Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1997.04a
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pp.94-94
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1997
The objective of this study was to generate and characterize monoclonal antibodies against rat airway mucins, and therefore, should serve as a useful tool in studying the regulation of airway mucins using various in vivo rat models that are currently available. As an antigen, we used a high molecular mass mucin preparation purified from the spent media of rat tracheal surface epithelial cells in primary culture. Seven hybridomas were obtained which secrete monoclonal antibodies against the rat mucin among which mAbRT03 showed the highest immunoreactivity against the mucin based on ELISA. All of the antibodies secreted by these hybridomas recognized carbohydrate epitopes but not sialic acid residues since their immunoreactivity was completely abolished by treatment of the mucin with 20 mM periodate but not with neuraminidase. Further characterization of mAbRT03 showed that: (1) it belongs to the IgM type, (2) it binds to high molecular mass mucins based on both Western blot analysis and indirect immunoprecipitation, (3) it binds to the luminal side of tracheal epithelium as well as some goblet cells based on immunohistochemistry, and (4) it also recognizes in vive airway mucins from rats but not from human nor hamsters which have been purified from the airway lavage fluids. This is the first anti-rat airway mucin monoclonal antibody which has been developed against purified rat airway mucins. Therefore, mAbRT03 should be able to serve as an invaluable tool in studying the regulation of airway mucins using various intact rat models that are currently available.
This study was performed to produce monoclonal antibodies (mAb) specifically reacting with chicken leukocyte surface antigens. Popliteal lymph node cells of BALB/c mice previously immunized through foot-pad with peripheral blood mononuclear cells (PBMC) of chickens separated by Ficoll-Histopaque method. They were fused with P3X63Ag14 mouse myeloma cells. A total of 34 hybridomas secreted antibodies specifically binding to the PBMC. According to the reactivity patterns with PBMC, the mAbs were divided into 4 groups. Group 1 mAbs (IIB3, IIB10, IIE10) specifically reacted with non-adherent lymphocytes but not with adherent cells which were mainly composed of thrombocytes and monocytes in PBMC culture. These mAbs were reactive with 25-59% of thymus cells and 42-64% of spleen cells of chickens. They did not show any significant reactivity with cells in the bursa of Fabricius, T-cell (MDCC-MSB1) and B-cell (LSCC-1104B1) lines. These results indicate that Group I mAbs specifically reacted with T-lymphocyte subpopulation. Monoclonal antibodies in Group II (IC6, IG2-2 and IID9) showed specific reactivity with monocytes but not with thrombocytes or non-adherent cells in PBMC culture. These mAbs, though not reacted with the chicken macrophage cell line, HD11, also bound to macrophages of the spleen and lung in immunohistochemical staining. Five mAbs in Group III showed characteristics of binding to lymphocytes and monocytes, but not to thrombocytes. Twenty-three mAbs in Group IV showed specific reactivity to lymphocytes, monocytes, and thrombocytes. Two mAbs (IC3 and IE9) in Group IV reacted with most of PBMC.
This experiment was focused on the characterization of anti- Toxoplasma monoclonal antibodies (mAbs) and the effect of mAbs on the parasite invasion of mouse peritoneal macrophages. Twenty eight mAbs including M110, M556, R7A6 and M62l were characterized by Ab titer, immunoglobulin isotyping and western blot pattern. Antibody titer (optical density) of 4 mAbs. Ml 10. M556. R7A6 and M62l. were 0.53,0.67, 0.45 and 0.39 (normal mouse serum; 0.19) with the same IgGl isotypes shown by Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Western blot analysis showed that Ml 10. M556. R7A6 and M62l reacted with the 33 kDa (p30),31 kDa (p28),43 kDa and 36 kDa protein. Immuno-gold labelling of mAbs M110, M556, R7A6 and M621 reacted with the surface membrane, dense granules and parasitophorous vacuolar membrane (PVM) , rhoptries and cytoplasm of tachyzoite, respectively. For in vitro assay, preincubation of tachyzoties with four mAbs, Ml 10, M556, R7A6 and M62l resulted in the decrease of the number of infected macrophages (p < 0.05) and the suppression of parasite multiplication at 18 h post-infection. Four monoclonal antibodies including Ml 10 (SAGI) were found to have an important role in the inhibition of macrophage invasion and T. gondii multiplication in vitro, and these mAbs may be suitable for vaccine candidates, diagnostic kit and for chemotherapy.
The monoclonal antibody to chloramphenicol(CAP) was produced to develop an enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) for residual CAP. An immunogen(CAP-BSA) was prepared by immunogen, antibody titer was measured by indirect ELISA. Spleen cells form the immunized mouse were fused with SP2/OAg14 myeloma cells. Among hybridomas selected in HAT media, 6 clones shown high antibody titer to CAP were subjected to cloning by limit dilution, and all of the monoclonal antibodies(MCA1, 2, 3, 4, 5, 7 and 9) produced by each clone were identified as IgG1 by ELISA isotyping analysis. Competitive ELISA condition was established by using the purified monoclonal antibody MCA1 as primary antibody and CAP-HSA conjugate as coating antigen. Standard curve of CAP(n=28) showed that the lowest detection limit of CAP is 20ng/ml level. The cross-reactivities of the 6 monoclonal antibodies showed that CAP sodium succinate. CAP base, P-nitrophenol, and p-nitrobenzyl alcohol were 89∼178, 0.050∼2.237, 0.056∼0.794 and 0.013∼7.939%, respectively. No cross-reactivities were observed with phenylalanine, tyrosine, glutamine, thiamphenicol, neomycin, streptomycin, gentamicin, sulfamethazine, sulfathiazole, chlortetracycline and p-aminobenzoic acid.
