The effect of MAP kinase activity on maturation of porcine oocytes was investigated. MAP kinase was detected by immunofluorescence staining in nucleus of oocytes just before entering GVBD (germinal vesicle breakdown)stage. In a Western blot with GV (germinal vesicle) from these oocytes (cultured for 25 hours), a shift of MAP kinase band a, pp.ared, suggesting an activated stage of the kinase. No activity was shown in the blot with GV isolated from, oocytes cultured for 0 hour. To confirm that activation of MAP kinase induce GVBD, we microinjected MAP kinase purified from matured oocytes starfish into the cytoplasm of oocytes in GV stage (cultured for 0 hour). The injected MAP kinase did not cause early a, pp.arance of GVBD. No oocytes showed GVBD state until 20 hours of culture. Activity of MAP kinase did not increase significantly after the injection. When the exogenous MAP kinase was injected into GV, GVBD was induced in about 20% of oocytes cultured for 5 to 10 hours. These results suggest that MAP kinase is traslocated to nucleus and function as a factor inducing GVBD.
The mitogen-activated protein(MAP) kinase signal transduction pathway represents an important mechanism by which mitogen, such as serum and PMA, regulate cell proliferation and differentiation. Target substrates of the MAP kinase are located within several compartments containing plasma membranes and nucleus. We now report that serum addition induces proliferation of the P388 murine leukemia cell, but PMA does not, while both serum and PMA treatment cause translocation of the MAP kinase, mainly p42$^{mapk}$ isoform, from cytosol into the nucleus, which was monitored by immunoblot analysis using polyclonal anti-ERK1 antibodies. We investigated whether the MAP kinase was capable of phosphorylating c-Jun protein and GST-fusion proteins, the P562$^{kk}$N-terminal peptides (1-77 or 1-123 domain) of the T cell tyrosine kinase, using the partially purified MAP kinase by SP-sephadex C-50, phenyl superose and Mono Q column chromatography. We found that the partially purified MAP kinase was able to phosphorylate c-Jun protein and the GST-fusion protein expressed using E.coli DH5$\alpha$ which is transformed with pGEX-3Xb plasmid vector carrying of p562$^{kk}$N-terminal peptide-encoding DNA. These results imply that tyrosine kinase receptor/Ras/Raf/MAP kinase pathway is a major mechanism for mitogen-induced cell proliferation in P388 murine leukemia cell and that the various MAP kinase isoforms may have their own target substrates located in distinct subcellular compartments.
In an attempt to evaluate the function of MAP kinase in porcine oocytes and to develop a method of the assessment of its activity, myelin basic protein (MBP) was used as a substrate to detect the MAP kinase activity of porcine oocytes which had undergone maturation in vitro. The existence of MAP kinase and MAP kinase kinase (MAPKK) was verified in immature porcine germinal vesicle (GV) oocytes at 0 h culture via Western blotting. Porcine oocytes exhibited a low level of MAP kinase activity during the first 20 h of culture, which increased at 25 h, during which time a breakdown in the nuclear membrane occurred. Significantly higher increases (p<0.05) of MAP kinase activity were detected at 30 h of culture. Using the gel phosphorylation method, MBP was phosphorylated at two positions corresponding to mammalian MAP kinase-extracellular signal-regulated kinase (ERK 1) (44 kDa) and ERK 2 (42 kDa). The absolute levels of those proteins did not increase during 40 h of culture, suggesting that the detected increase in MAP kinase activity was the result of phosphorylation rather than changes in the total amount of protein. MAPKK and MAP kinase were dephosphorylated in first-stage (MI) meiotic oocytes by the addition of cycloheximide, a protein synthesis inhibitor. These results of this study indicate that the MAP kinase cascade does exists in porcine oocytes and that its activation leads to oocyte maturation.
