Litchi (Litchi chinensis Sonn.) is an important subtropical fruit crop with high commercial value due to its high nutritional values and favorable tastes. However, irregular bearing attributed to unstable flowering is a major ongoing problem for litchi producers. Previous studies indicate that low-temperature is a key factor in litchi floral induction. In order to reveal the genetic and molecular mechanisms underlying the reproductive process in litchi, we had analyzed the transcriptome of buds before and after low-temperature induction using RNA-seq technology. A key flower bud differentiation associated gene, a homologue of FLORICAULA/LEAFY, was identified and named LcLFY (GenBank Accession No. KF008435). The cDNA sequence of LcLFY encodes a putative protein of 388 amino acids. To gain insight into the role of LcLFY, the temporal expression level of this gene was measured by real-time RT-PCR. LcLFY was highly expressed in flower buds and its expression correlated with the floral developmental stage. Heterologous expression of LcLFY in transgenic tobacco plants induced precocious flowering. Meantime, we investigated the sub-cellular localization of LcLFY. The LcLFY-Green fluorescent protein (GFP) fusion protein was found in the nucleus. The results suggest that LcLFY plays a pivotal role as a transcription factor in controlling the transition to flowering and in the development of floral organs in litchi.
The degree to which parallel evolution utilizes the same genetic mechanisms indicates the degree to which developmental processes constrain or channel phenotypic evolution. A transgenetic strategy was used to elucidate the role of one floral meristem identity gene, LEAFY (LFY), in the evolution of rosette flowering, a plant architecture that has evolved in parallel in several lineages of the mustard family, Brassicaceae. The LFY genes from three rosette flowering species were cloned and introduced into a species with the ancestral architecture, and results indicated that changes at the LFY locus contributed to the evolution of rosette flowering in two of the three lineages, but that in each lineage a different set of genetic partners was involved. Also, LFY was shown to play a role in the evolution of flower size. Transgenetic strategy may be useful in the study of plant morphological evolution and parallelism.
This study was performed to determine by the ability of the mixed culture of Lactobacillus bulgaricus and Streptococcus thermophilus to ferment Dioscorea opposita Thunb. (yam) and to evaluate the nutraceutical value of fermented yam. The titratable acidity (TA) value increased from 2 to 6% with increased concentrations in both raw yam and extracted lactic acid bacteria (LAB) fermented yam (LFY). The viable cell counts and the allantoin and diosgenin contents were higher in raw LFY at large concentrations (6%) than in extracted LFY samples at all fermentation periods up to 32 h. Based on these data, it confirmed that raw yam fermented by the combination culture of L. bulgaricus and S. thermophilus for various fermentation periods favors the symbiotic growth of LAB and results in higher nutraceutical content.
The manufacturing process and quality properties of Lactococcus lactis-fermented yakchobugak (LFY) containing some colored agro-food products were investigated to develop a good organoleptic bugak from the leaf of the medicinal herb. The de-oiling rate of LFY by centrifugation was 37.6%, which was significantly different to the 3.5% value obtained after standing and the 8.9% value obtained with the beating method (p<0.05). Reducing power (RS) increased with addition of increasing levels of ethanol extracts from agro-food powders. The RS of green tea extract-supplemented LFY had the highest value of 0.97 at $500{\mu}g/mL$, and this was significantly different to values obtained using other extracts (p<0.05). At 83.84%, the DPPH (2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl) free-radical scavenging activity of green tea extract-supplemented LFY was the greatest of all samples tested, followed by LFY with woolgeom at 39.48%, LFY with black rice at 28.45%, and LFY with bokbunja at 22.24% all ethanol extracts were added at $50{\mu}g/mL$ (p<0.05). Acid values of green tea and bokbunja LFYs stored in transparent PE bags at $60^{\circ}C$ for 7 days were 1.82% and 2.03%, respectively. Textural hardness values of LFYs were less than 250.62, except for LFYs with black rice and woolgeom, but these values increased $2{\sim}3$-fold after lactic acid fermentation. Carbohydrate and protein content of LFYs were in the ranges $58.95{\sim}64.63%$ and $7.50{\sim}8.68%$, respectively. Lipid and calorie contents of woolgeom LFY had the lowest values of 22.02% and 490 Kcal, respectively.
