Ras genes are responsible for up to 30% of human tumor mutations and are composed of three isoforms: H-Ras, K-Ras and N-Ras. The post-translational modification of the CAAX motif of the Ras protein is essential in Ras actions. In the present study, we studied the effects of novel farnesyl transferase inhibitors (FTIs), YH3938 and YH3945, on the actions of oncogenic mutants of H-Ras, K-Ras and N-Ras. YH3938 and YH3945 completely reverted the proliferation and morphology of oncogenic H-Ras-transformed Rat2 cells, but not of oncogenic K-Ras-transformed Rat2 cells. Oncogenic N-Ras-transformed Rat2 cells were slightly affected. Activation of SRE promoters by oncogenic H-Ras and N-Ras, but not by K-Ras, were inhibited by treatment with YH3938 and YH3945. Using bandshift analysis, YH3938 suppressed the processing of oncogenic H-Ras and N-Ras, but not that of oncogenic K-Ras protein. YH3945 only inhibited the processing of H-Ras. From these results, we conclude that YH3938 and YH3945 specifically inhibit actions of oncogenic H-Ras through inhibition of its farnesylation, that YH3938 also inhibits N-Ras activity in a dose-dependent manner, and that these drugs have no effect on oncogenic K-Ras activity.
Mutated forms of ras are found in many human tumors and the rate of incidence is significantly higher in colon and pancreatic cancers. The protein product from the ras oncogene is a small G-protein, $p21^{ras}{\;}(Ras)$ that is known to playa key role in the signal transduction cascade and cell differentiation and proliferation. Mutated Ras is unable to regulate itself and remains constantly activated, leading to uncontrolled cell growth. The function of Ras in signal transduction requires its location near the growth factor receptor at the cell membrane. However, Ras does not have a transmembrane domain. Ras requires farnesylation to increase its hydrophobicity and subsequent plasma membrane association for its transforming activity. This key post-translational modification is catalyzed by the enzyme Ras farnesyltransferase (FTase), which transfers a farnesyl group from farnesylpyrophosphate to the C-terminal cysteine of the Ras protein. The requirement has focused attention on FTase as a target for therapeutic intervention. Selective inhibition of FTase will prevent Ras protein from association with the plasma membrane, leading to a disruption of oncogenic Ras function.
Among the effector molecules connected with the group of cell surface receptors, Ras proteins have essential roles in transducing extracellular signals to diverse intracellular events, by controlling the activities of multiple signaling pathways. For over 20 years since the discovery of Ras proteins, an enormous amount of knowledge has been accumulated as to how the proteins function in overlapping or distinct fashions. The signaling networks they regulate are very complex due to their multiple functions and cross-talks. Much attention has been paid to the pathological role of Ras in tumorigenesis. In particular, human tumors very frequently express Ras proteins constitutively activated by point mutations. Up to date, three members of the Ras family have been identified, namely H-Ras, K-Ras (A and B), and N-Ras. Although these Ras isoforms function in similar ways, many evidences also support the distinct molecular function of each Ras protein. This review summarizes differential functions of Ras and highlights the current view of the distinct signaling network regulated by each Ras for its contribution to the malignant phenotypic conversion of breast epithelial cells. Four issues are addressed in this review: (1) Ras proteins, (2) membrane localization of Ras, (3) effector molecules downstream of Ras, (4) Ras signaling in invasion. In spite of the accumulation of information on the differential functions of Ras, much more remains to be elucidated to understand the Ras-mediated molecular events of malignant phenotypic conversion of cells in a greater detail.
