The present study was attempted to investigate the effect of nicorandil, which is an ATP-sensitive potassium ($K_{ATP}$) channel opener, on secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal glands. The perfusion of nicorandil ($0.3{\sim}3.0mM$) into an adrenal vein for 90 min produced relatively dose-and time-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), high $k^+$ (a direct membrane depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic receptor agonist, $100{\mu}M$ for 2 min), McN-A-343 (a selective muscarinic $M_1$ receptor agonist, $100{\mu}M$ for 4 min), Bay-K-8644 (an activator of L-type dihydropyridine $Ca^{2+}$ channels, $10{\mu}M$ for 4 min) and cyclopiazonic acid (an activator of cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase, $10{\mu}M$ for 4 min). In adrenal glands simultaneously preloaded with nicorandil (1.0 mM) and glibenclamide (a nonspecific $K_{ATP}$-channel blocker, 1.0 mM), the CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered to the considerable extent of the control release in comparison with that of nicorandil-treatment only. Taken together, the present study demonstrates that nicorandil inhibits the adrenal CA secretion in response to stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal glands. It seems that this inhibitory effect of nicorandil may be mediated by inhibiting both $Ca^{2+}$ influx and the $Ca^{2+}$ release from intracellular store through activation of $K_{ATP}$ channels in the rat adrenomedullary chromaffin cells. These results suggest that nicorandil-sensitive $K_{ATP}$ channels may play an inhibitory role in the regulation of the rat adrenomedullary CA secretion.
Phenolic compounds affect intracellular free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) signaling. The study examined whether the simple phenolic compound octyl gallate affects ATP-induced $Ca^{2+}$ signaling in PC12 cells using fura-2-based digital $Ca^{2+}$ imaging and whole-cell patch clamping. Treatment with ATP ($100\;{\mu}M$) for 90 s induced increases in $[Ca^{2+}]_i$ in PC12 cells. Pretreatment with octyl gallate (100 nM to $20\;{\mu}M$) for 10 min inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ response in a concentration-dependent manner ($IC_{50}=2.84\;{\mu}M$). Treatment with octyl gallate ($3\;{\mu}M$) for 10 min significantly inhibited the ATP-induced response following the removal of extracellular $Ca^{2+}$ with nominally $Ca^{2+}$-free HEPES HBSS or depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores with thapsigargin ($1\;{\mu}M$). Treatment for 10 min with the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine ($1\;{\mu}M$) significantly inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase, and treatment with octyl gallate further inhibited the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate significantly inhibited the $[Ca^{2+}]_i$ increase induced by 50 mM KCI. Pretreatment with protein kinase C inhibitors staurosporin (100 nM) and GF109203X (300 nM), or the tyrosine kinase inhibitor genistein ($50\;{\mu}M$) did not significantly affect the inhibitory effects of octyl gallate on the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate markedly inhibited the ATP-induced currents. Therefore, we conclude that octyl gallate inhibits ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in PC12 cells by inhibiting both non-selective P2X receptor-mediated influx of $Ca^{2+}$ from extracellular space and P2Y receptor-induced release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores in protein kinase-independent manner. In addition, octyl gallate inhibits the ATP-induced $Ca^{2+}$ responses by inhibiting the secondary activation of voltage-gated $Ca^{2+}$ channels.
Fluoxetine, a widely used anti-depressant compound, has several additional effects, including blockade of voltage-gated ion channels. We examined whether fluoxetine affects ATP-induced calcium signaling in PC12 cells by using fura-2-based digital calcium imaging and assay for $[^3H]-inositol$ phosphates (IPs). Treatment with ATP $(100\;{\mu}M)$ for 2 min induced $[Ca^{2+}]_i$ increases. The ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increases were significantly decreased by removal of extracellular $Ca^{2+}$ and treatment with the inhibitor of endoplasmic reticulum $Ca^{2+}$ ATPase thapsigargin $(1\;{\mu}M)$. Treatment with fluoxetine for 5 min blocked the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase concentration-dependently. Treatment with fluoxetine $(30\;{\mu}M)$ for 5 min blocked the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase following removal of extracellular $Ca^{2+}$ and depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores. While treatment with the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine for 10 min inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increases significantly, treatment with fluoxetine alone blocked the ATP-induced responses. Treatment with fluoxetine also inhibited the 50 mM $K^+-induced$$[Ca^{2+}]_i$ increases completely. However, treatment with fluoxetine did not inhibit the ATP-induced $[^3H]-IPs$ formation. Collectively, we conclude that fluoxetine inhibits ATP-indueed $[Ca^{2+}]_i$ increases in PC12 cells by inhibiting both an influx of extracellular $Ca^{2+}$ and a release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores without affecting IPs formation.
