopeptidase, and carboxypeptidase Y. A single peptide mass map obtained from truncated peptides in the partial acid hydrolysate of angiotensin and its glycosylation product mixture by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight (MALDI-TOF) mass spectrometry enabled sequencing of angiotensin by a combinatorial procedure. MALDI-TOF and electrospray ionization (ESI) tandem mass spectrometric results indicate that both the N-terminal amino group of aspartic acid and the guanidinium group of the second residue arginine are glycosylated.
A gas chromatography/mass spectrometric assay method was developed for the determination of persistent organochlorine pollutants (POPs) in hair. For the exact extraction study was used hair of rat exposed with POPs. Sonication of the hair matrix with 3 M HCl solution in methylene chloride of the extraction methods studied was the most efficient and rapid sample preparation method. After sonication of rat hair was achieved clean up with a solid phase extraction procedure using silica gel-florisil. Elution was performed with 8 mL of methylene chloride. The eluate was concentrated to approximately 100 ${\mu}L$ and analyzed by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). Detection limits of POPs were in the concentration range of 0.6-1.2 ng/g in rat hair. Aldrin, dieldrin, p,p-DDT and mirex were dosed rat for 4 weeks at concentration of 0.01 mg/L in drinking water and detected in rat hair at concentration of 2.8, 11.3, 7.9 and 15.6 ng/g, respectively. Aldrin and p,p-DDT were metabolized to dieldrin and p,p-DDE, which were detected in concentration of 9.7 and 2.9 ng/g in rat hair, respectively. The developed method may be valuable to be used to analyze POPs in human hair.
Bang, Young Yoon;Lee, Min Seo;Lim, Chang Ho;Lee, Hye Suk
Mass Spectrometry Letters
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제12권3호
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pp.112-117
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2021
α-Amanitin and β-amanitin are highly toxic bicyclic octapeptides responsible for the poisoning of poisonous mushrooms such as Amanita, Galerina, and Lepiota by inhibiting RNA polymerase II, DNA transcription, and protein synthesis. A sensitive, simple, and selective liquid chromatography-high resolution mass spectrometric method using parallel reaction monitoring mode was developed and validated for the simultaneous determination of α- and β-amanitin in mouse plasma to evaluate the toxicokinetics of α- and β-amanitin in mice. Protein precipitation of 5 μL mouse plasma sample with methanol as sample clean-up procedure and use of negative electrospray ionization resulted in better sensitivity and less matrix effect. The calibration curves for α- and β-amanitin in mouse plasma were linear over the range of 0.5-500 ng/mL. The intra- and inter-day coefficient of variations and accuracies for α- and β-amanitin at four quality control concentrations were 3.1-14.6% and 92.5-115.0%, respectively. The present method was successfully applied to the toxicokinetic study of α- and β-amanitin after an oral administration of α- and β-amanitin at 1.5 mg/kg dose to male ICR mice.
Lee, Min Seo;Lim, Chang Ho;Bang, Young Yoon;Lee, Hye Suk
Mass Spectrometry Letters
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제13권1호
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pp.20-25
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2022
Fargesin, a tetrahydrofurofuranoid lignan isolated from Flos Magnoliae, shows anti-inflammatory, anti-oxidative, anti-allergic, and anti-hypertensive activities. To evaluate the pharmacokinetics of fargesin in mice, a sensitive, simple, and selective liquid chromatography-high resolution mass spectrometric method using electrospray ionization and parallel reaction monitoring mode was developed and validated for the quantification of fargesin in mouse plasma. Protein precipitation of 6 µL mouse plasma with methanol was used as sample clean-up procedure. The standard curve was linear over the range of 0.2-500 ng/mL in mouse plasma with the lower limit of quantification level at 0.2 ng/mL. The intra- and inter-day coefficient variations and accuracies for fargesin at four quality control concentrations including were 3.6-11.3% and 90.0-106.6%, respectively. Intravenously injected fargesin disappeared rapidly from the plasma with high clearance values (53.2-55.5 mL/min/kg) at 1, 2, and 4 mg/kg doses. Absolute bioavailability of fargesin was 4.1-9.6% after oral administration of fargesin at doses of 1, 2, and 4 mg/kg to mice.
Many therapeutic class drugs such as beta-blocker, corticosteroids, NSAIDs, etc are prohibited substances in the horse racing industry. Liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) technology makes it possible to isolate drugs from interference, enables various drug analyses in complex biological samples due to its sensitive sensitivity, and has been successfully applied to doping control. In this paper, we describe a rapid and sensitive method based on solid-phase extraction (SPE) using solid phase cartridge and LC-MS/MS to screen for different class's 35 drug targets in equine plasma. Plasma samples were pretreated by SPE with the NEXUS cartridge consisted non-polar carbon resin and minimum buffer solvent. Chromatographic separation of the analytes was performed on ACQUITY HSS C18 column (2.1 × 150 mm, 1.8 ㎛). The elution gradient was conducted with 5 mM ammonium formate (pH 3.0) in distilled water and 0.1% formic acid in acetonitrile at a flow rate of 0.25 mL/min. The selected reaction monitoring (SRM) mode was used for drug screening with multiple transitions in the positive ionization mode. The specificity, limit of detection, recovery, and stability was evaluated for validation. The method was found to be sensitive and reproducible for drug screening. The method was applied to plasma sample analysis for the proficiency test from the Association of Racing Chemist.
