A Korean traditional sweet rice drink "Sikye" was produced from the raw material of 20% of rice and 4% malt supplemented with 2l of tap water, by incubating the mixture at 6$0^{\circ}C$ for 7 hours. The product was found to contain 11.01% of maltose, 5.31% of isomaltooligosaccharides, 1.75% of maltotriose and 0.28% of glucose. Maltose, maltotriose and isomaltooligosaccharides in Sikye were seperated by ethanol (3 volume) precipitation repeated three times, followed by gel chromatography of Toyopearl HW-40S. 1H-NMR analysis revealed that the products of G2 and G3 size had only $\alpha$-1, 4-glucosidic linkage. but isomaltooligosaccharides showed both signal of $\alpha$-1, 4 and $\alpha$-1, 6-glucosidic linkage with its estimation ratio of 5:1. Isomaltooligosaccharides were hydrolyzed to produce maltooligosaccharide series from maltose to maltohexaose by pullulanase. These results, suggest that isomaltooligosaccharides were constructed by maltohexaose main chain with maltose or maltotriose and maltotetraose side chain.ide chain.
The effects of dipping syrups prepared with isomaltooligosaccharides on the characteristics of Yackwa were investigated. The dipping syrups were prepared replacing sucrose with 0, 25 and 50% isomaltooligosaccharide. Physical and sensory characteristics of Yackwa were evaluated. Isomaltooligosaccharides increased dehydration rate and increased absorption rate of dipping syrups. Yackwas dipping in the syrup containing isomaltooligosaccharides were more acceptable than those with sucrose syrup. The acceptability was significantly correlated with shinness(p<.01), moistness(p<.05), adhesiveness(p<.05), cohesiveness(p<.01), roasted taste(p<.0l) and sweetness(p<.05). Therefore, isomaltooligosaccharides might be a good alternative for sucrose in making dipping syrup of Yackwa.
A novel thermostable $\alpha$-glucosidase (TtGluA) from Thermoanaerobacter tengcongensis MB4 was successfully expressed in E. coli and characterized. The TtgluA gene contained 2,253 bp, which encodes 750 amino acids. The native TtGluA was a trimer with monomer molecular mass of 89 kDa shown by SDS-PAGE. The purified recombinant enzyme showed hydrolytic activity on maltooligosaccharides, p-nitrophenyl-$\alpha$-D-glucopyranide, and dextrin with an exotype cleavage manner. TtGluA showed preference for short-chain maltooligosaccharides and the highest specific activity for maltose of 3.26 units/mg. Maximal activity was observed at $60^{\circ}C$ and pH 5.5. The half-life was 2 h at $60^{\circ}C$. The enzyme showed good tolerance to urea and SDS but was inhibited by Tris. When maltose with the concentration over 50 mM was used as substrate, TtGluA was also capable of catalyzing transglycosylation to produce $\alpha$-1,4-linked maltotriose and $\alpha$-1,6-linked isomaltooligosaccharides. More importantly, TtGluA showed exclusive regiospecificity with high yield to produce $\alpha$-1,6-linked isomaltooligosaccharides when the reaction time extended to more than 10 h.
The research was undertaken to characterize the reaction mode of transglucosidase (TG) from Aspergillus niger for the production of isomaltooligosaccharides such as isomaltose, panose and isomaltotriose. TG hydrolyzed maltose to glucose units and produced panose and glucose by transglucosylation. TG hydrolyzed panose to maltose and glucose when panose was used as an initial substrate. The reaction patterns of products when isomaltose, isomaltotriose or isomaltotetraose were used as substrates were different from the case when maltose was used as a substrate. Maltotriose and maltose showed the same formation pattern of products. TG also produced isomaltooligosaccharides from maltooligosaccharides. The production of panote by TG from maltose was mathematically described by Michaelis-Menten kinetics. The kinetic constants, $V_{max}$ (the maximum velocity) and $K_m$ (Michaelis constant), were estimated by Lineweaver-Burk plot to be 400 M/min and 21.4 mM, respectively.
