Endonuclease G (EndoG) is a mitochondrial non-specific nuclease that is highly conserved among the eukaryotes. Although the precise role of EndoG in mitochondria is not yet known, the enzyme is released from the mitochondria and digests nuclear DNA during apoptosis in mammalian cells. Schizosaccharomyces pombe has an EndoG homolog Pnu1p (previously named SpNuc1) that is produced as a precursor protein with a mitochondrial targeting sequence. During the sorting into mitochondria the signal sequence is cleaved to yield the functionally active endonuclease. From the analogy to EndoG, active extramitochondrial Pnu1p may trigger cell killing by degrading nuclear DNA. Here, we tested this possibility by expressing a truncated Pnu1p lacking the signal sequence in the extramitochondrial region of pnu1-deleted cells. The truncated Pnu1p was localized in the cytosol and nuclei of yeast cells. And ectopic expression of active Pnu1p led to cell death with fragmentation of nuclear DNA. This suggests that the Pnu1p is possibly involved in a certain type of yeast cell death via DNA fragmentation. Although expression of human Bak in S. pombe was lethal, Pnu1p nuclease is not necessary for hBak-induced cell death.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2008.04a
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pp.55-74
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2008
Previously, we have shown that hypoxia, through HIF-1, induces ligand-independent $ER{\alpha}$ activation and the physical interaction of HIF-1 and $ER{\alpha}$. However, the effect of hypoxia on the transactivation of $ER{\beta}$ is not yet known. In the present study, we found that hypoxia activated the $ER{\beta}$-mediated transcriptional response in the HEK 293 cell line, as determined by the transient expression of$ER{\beta}$ and ER-responsive reporter plasmids. The hypoxia-induced estrogen response element-mediated transcriptional response was dependent on $ER{\beta}$ expression and was inhibited by the ER antagonist ICI 182,780. Transactivation of $ER{\beta}$ was induced by the expression of HIF-$1{\alpha}$ under normoxic conditions, as determined by the expression of oxygen-independent stable GFP-HIF-$1{\alpha}$. HIF-$1{\alpha}$-induced $ER{\beta}$ transactivation was abolished by the inhibition of HIF-$1{\alpha}$ activation. This was determined by using chemical inhibitors for the MAPK pathway. In addition, HIF-$1{\alpha}$ interacted with $ER{\beta}$ in a mammalian-two hybrid assay. We conclude that hypoxia activates $ER{\beta}$ in a ligand-independent manner, possibly through the interaction of HIF-$1{\alpha}$ and $ER{\beta}$.
To identify genes implicated in the control of pluripotency as well as characteristics of stem cells, we analyzed expression profiles of genes derived from mouse morulas, blastocysts, embryonic stem cells, mesenchymal stem cells, and uterus tissue using cDNA microarray. Comparative analyses of their expression profiles identified putative clones that expressed specifically in specific samples or not in a specific sample. The expression pattern of these candidate clones was analyzed using RT-PCR and non-radioactive in situ hybridization. Functional annotation of these clones on pluripotency and stem cell plasticity is in ongoing. These studies may further our understanding on the nature of the stem cells and molecular mechanisms underlying many facets of mammalian development and differentiation.
The light sensing system in the eye directly affects the circadian oscillator in the mammalian suprachiasmatic nucleus (SCN). To investigate this relationship in the rat, we examined the circadian expression of clock genes in the SCN and eye tissue during a 24 h day/night cycle. In the SCN, rPer1 and rPer2 mRNAs were expressed in a clear circadian rhythm like rCry1 and rCry2 mRNAs, whereas the level of BMAL1 and CLOCK mRNAs decreased during the day and increased during the night with a relatively low amplitude. It seems that the clock genes of the SCN may function in response to a master clock oscillation in the rat. In the eye, the rCry1 and rCry2 were expressed in a circadian rhythm with an increase during subjective day and a decrease during subjective night. However, the expression of Opn4 mRNA did not exhibit a clear circadian pattern, although its expression was higher in daytime than at night. This suggests that cryptochromes located in the eye, rather than melanopsin, are the major photoreceptive system for synchronizing the circadian rhythm of the SCN in the rat.