A mutant Arabidopsis thaliana which is very sensitive to Ultraviolet-B(UV-B) radiation has been isolated by ethylmethane sulfonate(EMS) mutagenesis. Genetic cross proved the UV-sensitive gene(uvs) to segregate as a single Mendelian locus. For mapping of uvs, we crossed Arabidopsis thaliana Lansberg with uvs plant(Columbia), and made F2 plants by F1 selfcross. We designed 10 kinds of CAPS marker primers. Each primers amplifies a single mapped DNA sequence from uvs and Lansberg erecta ecotyres. Also identified was at least one restriction endonuclase for each of these PCR product that generates ecotype-specific digestion pattern. We got crossing over value of UB-sensitivity and each CAPS marker which located on different chromosome arm. The value of crossing over showed that uvs was linked to LFY3 which was on chromosome 5.
This experiment investigated whether yogurt containing fermented pepper juice (FPJY) affects cholesterol level in high fat and high cholesterol diet (HFCD) fed rat. Twenty five Sprague-Dawley male rats of 7 wk were divided into 5 groups, and fed following diets for 9 wk; CON (control diet), HFCD (HFCD), PY (HFCD supplemented with 2% of plain yogurt), LFY (HFCD supplemented with 2% of FPJY), and HFY (HFCD supplemented with 5% of FPJY). In the LFY group, hepatic total lipid level decreased significantly compared to the HFCD group (p<0.05). Serum HDL cholesterol level tended to increase and hepatic total cholesterol level decreased and were comparable to the CON group (p>0.05). In HFY group, body weight and hepatic total lipid level significantly decreased over the HFCD group (p<0.05). Serum and hepatic total cholesterol level, kidney, and body fat weights decreased, and were compared to the CON group (p>0.05). Liver weight decreased as FPJY content was increased. Results suggested FPJY would inhibit organ hypertrophy and accumulation of body fat, hepatic lipid, and cholesterol in HFCD fed rat.
In this study, we constructed various kinds of binary vectors with the pPZP backbone for co-overexpression, tissue- or development-specific expression and stress-inducible expression, and validated them for ectopic expression of target genes. Using a modified CaMV 35S promoter, a binary vector was generated for co-overexpression of two different genes and was confirmed to be efficient for overexpressing two different target genes at the same time and place. Binary vectors containing At2S3, KNAT1 or LFY promoters were constructed for tissue-specific or development-specific gene expression, and the binary vectors were suited for embryo/young seedling stage-, shoot apical meristem- or leaf primordia-specific expressions. Furthermore, the binary vectors containing RD29A or AtNCED3 promoters were validated as suitable vectors for gene expression induced by abiotic stresses such as high salt, ABA, MV and low temperature. Taken together, the binary vectors constructed in this study would be very useful for analyzing the biological functions of target genes and molecular mechanisms through ectopic expression.
Expression patterns of OsAREB1 revealed that expression of OsAREB1 gene can be induced by ABA, PEG and heat. Yeast one-hybrid assay demonstrated it can bind to ABA-responsive element (ABRE), which was found in most stress-induced genes. Transgenic Arabidopsis over-expressing OsAREB1 had different responses to ABA and glucose compared to wild-type plants, which suggest OsAREB1 might have a crucial role in these two signaling pathways. Further analysis indicate that OsAREB1 have multiple functions in Arabidopsis. First, OsAREB1 transgenic plants had higher resistance to drought and heat, and OsAREB1 up-regulated the ABA/stress related gene such as RD29A and RD29B. Second, it delayed plant flowering time by down-regulating the expression of flowering-related genes, such as FT, SOC1, LFY and AP1. Due to the dates, OsAREB1 may function as a positive regulator in drought/heat stresses response, but a negative regulator in flowering time in Arabidopsis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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