Goffin, Dorothee;Bystricky, Peter;Shashkov, Alexander S.;Lynch, Mary;Hanon, Emilien;Paquot, Michel;Savage, Angela V.
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.30
no.11
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pp.2535-2541
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2009
Prebiotic isomaltooligosaccharide preparations contain $\alpha$-D-glucooligosaccharides comprising isomaltooligosaccharides (IMOs) and non-prebiotic maltooligosaccharides (MOs). They are both glucose oligosaccharides characterized by their degree of polymerization (DP) value (from 2 to $\sim$10), linkages types and positions (IMOs: $\alpha$-(1$\rightarrow$2, 3, 6 and in a lower proportion internal 1$\rightarrow$4) linkages, MOs: α-(1$\rightarrow$4) linkages). Their structure is the key factor for their prebiotic potential. In order to determine and elucidate the exact structure of unknown IMOs and MOs, unambiguous assignments of $^{13}C$ and $^1H$ chemical shifts of commercial standards, representative of IMOs and MOs diversity, have been determined using optimized standard one and two-dimensional experiments such as $^1H$ NMR, $^{13}C$ NMR, APT and ${^1}H-{^1}H$ COSY, TOCSY, NOESY and <$^1H-{^{13}}C$ heteronuclear HSQC, HSQC-TOCSY, and HMBC. Here we point out the differential effect of substitution by a glucose residue at different positions on chemical shifts of anomeric as well as ring carbons together with the effect of the reducing end configuration for low DP oligosaccharides and diasteroisotopic effect for H-6 protons. From this study, structural $^{13}C$ specific spectral features can be identified as tools for structural analysis of isomaltooligosaccharides.
Isomaltooligosaccharides in Sikhye were digested with enzyme (30unit/ml) of $\alpha$-amylase, $\alpha$-glucosidase and glucoamylase from Aspergillus awamori, sweet potato $\beta$-amylase and human salivary $\alpha$-amylase at 37$^{\circ}C$ for 1 hour, respectively. These amylases acted on these saccharides to give hydrolysis products with less than 20% of degree of hydrolysis, except the case of glucoamylase with 62% of high degree of hydrolysis. $\alpha$-Glucosidase plus human salivary $\alpha$-amylase hydrolyzed it to attain the hydrolysis value up to 25%, but further increment of hydrolysis was not observed. Rice residue in Sikhye has similar sugar composition and structure, judging from sugar analyses by the enzymatic hydrolysis. These results suggest that isomaltooligosaccharides and rice residue in Sikhye can be a growth factor for Bifidobacterium and dietary fiber which is useful for human health.
Isomaltooligosaccharides (IMOs) have good prebiotic effects, and long IMOs (LIMOs) with a degree of polymerization (DP) of 7 or above show improved effects. However, they are not yet commercially available, and require costly enzymes and processes for production. The N-terminal region of the thermostable Thermoanaerobacter thermocopriae cycloisomaltooligosaccharide glucanotransferase (TtCITase) shows cyclic isomaltooligosaccharide (CI)-producing activity owing to a catalytic domain of glycoside hydrolase (GH) family 66 and carbohydrate-binding module (CBM) 35. In the present study, we elucidated the activity of the C-terminal region of TtCITase (TtCITase-C; Met740-Phe1,559), including a CBM35-like region and the GH family 15 domain. The domain was successfully cloned, expressed, and purified as a single protein with a molecular mass of 115 kDa. TtCITase-C exhibited optimal activity at 40℃ and pH 5.5, and retained 100% activity at pH 5.5 after 18-h incubation. TtCITase-C synthesized α-1,6 glucosyl products with over seven degrees of polymerization (DP) by an α-1,6 glucosyl transfer reaction from maltopentaose, isomaltopentaose, or commercialized maltodextrins as substrates. These results indicate that TtCITase-C could be used for the production of α-1,6 glucosyl oligosaccharides with over DP7 (LIMOs) in a more cost-effective manner, without requiring cyclodextran.