Lee, Seung Eun;Kim, Eun Young;Choi, Hyun Yong;Moon, Jeremiah Jiman;Park, Min Jee;Lee, Jun Beom;Jeong, Chang Jin;Park, Se Pill
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.27
no.5
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pp.635-647
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2014
Unfertilized oocytes age inevitably after ovulation, which limits their fertilizable life span and embryonic development. Rapamycin affects mammalian target of rapamycin (mTOR) expression and cytoskeleton reorganization during oocyte meiotic maturation. The goal of this study was to examine the effects of rapamycin treatment on aged porcine oocytes and their in vitro development. Rapamycin treatment of aged oocytes for 24 h (68 h in vitro maturation [IVM]; $44h+10{\mu}M$ rapamycin/24 h, $47.52{\pm}5.68$) or control oocytes (44 h IVM; $42.14{\pm}4.40$) significantly increased the development rate and total cell number compared with untreated aged oocytes (68 h IVM, $22.04{\pm}5.68$) (p<0.05). Rapamycin treatment of aged IVM oocytes for 24 h also rescued aberrant spindle organization and chromosomal misalignment, blocked the decrease in the level of phosphorylated-p44/42 mitogen-activated protein kinase (MAPK), and increased the mRNA expression of cytoplasmic maturation factor genes (MOS, BMP15, GDF9, and CCNB1) compared with untreated, 24 h-aged IVM oocytes (p<0.05). Furthermore, rapamycin treatment of aged oocytes decreased reactive oxygen species (ROS) activity and DNA fragmentation (p<0.05), and downregulated the mRNA expression of mTOR compared with control or untreated aged oocytes. By contrast, rapamycin treatment of aged oocytes increased mitochondrial localization (p<0.05) and upregulated the mRNA expression of autophagy (BECN1, ATG7, MAP1LC3B, ATG12, GABARAP, and GABARAPL1), anti-apoptosis (BCL2L1 and BIRC5; p<0.05), and development (NANOG and SOX2; p<0.05) genes, but it did not affect the mRNA expression of pro-apoptosis genes (FAS and CASP3) compared with the control. This study demonstrates that rapamycin treatment can rescue the poor developmental capacity of aged porcine oocytes.
Plant Chloroplast have several advantages as an expression platform of biopharmaceuticals over conventional expression platforms such as mammalian cells, yeast and bacteria. First, plants do not serve as a host for mammalian infectious virus and have endotoxin like bacteria which can cause anaphylactic shock. In addition, high copy number of chloroplast genome allows for chloroplast transformants to reach the high level of expression of heterologous genes. Moreover, the integration of transgenes into specific region of chloroplast genomes makes chloroplast transformants unaffected by positional effect which can be frequently observed from nuclear transformants, resulting in loss of transgene expressions. Antimicrobial peptides (AMPs) are a kind of innate immunity which is found from bacteria to humans. Unlike conventional antibiotics, very less dosage of AMPs can have catastrophic effect on bacterial survival. Further, the repeated use of AMPs does not trigger the development of bacterial resistance. Moricin, one of the AMPs, was isolated from Bombyx mori, a silkworm moth. The C-terminal of moricin consists largely of basic amino acids, and the N-terminal has an α-helix structure. Moricin was chosen and expressed in a SUMO/SUMOase without leaving any unwanted amino acids which could potentially affect the anti-bacterial activity of the moricin. The transformation vector used in this study has already been created in this lab for the expression in both prokaryotic systems such as E. coli and chloroplast. The expressed moricin was purified using Ni columns and SUMOase, and the antibacterial activity of the purified moricin was confirmed using an agar diffusion assay.
Phosducin (PDC) is a photoreceptor cell-specific protein that is phosphorylated by cyclic nucleotide-dependent protein kinase. PDC and PDC-like proteins (PDCL, PDCL2, and PDCL3) are members of a conserved family of small thioredoxin-like proteins that modulate the ${\beta}$- and ${\gamma}$-subunits of G-proteins. In mammals, Pdc, Pdcl, and Pdcl3 genes show ubiquitous expression; however, Pdcl2 gene expression is limited to the testis and ovary. The aim of the present study was to examine the expression patterns of chicken Pdcl2 (cPdcl2) during testicular and ovarian development. Protein sequence comparisons performed using the CLUSTAL X program revealed that the amino acid sequences and potential phosphorylation sites of cPDCL2 and mammalian PDCL2 proteins were highly conserved. Quantitative real-time PCR analysis revealed that cPdcl2 was differentially expressed in the testis and ovary. Specifically, cPdcl2 expression was detected at low levels in the ovary at all time points. In the testis, cPdcl2 expression was detected at low levels until 5 weeks of age. At 8 weeks of age, however, cPdcl2 showed increased expression levels in the testis. Using in situ hybridization, we detected high levels of cPdcl2 expression in the testis, particularly in the spermatocytes and round spermatids. In summary, our data describe expression patterns of germ cell-specific Pdcl2 during testicular and ovarian development in chickens.