Resveratrol has been known to possess various potent cardiovascular effects in animal, but there is little information on its functional effect on the secretion of catecholamines (CA) from the perfused model of the adrenal medulla. Therefore, the aim of the present study was to determine the effect of resveratrol on the CA secretion from the isolated perfused model of the normotensive rat adrenal gland, and to elucidate its mechanism of action. Resveratrol (10${\sim}100{\mu}$M) during perfusion into an adrenal vein for 90 min inhibited the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high $K^+$ (a direct membrane-depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic $N_n$ receptor agonist, 100${\mu}$M) and McN-A-343 (a selective muscarinic $M_1$ receptor agonist, 100${\mu}$M) in both a time- and dose- dependent fashion. Also, in the presence of resveratrol (30${\mu}$M), the secretory responses of CA evoked by veratridine 8644 (an activator of voltage-dependent$Na^+$ channels, 100${\mu}$M), Bay-K-8644 (a L-type dihydropyridine $Ca^{2+}$ channel activator, 10${\mu}$M), and cyc1opiazonic acid (a cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor, 10${\mu}$M) were significantly reduced. In the simultaneous presence of resveratrol (30${\mu}$M) and L-NAME (an inhibitor of NO synthase, 30${\mu}$M), the CA secretory evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyc1opiazonic acid were recovered to a considerable extent of the corresponding control secretion compared with the inhibitory effect of resveratrol alone. Interestingly, the amount of nitric oxide (NO) released from the adrenal medulla was greatly increased in comparison to its basal release. Taken together, these experimental results demonstrate that resveratrol can inhibit the CA secretory responses evoked by stimulation of cholinergic nicotinic receptors, as well as by direct membrane-depolarization in the isolated perfused model of the rat adrenal gland. It seems that this inhibitory effect of resveratrol is exerted by inhibiting an influx of both ions through $Na^+$ and $Ca^{2+}$ channels into the adrenomedullary cells as well as by blocking the release of $Ca^{2+}$ from the cytoplasmic calcium store, which are mediated at least partly by the increased NO production due to the activation of NO synthase.
흰쥐 해마(hippocampus)에서 norepinephrine(NE) 유리에 미치는 $A_{1}-adenosine$ 수용체의 post-receptor 기전에 $K^+$-통로가 관여하는지에 대한 지견을 얻고자 하여 $^3H-NE$로 평형시킨 해마 절편을 사용하여 adenosine의 $^3H-NE$ 유리에 미치는 $K^+$-통로 차단제의 영향을 관찰하였다. Adenosine$(1{\sim}30{\mu}M)$은 전기자극(3 Hz, 2 ms, 5 $VCm^{-1}$, 구형파)에 의한 NE 유리를 용량 의존적으로 감소시켰다. $K^+$-통로 차단제의 하나인 4-aminopyridine(4AP, $1{\sim}30{\mu}M$)은 자극에 의한 NE 유리를 용량 의존적으로 증가시켰으며 특히 10 및 $30{\mu}M$의 투여에 의해 기저 유리 또한 증가시켰다. 또 다른 $K^+$-통로 차단제인 tetraethylammonium(TEA, $1{\sim}10mM$) 역시 자극에 의한 NE 유리를 용량 의존적으로 증가시켰으나 이때 기저 유리에는 변화를 보이지 않았다. $K^+$-통로 차단제의 adenosine 효과에 미치는 실험에서는 adenosine에 의한 NE 유리 감소효과가 4AP $3{\mu}M$ 동시 투여에 의해 억제되었으며, 또한 1 mM TEA에 의하여는 영향을 받지않았으나 3 mM TEA 동시 투여에 의하여는 억제됨을 볼 수 있었다. 한편 $30\;{\mu}M$ 4AP 에 의한 NE 유리 증가효과는 $Ca^{++}$ 제거 영양액에서는 완전히 소실되었고 영양액 내의 $Ca^{++}$을 정상 농도의 1/4로 하였을때에는 NE 유리 억제가 어느정도 회복됨을 볼 수 있었으며 이때 기저 유리 또한 증가됨을 볼 수 있었다. l/4 $Ca^{++}$ 농도시에 4AP의 NE유리에 미치는 효과는 영양액내의 $Mg^{++}$을 4mM로 올렸을때 크게 억제되었으며 $0.3\;{\mu}M$ tetrodotoxin(TTX) 동시 투여에 의해 완전히 차단됨을 볼 수 있었다. TEA 10mM에 의한 NE 유리 증가효과 역시 $Ca^{++}$ 제거 영양액에서 완전히 소실되었고 이 또한 1/4 $Ca^{++}$ 영양액에 의하여는 회복됨을 볼 수 있었으며 $Mg^{++}$ 증가 영양액에서는 억제, TTX 동시 투여시에는 완전히 소실되었다. 이상의 실험결과로 흰쥐 해마에서 $A_1-adenosine$ 수용체를 통한 adenosine의 NE 유리 감소는 TEA 및 4AP에 예민한 $K^+$-통로가 관여하고 여기에는 세포외액의 Ca^{++}의 농도가 중요한 인자의 하나로 관여 하는 것으로 사료된다.