비활성기체는 화학적, 생물학적 반응을 하지 않는 보존적인 특성을 가지고 있어 해양에서 수온과 염분 변화, 기체 주입, 해수의 혼합과 빙하 융해수의 분포와 같은 물리적인 변화의 추적자로 활용되고 있다. Ne, Ar과 Kr을 정밀하게 분석하기 위해 사중극자 질량 분석기, 고진공 전처리 라인, 초저온 냉각 트랩과 동위원소 표준기체로 구성된 분석 시스템을 제작했다. 고진공 라인은 시료의 용존 기체를 추출하여 동위원소 표준기체와 혼합하는 시료추출부, 합금 물질을 이용하여 반응성 기체를 제거하고 초저온 냉각 트랩으로 비활성기체를 기화점에 따라 분별 증류하는 기체 준비부, 비활성기체를 원소별로 측정하는 기체 측정부로 구성하였다. 기체준비부에 결합한 초저온 냉각 트랩은 질량분석기 내 Ar와 CO2의 부분압을 현저히 낮추어 Ne 동위원소 분석의 오차를 감소시켰다. 동위원소 표준기체는 22Ne, 36Ar과 86Kr를 혼합하여 제작하였고, 혼합 표준 기체의 원소별 양은 대기를 반복 측정하여 역동위원소 희석법으로 결정했다. 대기 평형수 반복 분석의 상대 오차는 Ne, Ar과 Kr에 대해 각각 0.7%, 0.7%, 0.4%이었다. 반복 측정한 대기 평형수의 농도와 포화 농도의 차이로 확인한 분석시스템의 정확도는 Ne, Ar, Kr에 대해 각각 0.5%, 1.0%, 1.7%이었다.
The following study describes the gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) based screening and confirmation analysis of urinary androgenic steroids. Four commercially available solid-phase extraction (SPE) cartridges, Serdolit PAD-1, Sep-pak $C_{18}$, amino-propyl, and Oasis HLB, and three different extractive organic solvents, diethyl ether, methyl tert-butyl ether (MTBE), and n-pentane, were tested for sample preparation. Overall, Oasis HLB combined with MTBE extraction provided the highest recoveries in 39 of 46 total androgenic steroids examined and it showed a good extraction yield (>82.1%) for polar steroids, such as metabolites of fluoxymesterone, oxandrolone, and stanozolol, which gave a poor recovery in both n-pentane (9.2-64.3%) and diethyl ether (22.2-73.6%) extractions. All SPE sorbents tested showed potential, because they were efficient in extraction for most or selective steroids. When applied to positive urine samples based on the results obtained, the present method allowed selective and sensitive analysis for detection of urinary androgenic steroids. The experiments showed that the high-resolution MS method is clearly more efficient than the low-resolution MS technique for the detection of many urinary steroids. However, comprehensive sample clean-up procedures also might be needed especially in confirmation analysis to increase detectability.
Sex hormones are important metabolites in vertebrates' development and reproduction. For rapid screening sex hormones, matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI) mass spectrometry (MS) is one of the promising analytical platforms, but MALDI MS faces many challenges in detecting steroids such as low ionization efficiency and matrix background interference. One potential strategy to overcome matrix interference in the low m/z region is using a cyclodextrin (CD)-supported matrix for steroid analysis since CD-supported matrixes are known to effectively suppress matrix-related ion signals. In this study, we aimed to find the optimal CD-supported matrix for the analysis of the nonderivatized sex steroids. Our results showed that the ${\alpha}CD$-supported 2,5-dihydroxybenzoic acid (DHB) matrix efficiently ionized all three major classes of sex hormones, estrogens, androgens, and progestagens, with low or no matrix background and also with high sensitivity. In addition, the ${\alpha}CD$-supported DHB matrix mainly generated molecular ions or protonated ions of sex hormones, and this enabled us to obtain information-rich tandem mass spectra which potentially lead to unambiguous identification of steroid species from complex metabolite mixtures.
A gas chromatography/mass spectrometric method was developed for the determination of formaldehyde in hair. 0.3mg of hair was placed in 10ml headspace vial. 1.5mM pentafluorophenylhydrazine solution (pH 2) in 0.03 M phosphoric acid and $20\;{\mu}l$ of 500 mg/l $acetone-d_6$ as internal standard were added in vial and sealed tightly with cap. The solution was heated for 30 min at $90^{\circ}C$ in heating block. The extraction, the derivatization and the evaporation were performed simultaneously. After heating of the solution, 0.5 ml of headspace was taken up and analyzed by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). Low limit of detection (LaD) and Low limit of quantitation (LOQ) of formaldehyde were 0.5 and 1.5 ng/g, respectively. The method was used to analyze formaldehyde in rat hair after oral exposure. The developed method may be valuable to be used to analyze formaldehyde in human hair.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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