Mammalian spermatogenesis occurs in a precise and coordinated manner in the seminiferous tubules. One of the attempts to understand the detailed biological process during mammalian spermatogenesis at the molecular level has been to identify the testis specific genes followed by study of the testicular expression pattern of the genes. From the subtracted cDNA library of rat testis prepared using representational difference analysis (RDA) method, a complimentary DNA clone encoding type III member of a DnaJ family protein, DnaJC18, was cloned (GenBank Accession No. DQ158861). The full-length DnaJC18 cDNA has the longest open reading frame of 357 amino acids. Tissue and developmental Northern blot analysis revealed that the DnaJC18 gene was expressed specifically in testis and began to express from postnatal week 4 testis, respectively. In situ hybridization studies showed that DnaJC18 mRNA was expressed only during the maturation stages of late pachytene, round and elongated spermatids of adult rat testis. Western blot analysis with DnaJC18 antibody revealed that 41.2 kDa DnaJC18 protein was detected only in adult testis. Immunohistochemistry study further confirmed that DnaJC18 protein, was expressed in developing germ cells and the result was in concert with the in situ hybridization result. Confocal microscopy with GFP tagged DnaJC18 protein revealed that it was localized in the cytoplasm of cells. Taken together, these results suggested that testis specific DnaJC18, a member of the type III DnaJ protein family, might play a role during germ cell maturation in adult rat testis.
Using a retrovirus, foreign genes can be introduced into mammalian cells. The purpose of this study is to produce a retrovirus that can make the infected cells express two genes; the human multidrug resistance gene (MDR1) and the HLA-B7 gene, which is one of the major human histocompatibility complex (MHC) class I genes. For the expression of these genes, the internal ribosome entry site (IRES) was used, which was derived from the encephalomyocarditis (EMC) virus. In order to produce retroviruses, a retroviral vector was transfected into a packaging cell line and the transfected cells were treated with vincristine, which is an anti-cancer drug and a substrate for the MDRI gene product. This study revealed that two genes were incorporated into chromosomes of selected cells and expressed in the same cells. The production of the retrovirus was confirmed by the reverse transcription (RT)-PCR of the viral RNA. The retrovirus that was produced infected mouse fibroblast cells as well as the human U937. This study showed that packaging cells produced the retroviruses, which can infect the target cells. Once the conditions for the high infectivity of retrovirus into human cells are optimized, thus virus will be used to infect hematopoietic stem cells to co-express MDRl and HLA-B7 genes, and develop the lymphocytes that can be used for the immnogene therapy.
Caspases, a family of cysteine proteases, cleave substrates and play significant roles in apoptosis, autophagy, and development. Recently, our group identified 72 genes that interact with Death Caspase-1 (DCP-1) proteins in Drosophila by genetic screening of 15,000 EP lines. However, the cellular functions and molecular mechanisms of the screened genes, such as their involvement in apoptosis and autophagy, are poorly understood in mammalian cells. In order to study the functional characterizations of the genes in human cells, we investigated 16 full-length human genes in mammalian expression vectors and tested their effects on apoptosis and autophagy in human cell lines. Our studies revealed that ALFY, BIRC4, and TAK1 induced autophagy, while SEC61A2, N-PAC, BIRC4, WIPI1, and FALZ increased apoptotic cell death. BIRC4 was involved in both autophagy and apoptosis. Western blot analysis and luciferase reporter activity indicated that ALFY, BIRC4, PDGFA, and TAK1 act in a p53-dependent manner, whereas CPSF1, SEC61A2, N-PAC, and WIPI1 appear to be p53-independent. Overexpression of BIRC4 and TAK1 caused upregulation of p53 and accumulation of its target proteins as well as an increase in p53 mRNA levels, suggesting that these genes are involved in p53 transcription and expression of its target genes followed by p53 protein accumulation. In conclusion, apoptosis and/or autophagy mediated by BIRC4 and TAK1 may be regulated by p53 and caspase activity. These novel findings may provide valuable information that will aid in a better understanding of the roles of caspase-related genes in human cell lines and be useful for the process of drug discovery.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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