일반적으로 FET형 전해질 이온 센서는 유리전극에 비하여 여러 가지 장점을 가지고 있으나 드리프트 및 기억효과가 있고 재현성이 부족한 단점을 가지고있어 이온 측정 시스템에 적용한 경우 전체적인 시스템의 신뢰성 저하를 가져온다. 이러한 점을 개선하기 위하여 본 논문에서는 8개의 동종 FET형 전해질 이온 센서 어레이를 사용하여 높은 신뢰성을 가지며 4종류의 이온($H^+$, $Na^+$, $K^+$, $Ca^{2+}$) 농도 측정이 가능한 시스템을 개발하였다. 개발된 측정 시스템은 전자식 스위치를 사용하여 단일의 신호 검출회로로 8개의 센서 신호를 검출하는 방법을 채택하였다. 또한 8개의 센서 신호를 삽입 정렬을 하여 신뢰성이 낮은 센서를 제외시키는 신호 처리 알고리즘을 개발하여 신뢰성을 향상시켰다. 제작된 시스템으로 3종류의 이온($H^+$, $Na^+$, $K^+$) 농도를 측정한 결과 개발된 신호처리 알고리즘은 여러 개의 센서 신호를 단순히 산술 평균을 취하는 방식에 비하여 오차의 범위를 더욱 줄일 수 있는 것으로 나타났으며, 기존의 단채널 방식의 전해질 이온 측정 시스템과 비교해볼 때 우수한 신뢰성을 가짐을 알 수 있었다.
Reducing $[Mg^{2+}]_o$ to 0.1 mM can evoke repetitive $[Ca^{2+}]_i$ spikes and seizure activity, which induces neuronal cell death in a process called excitotoxicity. We examined the issue of whether cultured rat hippocampal neurons preconditioned by a brief exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ are rendered resistant to excitotoxicity induced by a subsequent prolonged exposure and whether $Ca^{2+}$ spikes are involved in this process. Preconditioning by an exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ for 5 min inhibited significantly subsequent 24 h exposure-induced cell death 24 h later (tolerance). Such tolerance was prevented by both the NMDA receptor antagonist D-AP5 and the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine, which blocked 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$-induced $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The AMPA receptor antagonist NBQX significantly inhibited both the tolerance and the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The intracellular $Ca^{2+}$ chelator BAPTA-AM significantly prevented the tolerance. The nonspecific PKC inhibitor staurosporin inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. While $G{\ddot{o}}6976$, a specific inhibitor of $PKC{\alpha}$ had no effect on the tolerance, both the $PKC{\varepsilon}$ translocation inhibitor and the $PKC{\zeta}$ pseudosubstrate inhibitor significantly inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. Furthermore, JAK-2 inhibitor AG490, MAPK kinase inhibitor PD98059, and CaMKII inhibitor KN-62 inhibited the tolerance, but PI-3 kinase inhibitor LY294,002 did not. The protein synthesis inhibitor cycloheximide significantly inhibited the tolerance. Collectively, these results suggest that low $[Mg^{2+}]_o$ preconditioning induced excitotoxic tolerance was directly or indirectly mediated through the $[Ca^{2+}]_i$ spike-induced activation of $PKC{\varepsilon}$ and $PKC{\xi}$, JAK-2, MAPK kinase, CaMKII and the de novo synthesis of proteins.