In an attempt to evaluate the function of MAP kinase of porcine oocytes and to develop a method of assessment for kinase activity, we used MBP as a substrate to detect the MAP kinase activity of porcine oocytes matured in in vitro. The MAP kinase which had lower activity during the first 20 hours of culture started to show an increased amount of activity at 25 hours at which a collapse in nuclear membrane was induced. Significant (P<0.05) a, pp.ared at 30 hours of being cultured. The gel phosphorylation method, MBP which has been known to be a substrate for kinase such as cdc2 kinase, was phosphorylated at two positions corresponding to ERK 1 (44kDa) and ERK2 (42 kDa) which are known as mammalian MAP kinase. The existence of MARKK and MAP kinase were identified with western blotting at 0 hour culture of immature GV oocytes. The amount of those proteins did not increase during 40 hours of culture, which suggest that the increase of MAP kinase activity was caused by phosphorylaton rather than due to change in protein amount. MAPKK and MAP kinase were shown to be dephosporylated with deactivated at M 1 stage by inhibition of protein synthesis with cycloheximide added at the strat following the cultrue. We have reulsts that indicate the existedence of MAP kinase cascade which was activated simultaneously with start of porcine oocyte maturation (GVBD).
MAP kinases are a family of serine/threonine specific protein kinases becoming activated in response to different proliferative stimuli by phosphorylation at both threonine and tyrosine residue. Present study shows that MAP kinase was purified from P388 murine leukema cells by SP sephadex C-50, phenyl superose and Mono Q column chromatography and identified with anti-ERKl antibody by western blotting. Immnublotting analysis to the crude extract of P388 cell lysate shows 44 kD and other minor bands but partial purified fraction eluted from phenyl supherose column have 44kD and 66 kD isoform. Subcloned GST-fusion protein from N-terminal of $p56^{kk}$ was tested as a substrate for MAP kinase phosphorylation. It was showed that the wild type and mutant forms(S42A) were fully phosporylated by purified MAP kinase fraction as com-pare with the other mutant form(S59A). This finding suggest that those GST-fusion proteins may be used as substrate for the in vitro test of MAP kinase.
p38 MAP kinase belongs to the Mitogen-activated protein (MAP) kinase family; a serine/threonine kinase. It plays an important role in intracellular signal transduction pathways. It is associated with the development and progression of various cancer types making it a crucial drug target. Present study involves the HQSAR analysis of recently reported imidazo[1,2-b]pyridazine derivatives as p38 MAP kinase antagonists. The model was generated with Atom (A), bond (B), chirality (Ch), and hydrogen (H) parameters and with different set of atom counts to improve the model. An acceptable HQSAR model ($q^2=0.522$, SDEP=0.479, NOC=5, $r^2=0.703$, SEE=0.378, BHL=97) was developed which exhibits good predictive ability. A contribution map for the most active compound (compound 17) illustrated that hydrogen and nitrogen atoms in the ring A and ring B, as well as nitrogen atom in ring C and the hydrogen atom in the ring D provided positive activity in inhibitory effect while, the least active compound (compound 05) possessed negative contribution to inhibitory effect. Hence, analysis of produced HQSAR model can provide insights in the designing potent and selective p38 MAP kinase antagonists.
In the present study, we demonstrate that ephrin-A5 is able to induce a transient increase of MAP kinase activity in PC12 cells. However, the effects of ephrin-A5 on the MAP kinase signaling pathway are about three-fold less than that of EGF. In addition, we demonstrate that EphA4 is the only Eph member expressed in PC12 cells, and that tyrosine phosphorylation induced by ephrin-A5 treatment is consistent with the magnitude and longevity of MAP kinase activation. Experiments using the Ras dominant negative mutant N17Ras reveal that Ras plays a pivotal role in ephrin-A5-induced MAP kinase activation in PC12 cells. Importantly, we found that the EphA4 receptor is rapidly internalized by endocytosis upon engagement of ephrin-A5, leading to a subsequent reduction in the MAP kinase activation. Together, these data suggest a novel regulatory mechanism of differential Ras-MAP kinase signaling kineticsexhibited by the forward signaling of EphA4 in PC12 cells.
