Jung, Hae-Min;Ten, Leonid N.;Im, Wan-Taek;Yoo, Soon-Ae;Lee, Sung-Taik
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.9
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pp.1496-1499
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2008
A Gram-negative, aerobic, rod-shaped, nonspore-forming bacterial strain, designated Gsoil $357^T$ was isolated from soil sample of a ginseng field in Pocheon Province (South Korea). The isolate contained Q-8 as the predominant ubiquinone and iso-$C_{16:0}$, iso-$C_{17:1}$${\omega}9c$, and iso-$C_{15:0}$ as the major fatty acids. The G+C content of the genomic DNA was 69.3 mol%. A phylogenetic analysis based on 16S rRNA gene sequences revealed that strain Gsoil $357^T$ was most closely related to Lysobacter gummosus (97.6%) and Lysobacter antibioticus (97.6%). However, the DNA-DNA relatedness value between strain Gsoil $357^T$ and its phylogenetically closest neighbors was less than 17%. On the basis of its phenotypic properties and phylogenetic distinctiveness, strain Gsoil 357T should be classified as representing a novel species in the genus Lysobacter, for which the name Lysobacter ginsengisoli sp. novo is proposed. The type strain is Gsoil $357^T$ (=KCTC $12602^T$=DSM $18420^T$).
The rhizobacterial diversity associated with 9 native plant species inhabiting coastal sand dunes in Tae-an area, Chungnam Province, was studied using the denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) fingerprinting analysis over three times from October 2003 to March 2004. One dominant band commonly occurred in all of the rhizosphere samples, which was identified as that of Lysobacter enzymogenes. The other common bands included those derived from species of Pseudomonas and Bacillus. It was notable that L. enzymogenes was dominant in all of the 9 plant species and such dominance was consistent throughout the whole sampling period, which confirms the previous study by Lee et al. (2006a). The Bacillus bands were detected in all of the three samplings, and those of Pseudomonas were notable in the samples of December 2003. By the DGGE analysis alone, the significance of Lysobacter to the sand dune plants is not clear. However, considering their presence in healthy plants and the dominance in all plant species, Lysobacter may have positive roles in the survival or growth of the plants in sand dune area.
Using cell-free extract of Lysobacter lactamgenus, enzymatic conversion of $\delta$-L-($\alpha$-aminoadiphyl)-L-cysteinyl-D-valine (ACV) the first substrate of $\beta$-lactam biosynthesis, into antibiotic compounds was attempted. In high performance liquid chromatographic (HPLC) analysis, the biosynthetic intermediates for cephalosporin antibiotics including isopenicillin N, deacetoxycephalosporin C, deacetylcephalosporin C and unknown cephem compound were detected in reaction mixtures. It implies that cephabacin compounds from L lactamgenus could be produced by biosynthetic routes through penicillin ring formation and its expansion to cephalosporin ring, likely as cephalosporin C from Cephalosporium or cephamycin C from Streptomyces. Among biosynthetic enzyme in cell-free extract, the ring formation activity (isopenicillin N synthetase activity) was separated in 50-60% of ammonium sulfate fraction, and ring expansion activity (deacetoxycephalosporin C synthetase activity) was found to be in 40-50% fraction. The partially purified isopenicillin N synthetase could convert as much as 90% ACV to isopenicillin N during 6-hour reaction.
The gene for isopenicillin N synthase (cyclase; IPNS) was cloned from Lysobacter lactamgenus using DNA probe amplified with primers based on the consensus sequences of isopenicillin N synthase genes of other ${\beta}$-lactam-producing microorganisms. The genomic library of L. lactamgenus using pUC18 plasmid cloned at the SacI site were screened with the PCR-generated DNA probe and three positive clones were isolated. Enzyme activities in E. coli clones were confirmed by bioassay and HPLC assay. Throughout the functional mapping, it was observed that the gene for isopenicillin N synthase is located at the 1.3-kb XhoI-BamHI fragment of insert of positive clones. Nucleotide sequencing at both ends of the XhoI-BamHI fragment revealed that IPNS of L. lactamgenus has the common amino acid sequences at amino- and carboxy-termini.
Park, Myoung-Jin;Yon, Jei-Oh;Lim, Si-Kyu;Ryu, Dewey D.-Y.;Nam, Doo-Hyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.3
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pp.635-638
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2004
An ATP-binding-cassette (ABC) transporter gene in the cephabacin biosynthetic gene cluster of Lysobacter lactamgenus was characterized. The amplified orf10 (cpbJ) gene was subcloned into pET-28a(+) vector and expressed in E. coli BL21(DE3) strain by 0.5 mM IPTG at $30^{\circ}C$. The membrane fraction of recombinant E. coli cells was separated by ultracentrifugation, and solubilized using 2.5% octyl-$\beta$-D-glucoside. Using the solubilized membrane fraction, the artificial proteoliposomes were reconstituted and analyzed for the biological activity of CpbJ protein. Upon measuring ATPase activity, the proteoliposome made from recombinant E. coli membrane proteins showed slightly higher activity than that from host E. coli membrane proteins. In the measurement of membrane transport activity, the reconstituted proteoliposome of recombinant E. coli membrane proteins exhibited higher activity when both substrates of cephalosporin C and L-Ala-L-Ser were applied, compared to the case of cephalosporin C or L-Ala-L-Ser only. It implies that the CpbJ protein is an ABC transporter secreting cephabacin antibiotics synthesized in cytoplasm.