An anion exchange chromatography was employed for the purification of mouse monoclonal antibodies from ascitic fluid and in vitro cultivation media. After cultivation of hybridomas, Alps 25-3, HCGK, A4W, and KW, producing IgG1, the culture supernatants were harvested by centrifugation, precipitated with 50-60% ammonium sulfate, and dialyzed against 0.025 M Tris-HCI buffer (pH 8.2). Then the dialyzed samples were loaded into a DEAE-Trisacryl M anion exchange column. Monoclonal antibodies bound to the DEAE-Trisacryl M were eluted with 0.025 M Tris-HCI buffer (pH 8.2) containing 30-40 mM NaCl. In ammonium sulfate precipitation, the recovery of the monoclonal antibody was shown to be 90% and 84% from in vitro culture media containing 10% and 2% fetal bovine serum, respectively. On the other hand, the pretreatment by ultrafiltration enhanced the yield up to 91% whereas the purity was lower than that by ammonium sulfate treatment. Subsequently, in the DEAE-Trisacryl M chromatographic separation, the purities and recoveries of all the monoclonal antibodies from both the in vitro culture supernatants and ascitic fluids were 70-80% and 65% respectively. The monoclonal antibody, Alps 25-3 could be further purified with a purity of 95% through an immunoadsorbent chromatography.
Monoclonal antibodies(MAbs) against field isolates of the bovine rotavirus A strain(G6), V strain(G10) and reference I-801 strain(G8) were produced and characterized. Six MAbs(4C2, 4D9, 5E1, 5E7, 5D5, 3E4) against A strain had neutralizing activity and reacted only with the G6 bovine rotaviruses determined by fluorescence focus neutralization (FFN) test. Otherwise, five neutralizing MAbs(1G2, 2G6, 5E2, 5E12, 5H7) against I-801 strain neutralized the G6 and G8 bovine rotaviruses. Five non-neutralizing MAbs(5F12, 7F12, 5E11, 2A11, 2B12) were VP6-specific and cross-reacted with all bovine and porcine rotaviruses examined by fluorescence antibody(FA) test. None of the MAbs reacted with bovie viral diarrhea virus(BVDV) and bovine coronavirus(BCV) determined by FA and FFN test.
The proportion of leukocyte subpopulation in the host is of a great importance in understanding their functions and disease progress. Many methods have been developed to seperate leukocytes and to measure their activities. Characterization of immune cell subpopulations in Korean native cattle was performed using a set of monoclonal antibodies specific which are specific to bovine leukocyte differentiation antigen. Peripheral blood leukocytes from fifty Korean native and ten Holstein cattle were collected and analyzed for the investigation of leukocyte subpopulation by using monoclonal antibodies and flow cytometry. The result indicated that Korean native cattle have significantly higher proportion of leukocyte subpopulations expressing MHC class II molecules and BoCD4 than Holstein cattle.
Shon Yun Hee;Kim Cheorl Ho;Jeon Byung Hun;Nam Kyung Soo
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.18
no.2
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pp.534-537
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2004
We produced twelve monoclonal antibodies(mAbs) against thyroglobulin and characterized the bindig profiles. Among them, three mAbs(TN-1, TN-2 and TN-3) were further characterized their binding specificities. TN-2 had a potent lupus anticoagulant activity and potentiated the anticoagulant effect of venom phospholipase A₂. he anticoagulant mechanism of TN-2 was elongation of the partial thromboplastin time and binding to phosphatidylserine which may have a pivot role in blood coagulation. And TN-2 was cross-reacted with ss-DNA and ds-DNA and had a characteristic of autoantibody. These results suggest that TN-2 may provide a useful tool for studying the correlation between autoimmune thyroiditis and its therapeutic effect.
Monoclonal antibodies against the zoospores of Allomyces macrogynus were prepared using standard hybridoma technique. Mice were immunized either with the fixed zoospores or the zoospore proteins, and the production of the antibodies from the resulting hybridomas were screened by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Thirty hybridomas were initially identified ans six hybridomas were purified to the single cell clones. Culture supernatants from the hybridomas were tested for the effects on the growth of the germ tubes, and some of the hybridoma culture supernatants studied showed growth stimulatory effects.
This study was designed to investigate the distributions of the positive cells in rat spleens by two monoclonal antibodies of MT1 and MB2. The spleens of immature 10 rats (Sprague Duwely, approximately 200gm) were collected and paraffin-embedded sections of spleens were stained with immunohistochemical methods. Higher proportions of MT1-positive cell number in spleens were ordered as marginal zone(8.5~18.1%), red pulp(2.1~8.8%) and periarterial lymphoid sheath(0~1.6%) in white pulp, and those of MB2-positive cell number are ordered as the central area of the periarterial lymphoid sheath(100%), red pulp(29.1~45.0%), marginal zone(15.2~30.4%), and peripheral area of periarterial lymphoid sheath(2.3~3.5%). The positive cells by MB2 are more numerous in number than by MT1. The above results were concluded that the positive cells by above two monoclonal antibodies were scattered throughout the red pulp and marginal zone, but in the central area of the periarterial lymphoid sheath, the MB2-positive cells only were present.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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