Salviae Miltiorrhizae Radix has been used for treatment of cardiovascular diseases in oriental medicine. To investigate the possible involvement of cardiac ion channel in this effect, we examined electrophysiological effects of the extract of Salviae Miltiorrhizae Radix on action potentials and ionic currents in rat ventricular myocytes. The extracts of Salviae Miltiorrhizae Radix were fractionated into nine fractions, and the effect of each fraction on action potential was tested. The fraction containing monomethyl lithospermic acid-A (LSA-A) induced a significant prolongation of action potential duration (APD). LSA-B which is a major component of Salviae Miltiorrhizae Radix, however, did not cause a significant effect. In voltage clamp experiments, the effects of LSA-A on K currents, Ca currents and Na currents were tested. Neither K currents nor L-type Ca currents were affected by LSA-A. On the contrary, LSA-A significantly slowed down the inactivation kinetics of the Na current with no effect on the fast component of the inactivation process. The amplitude of the peak current and the voltage-dependence of activation were not changed by LSA-A. The effect of LSA-A on Na current was abolished when high concentration of $Ca^{2+}$ buffer (10 mM BAPTA) was included in the pipette solution or when Ca2+ current was blocked by nicardipine (1 $\mu$M) in the bath solution.n.
The aim of the present study was to examine the effect of provinol, which is a mixture of polyphenolic compounds from red wine, on the secretion of catecholamines (CA) from isolated perfused rat adrenal medulla, and to elucidate its mechanism of action. Provinol (0.3 ${\sim}$ 3 ${\mu}g/ml$) perfused into an adrenal vein for 90 min dose- and time-dependently inhibited the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high $K^+$ (a direct membrane-depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic $N_N$ receptor agonist, 100 ${\mu}M$) and McN-A-343 (a selective muscarinic $M_1$ receptor agonist, 100 ${\mu}M$). Provinol itself did not affect basal CA secretion. Also, in the presence of provinol (1 ${\mu}g/ml$), the secretory responses of CA evoked by Bay-K-8644 (a voltage-dependent L-type dihydropyridine $Ca^{2+}$ channel activator, 10 ${\mu}M$), cyclopiazonic acid (a cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor, 10 ${\mu}M$) and veratridine (an activator of voltage-dependent $Na^+$ channels, 10 ${\mu}M$) were significantly reduced. Interestingly, in the simultaneous presence of provinol (1 ${\mu}g/ml$) plus L-NAME (a selective inhibitor of NO synthase, 30 ${\mu}M$), the CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclpiazonic acid recovered to the considerable extent of the corresponding control secretion in comparison with the inhibition of provinol-treatment alone. Under the same condition, the level of NO released from adrenal medulla after the treatment of provinol (3 ${\mu}g/ml$) was greatly elevated in comparison to its basal release. Taken together, these data demonstrate that provinol inhibits the CA secretory responses evoked by stimulation of cholinergic (both muscarinic and nicotinic) receptors as well as by direct membrane-depolarization from the perfused rat adrenal medulla. This inhibitory effect of provinol seems to be exerted by inhibiting the influx of both calcium and sodium into the rat adrenal medullary cells along with the blockade of $Ca^{2+}$ release from the cytoplasmic calcium store at least partly through the increased NO production due to the activation of nitric oxide synthase.
The sinoatrial (SA) node is a complex and inhomogeneous tissue in terms of cell morphology and electrical activity. There are two models of the cellular organisation of the sinoatrial node: the gradient and mosaic models. According to the gradient model there is a gradual transition in morphology and electrical properties of SA node cells from the centre to the periphery of the SA node. In the mosaic model, there is a variable mix of atrial and sinoatrial node cells from the centre to the periphery. This review focuses on the cellular organisation of the rabbit sinoatrial node in terms of the expression of connexin (Cx40, Cx43 and Cx45), L-type $Ca^{2+}$ channel and $Na^+-Ca^{2+}$ exchanger proteins. These immunocytochemical data, together with morphological and electrophysiological data, obtained from the intact sinoatrial node and isolated sinoatrial node cells support the gradient model of the cellular organisation of the SA node. The complex organisation of the sinoatrial node is important for the normal functioning of the sinoatrial node: (i) it allows the sinoatrial node to drive the surrounding hyperpolarized atrial muscle without being suppressed by it; (ii) it helps the pacemaker activity of the sinoatrial node continue under a wide range of physiological and pathophysiological conditions; (iii) it helps protect the sinoatrial node from reentrant arrhythmias.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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