Receptor activation of nuclear factor ${\kappa}$ B ligand (RANKL)은 파골세포의 분화와 기능에 중요한 역할을 하는 단백질로 이들 물질의 조절에는 p38 MAP kinase가 관여한다. 그러나 치주인대 섬유모세포에서 RANKL 발현 시 p38 MAP kinase의 역할은 잘 알려져 있지 않다. 이에 이번 연구는 마우스 치주인대 섬유모세포의 $IL-1{\beta}-induced$ RANKL 발현과정에서 p38의 역할을 규명하고자 하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 마우스 치주인대 섬유모세포에 $IL-1{\beta}$ (1ng/ml)의 자극은 수용성 RANKL의 합성을 증가시켰다. 수용성 RANKL의 합성은 p38 MAP kinase 억제제인 SB203580에 의해 농도 의존적으로 억제되었으나 다른 MAP kinase 억제제인 SP600125, JNK 억제제와 PD98059, ERK 억제제에 의해서는 수용성 RANKL의 합성이 조절되지 않았다. NF-kB 억제제에 의해서도 수용성 RANKL의 합성이 억제되지 않았다. RANKL 유전자의 발현은 $IL-1{\beta}$로 자극 시에는 대조군에 비해 약 5배의 발현 증가를 보였으나 SB203580으로 전처치 시 $IL-1{\beta}$ (1ng/ml)로 자극시보다 약 1.5배의 감소를 보였다. 그러나 SP600125, PD98059, 및 NF-kB 억제제로 전처치한 경우에는 $IL-1{\beta}$로 자극한 경우와 비슷한 수준을 보였다. $IL-1{\beta}$로 자극 시 RANKL 유전자의 반감기가 90분 이었으나 SB203580로 전처치 후 $IL-1{\beta}$로 자극 시 RANKL 유전자의 반감기는 60분으로 감소하였다. Cycloheximide 전처리 시 SB203580에 의한 RANKL 유전자 발현 억제가 관찰되지 않았다. 단백질 분석결과 p38 MAP kinase의 인산화 활성은 30분까지 증가하였으나 그 이후 감소하여 2시간째에는 그 발현이 미약하였다. SB203580로 전처치 후 $IL-1{\beta}$로 자극 시 p38 MAP kinase의 인산화 활성이 감소하였다. 이상의 결과는 p38 MAP kinase가 RANKL 유전자 조절에 중요한 역할을 담당하고 있음을 시사한다.
Matrix metalloproteinases (MMPs)는 치주조직내에 존재하는 세포외기질의 유지와 분해에 중요한 역할을 담당하고 있으며 이중 MMP-13은 치주질환의 진행과 깊은 관계가 있다고 알려져 있다. 이번 연구는 치주질환의 진행에 있어서 MMP-13의 활성에 대한 mitogen activated protein(MAP) Kinase의 역할을 구명하기 위해 시행되었다. 백서 치주인대세포에서의 MMP-13 mRNA의 발현은 RT-PCR에 의하여, 그리고 MAP Kinase의 발현은 Western blot에 의하여 측정하였다. $Interleukin-1{\beta}$(IL $-1{\beta}$), Tumor necrosis $factora(TNF-{\alpha})$와 parathyroid hormon(PTH)는 MMP- 13 mRNA 발현을 각각 320%, 180%, 380% 증가시켰으나 bone morphogenetic protein-7(BMP-7)은 MMP-13 mRNA의 발현을 증가시키지 않았다. p38 MAP Kinase 억제제인 SB203580은 IL $-1{\beta}$ 유도 MMP-13의 발현을 약 40% 정도 억제시켰으나, PTH-유도 MMP-13 mRNA의 발현은 억제하지 못했다. IL $-1{\beta}$는 MMP- 13 mRNA의 반감기를 약 2시간 정도로 증가시켰으나, p38 MAP Kinase 억제제로 전처치한 경우에는 반감기가 60분으로 줄어들었다. $IL-1{\beta}$는 p38 MAP kinase와 JNK의 인산화 활성을 증가시켰으나 PTH, $TNF-{\alpha}$와 BMP-7은 p38, JNK, ERK의 활성을 증가시키지 못했다. 이상의 연구결과는 p38 MAP Kinase가 백서 치주인대세포에서의 MMP-13 mRNA 발현을 조절하는데 중요한 역할을 담당함을 시사하였다.
We investigated whether experimental esophagitis and IL-1$\beta$ could induce the activation of MAP kinases in esophageal smooth muscle. With two models of experimental esophagitis, we assessed the activity of p38 MAP kinase, p44/42 MAP kinase and JNK. In feline acute experimental esophagitis, immunoblotting of normal and esophagitis-induced smooth muscle with each types of MAP kinase antibodies revealed the slight increase of phosphorylated form of p38 MAP kinase, especially in membrane fraction. (omitted)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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