Mutations in codon 12, 13 and 61 of one of the three ras genes, H-ras, K-ras and N-ras, convert these genes into active oncogenes. The presence of H-ras gene mutations have important prognostic implications in various cancers. In this study, the H-ras gene mutations were investigated by two-step PCRRFLP in patients with bladder and stomach cancer. For the control experiments, T24 and SK2 cell lines were used. In a total of 36 bladder cancer patient cases, five (13.9%) mutations were found by this method. Of these, point 12 mutations were two (5.6%) cases and point 61 mutations were three (8.3%) cases. On the other hand, H-ras mutation was not found in 29 cases of stomach cancer. The results of the mutated H-ras gene confirmed by direct sequencing analysis were correlated well with PCR analysis. From the sensitivity test, the H-ras mutation was found to have about 0.2% of mutated DNA mingled in normal DNA. In conclusion, the H-ras mutation has a higher clinical Significance in bladder cancer than stomach cancer. Moreover the two-step PCR-RFLP method is sensitive, rapid and relatively simple for clinical work in detecting H-ras point mutations.
Kezlya, Elena;Glushchenko, Anton;Kociolek, John Patrick;Maltsev, Yevhen;Martynenko, Nikita;Genkal, Sergei;Kulikovskiy, Maxim
ALGAE
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v.35
no.4
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pp.325-335
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2020
A new diatom species, Mayamaea vietnamica sp. nov., is described from Cát Tiên National Park in Vietnam. This species was discovered and described from soil samples. Algae from soil ecosystems in Vietnam are almost unknown. The new species is described on the basis of an integrated approach with molecular and morphological data, and comparison with similar species. In terms of molecular data, 18S rDNA (including V4 domain), and partial rbcL plastid genes show M. vietnamica sp. nov. is most closely related to M. terrestris N. Abarca and R. Jahn, and together they form a monophyletic group relative to other members of the genus. M. vietnamica sp. nov. differs from other species in the genus by the number of striae and areolae in 10 ㎛, number of areolae per stria, as well as shape and presence or absence of axial and central areas.
Cell adhesion plays an important role in the differentiation of the morphogenesis and the trophectoderm epithelium of the blastocyst. In the porcine embryo, CDH1 mediated adhesion initiates at compaction before blastocyst formation, regulated post-translationally via protein kinase C and other signaling molecules. Here we focus on muscle RAS oncogene homolog (M-RAS), which is the closest relative to the RAS related proteins and shares most regulatory and effector interactions. To characterize the effects of M-RAS on embryo compaction, we used gain- and loss-of-function strategies in porcine embryos, in which M-RAS gene structure and protein sequence are conserved. We showed that knockdown of M-RAS in zygotes reduced embryo development abilities and CDH1 expression. Moreover, the phosphorylation of ERK was also decreased in M-RAS KD embryos. Overexpression of M-RAS allows M-RAS KD embryos to rescue the embryo compaction and blastocyst formation. Collectively, these results highlight novel conserved and multiple effects of M-RAS during porcine embryo development.
The Ras superfamily of small G-proteins acts as a molecular switch on the intracellular signaling pathway. Upon ligand stimulation, inactive GTPases (Ras-GDP) are activated (Ras-GTP) using guanine nucleotide exchange factor (GEF) and transmit signals to their downstream effectors. Following signal transmission, active Ras-GTP become inactive Ras-GDP and cease signaling. However, the intrinsic GTPase activity of Ras proteins is weak, requiring Ras GTPase-activating protein (RasGAP) to efficiently convert RAS-GTP to Ras-GDP. Since deregulation of the Ras pathway is found in nearly 30% of all human cancers, it might be useful to clarify the structural and physiological roles of Ras GTPases. Recently, RasGAP has emerged as a new class of tumor-suppressor protein and a potential therapeutic target for cancer. Therefore, it is important to clarify the physiological roles of the individual GAPs in human diseases. The first RasGAP discovered was RASA1, also known as p120 RasGAP. RASA1 is widely expressed, independent of cell type and tissue distribution. Subsequently, neurofibromatosis type 1 (NF1) was discovered. The remaining GAPs are affiliated with the GAP1 and synaptic GAP (SynGAP) families. There are more than 170 Ras GTPases and 14 Ras GAP members in the human genome. This review focused on the current understanding of Ras GTPase and RasGAP in human diseases, including cancers.