Two chitinase producing strains CHI2 and CHI4 were isolated from soybean rhizosphere soil. Both the strains belonged to Lysobacter enzymogenes as indicated by 16S rDNA sequence analysis. Though strain CHI2 and CHI4 produced extracellular chitinase, they differ in their chitinolytic activity. CHI4 produced approximately three times the higher amounts of enzyme than that of CHI2 under specified conditions. CHI2 produced $535.67U\;l^{-1}$ of chitinase after 48 h incubation with a specific activity of $3.91U\;mg^{-1}$ of protein while strain CHI4 produced $1584.13U\;l^{-1}$ of chitinase with a specific activity of $10.88U\;mg^{-1}$ protein. SDS-PAGE analysis indicated that the molecular weight of chitinase enzyme was approximately 45 kDa. A faint band with a molecular weight of 55 kDa reveals the possibility for the presence of another kind of chitin binding protein. Mutant library was developed by exposing the isolates to gamma rays at their $LD_{99}$ value (0.23 kGy). Totally, 11 mutants of CHI2 and CHI4 are reported to have enhanced chitinase activity. Several leaky mutant clones with decreased enzyme activity and a defective mutant (CHI2-M16) with complete loss of chitinase activity were also identified. CHI4-M18, CHI4-M8 and CHI4-M29 showed 78.8, 41.5, and 31.9% increased chitinase activity over wild type CHI4.
A chitinolytic bacterium having a strong antagonistic activity against various pathogens including Phytophtora capsici was isolated from rhizosphere soil, and identified as Lysobacter enzymogenes (named as LE429) based on 16S rRNA gene sequence analysis. This strain produced a number of substances such as chitinase, ${\beta}-1$, 3-glucanase, lipase, protease, gelatinase and an antibiotic compound. This antibiotic compound was purified by diaion HP-20, sephadex LH-20 column chromatography and HPLC. The purified compound was identified as phenylacetic acid by gas chromatography-electron ionization (GC-EI) and gas chromatography-chemical ionization (GC-CI) mass spectrometry. In field experiment, pepper plants were treated by the strain LE429 culture (CB), neem oil solution (NO), combination (CB+NO) or control (CON). Plant height and number of branches, flowers and pods of pepper plant in CB treatment were generally highest, and followed by CB+NO, CON and NO. The fungal pathogens were strongly inhibited, while several insect pests were discovered in CB treatment. Any insect pests were not found, while all fungal pathogens tested were not suppressed in NO treatment. However, in CB+NO treatment, non incidence of fungal pathogens and insect pests were found. The strain LE429 producing secondary metabolites with neem oil should be a potential agent to control fungal diseases and insect pests.
The experiments were carried out to investigate the biocontrol potential of Lysobacter capsici YS1215 on root-knot nematode and to characterize its lytic enzyme activities. L. capsici YS1215 showed chitinase and gelatinase activities on the medium containing 0.5% chitin or 0.5% gelatin as substrates. Cell growth of L. capsici YS1215 was highest at 6 days, and the highest activities of chitinase (4.0 unit $ml^{-1}$) and gelatinase (7.43 unit $ml^{-1}$) were observed on 3 and 5 days after incubation, respectively. To investigate the effect of L. capsici YS1215 on tomato growth and nematode infection, the plants in pot trial were treated with bacterial culture (BC), half of bacterial culture (HBC), only bacterial medium (BM), tap water (TW) and commercial nematicide (CN). HBC treatd plants showed the higher shoot fresh weight and dry weight on $5^{th}$week after incubation while BM, HBC and BC had consistently higher values than TW at $9^{th}$ week. HBC appeared to be the highest shoot fresh length at $9^{th}$ week. Both CN and BC showed lower number of egg mass, root gall, and population of juveniles in soil compared to BC, HBC, BM and TW. These results suggest that L. capsici YS1215 with its strong ability of lytic enzyme production can be one of the most significant candidates for biocontrol agents against root-knot nematodes.
Gardener, Brian B. McSpadden;Kim, In Seon;Kim, Kil Yong;Kim, Young Cheol
Research in Plant Disease
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v.20
no.3
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pp.216-218
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2014
Lysobacter antibiocus HS124 is a chitinase-producing rhizobacterium with proven capacities to suppress plant diseases. Bacterial cultures of L. antibioticus HS124 showed strong biocontrol efficacies against various plant diseases compared to those of bacterial cultures of Bacillus subtilis QST713 which is an active ingredient of a commercial biopesticide, Serenade. Here, we report the draft genome sequence and automated annotation of strain HS124. This draft genome sequence indicates the novelty of L. antibiocus HS124 and a subset of gene functions that may be related to its biocontrol activities.
In order to confirm the biological function of ORF10 in cephabacin biosynthesis gene cluster of Lysobacter lactamgenus as an ATP-binding-cassette (ABC) transporter, the gene for ORF10 was amplified and subcloned into pET-28a(+) expression vector. After gene induction with 0.5 mM IPTG at 30~! and further cultivation at $30^~$ !. for 8 hr, a lot of the recombinant ORF10 protein was produced as soluble form in cytoplasmic fraction as well as a membrane protein in the membrane fraction as likely as other ABC transporters. (omitted)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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