Lee, Jae-Eun;Kim, In-Hwan;Jung, Jong-Hyun;Seo, Dong-Ho;Kang, Sung-Gyun;Holden, James F.;Cha, Jaeho;Park, Cheon-Seok
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.8
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pp.1060-1069
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2013
Genome organization near cyclomaltodextrinases (CDases) was analyzed and compared for four different hyperthermophilic archaea: Thermococcus, Pyrococcus, Staphylothermus, and Thermofilum. A gene (CL1_0884) encoding a putative CDase from Thermococcus sp. CL1 (tccd) was cloned and expressed in Escherichia coli. TcCD was confirmed to be highly thermostable, with optimal activity at $85^{\circ}C$. The melting temperature of TcCD was determined to be $93^{\circ}C$ by both differential scanning calorimetry and differential scanning fluorimetry. A size-exclusion chromatography experiment showed that TcCD exists as a monomer. TcCD preferentially hydrolyzed ${\alpha}$-cyclodextrin (${\alpha}$-CD), and at the initial stage catalyzed a ring-opening reaction by cleaving one ${\alpha}$-1,4-glycosidic linkage of the CD ring to produce the corresponding single maltooligosaccharide. Furthermore, TcCD could hydrolyze branched CDs (G1-${\alpha}$-CD, G1-${\beta}$-CD, and G2-${\beta}$-CD) to yield significant amounts (45%, 40%, and 46%) of isomaltooligosaccharides (panose and $6^2$-${\alpha}$-maltosylmaltose) in addition to glucose and maltose. This enzyme is one of the most thermostable maltogenic amylases reported, and might be of potential value in the production of isomaltooligosaccharides in the food industry.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.30
no.2
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pp.261-265
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2001
Effects of isomaltooligosaccharides on the characteristics of yackwa were investigated. Yackwa was prepared by replacing honey with 0, 25, 50% isomoltooligosaccharide. Isomaltooligosaccharide decreased reducing sugar contents and increased crude fat contents of yackwa. The exterior color of yackwa prepared with isomoltooligosaccharide showed lighter, less reddish and yellowish. Addition of isomaltooligosaccharides made yackwa lighter, rougher, more brittle and softer as perceived by panels. Yackwa prepared by replacing honey with 25% isomaltooligosaccharide showed good acceptability. The acceptability was significantly correlated with hardness, aroma and greasiness. The textural characteristics including hardness, cohesiveness and gumminess were decreased by replacing honey with isomaltooligosaccharide.
A rapid and simple analytical method for the determination of 9 isomaltooligosaccharides (IMO) species in yoghurts was developed using dispersive solid phase extraction (dSPE) clean-up technic and high performance liquid chromatography with evaporative light-scattering detector (HPLC-ELSD). In this study, 9 IMO were extracted from samples simply with chemical reagent using ISO22662 IDF198 method and additional dSPE clean-up. The optimum instrument conditions for the determination were used carbohydrate ES $5{\mu}$ column with gradient elution of water and acetonitrile and ELS detector. The linearity of this method was expressed as the correlation coefficient ($r^2$), the results of IMO 9 species were shown in 0.9999. LOD and LOQ were respectively 7.9-22.1 mg/kg, 25.9-72.8 mg/kg. The accuracy of intra- and inter-day measurements were in the range from $84.3{\pm}4.5$ to $104.9{\pm}6.5%$, and the preceision of the intra- and inter-day measurements were in the range from 0.8 to 7.7%. The recoveries were from $84.3{\pm}4.5$ to $104.9{\pm}6.5%$. The determination results of IMO 9 species for the 9 yoghurts circulated in the market were in the range from $0.317{\pm}0.007$ to $1.624{\pm}0.050$ g/100 g. The newly developed method is appropriate for the determination of IMO in yoghurts, is a rapid and simple method with excellent resolution in compared with previous method.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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