The matrix metalloproteinases (MMPs) are members of a unique family of proteolytic enzymes that degrade components of the extracellular matrix. Significant evidence has accumulated to directly implicate members of the MMPs in tumor invasion and metastasis formation. To investigate the correlation between ras oncogene and MMP gene expression in various tumor cells, we detected mRNAs for the ras, MMP-2 and MMP-9 (72 kD and 92 kD type IV collagenases, respectively) genes in nine human tumor cell lines. The ras gene was expressed in seven cell lines; MMP-2 in three; MMP-9 in two cell lines tested. There was no direct correlation between the ras oncogene and MMP expression. A clear difference in the mRNA expression between MMP-2 and MMP-9 was observed among the cell lines. As an approach to study the effect of the ras oncogene on metastasis, we examined the expressions of MMP-2 and MMP-9 in HT1080 cells transfected with the v-H-ras gene. MMP-9 expression was Significantly enhanced in the ras-transfected HT1080 cells compared with the nontransfectants while ras transfection did not affect the expression of MMP-2. These results suggest the possible inducing effect of the ras oncogene on the metastasis by activation of the MMP-9 gene in HT1080.
To analyze the growth, proliferation, apoptosis, invasiveness and chemotherapy sensitivity of EC9706 cells after K-Ras gene silencing, an expression carrier pSilencer-siK-Ras was constructed, and the EC9706 cell line was transfected using a liposome technique. Six groups were established: Control, siRNA NC (transfected with empty vector pSilencer2.1); Ras siRNA (transfected with pSilencer-siK-Ras2); Paclitaxel; Paclitaxel + siRNA NC; and Ras siRNA + Paclitaxel. After the treatment, RT-PCR, Western blotting, MTT assay, flow cytometry and the Transwell technique were used to assess expression of K-Ras mRNA and protein in EC9706 cells, as well as cell growth, proliferation, apoptosis and invasiveness. The effect of Paclitaxel chemotherapy was also tested. pSilencer-siK-Ras2 effectively down-regulated expression of K-Ras mRNA and protein in EC9706 cells, growth being significantly inhibited. Flow cytometry indicated obvious apoptosis of cells in the experimental group, with arrest in the G1 phase; cell migration ability was also reduced. After pSilencer-siK-Ras2 transfection or the addition of Paclitaxel, EC9706 cells were suppressed to different extents; the suppressive effect was strengthened by combined treatment. The results suggested that RNAi-induced K-Ras gene silencing could enhance chemotherapy sensitivity of esophageal cancer.
The existence of the Ras-independent signal transduction pathway of insulin leading to DNA synthesis was investigated in Rat-1 fibroblasts overexpressing human insulin receptor (HIRc-B) using the single-cell microinjection technique. Microinjection of a dominant-negative mutant $Ras^{N17}$ protein into quiescent HIRc-B cells inhibited the DNA synthesis stimulated by insulin. Microinjection of oncogenic H-$Ras^{V12}$ protein ($H-Ras^{V12}$) (0.1 mg/ml) induced DNA synthesis by 35%, whereas that of control-injected IgG was induced by 20%. When the marginal amount of oncogenic H-$Ras^{V12}$ protein was coinjected with a dominant-negative mutant of the H-Ras protein ($Ras^{N17}$), DNA synthesis was 35% and 74% in the absence and presence of insulin, respectively. This full recovery of DNA synthesis by insulin suggests the existence of the Ras-independent pathway. The same recovery was observed in the cells coinjected with either H-$Ras^{V12}$ plus H-$Ras^{N17}$ plus SH2 domain of the p85 subunit of PI3-kinase ($p85^{SH2-N}$) or H-$Ras^{V12}$ plus H-$Ras^{N17}$ plus interfering anti-Shc antibody. When co-injected with a dominant-negative H-$Ras^{N17}$, the DNA synthesis induced by the Ras-independent pathway was blocked. These results indicate that the Ras-independent pathway of insulin leading to DNA synthesis exists, bypassing the p85 of PI3-kinase and Shc protein, and requires Rac1 protein.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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