Cellular uptake of double-stranded DNA (dsDNA) triggers strong innate immune responses via activation of NF-${\kappa}B$ transcription factor. However, the detailed mechanism of dsDNA-mediated innate immune response remains yet to be elucidated. Here, we show that the expression of tazarotene-induced gene 3 (TIG3) is dramatically induced by dsDNA stimulation, and the siRNA-mediated down-regulation of TIG3 mRNA results in significant suppression of dsDNA-triggered cytokine expression. Because TIG3 has been previously shown to physically interact with transglutaminase (TG) 1 to activate TG activity, and TG2 has been shown to induce NF-${\kappa}B$ activity by inducing $I{\kappa}B{\alpha}$ polymerization, we tested whether TG also plays a role in dsDNA-mediated innate immune response. Pre-treatment of TG inhibitors dramatically reduces dsDNA-triggered cytokine induction. We also show that, in HeLa cells, TG2 is the major TG, and TIG3 physically interacts with TG2. Combined together, our results suggest a novel mechanism of dsDNA-triggered innate immune response which is critically dependent on TIG3 and TG2.
Peroxidasin is a unique member of peroxidase family in that it has extracellular matrix (ECM) motif as well as peroxidase activity. Peroxidasins are involved in consolidation the extracellular matrix during development and in innate immune defense. C. elegans has two functional peroxidasins, PXN-1 and PXN-2, and PXN-2 is known to contribute to innate immune system. However, it is not clear of PXN-1 function in innate immune system. Therefore, this study is focused on the function of PXN-1 and the relationship between PXN-1 and PXN-2 in innate defense system in C. elegans. When pxn-1 was knocked down by RNAi, the worm turned to be more resistant to pathogens, Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa and the enhanced resistance was abolished in pxn-1pxn-2 double knock down. By contrast, pxn-2 knock down showed stronger susceptibility to the pathogens. These results suggest that pxn-2 can contribute the pathogen resistance and pxn-1 can suppress the pathogen resistance. To confirm the idea, overexpression experiments were performed. Overexpression of pxn-1 showed more susceptible to pathogens compared to the control and double overexpression of pxn-1pxn-2 overcame the susceptibility of pxn-1 overexpression to the pathogens. On the other hand, pxn-2 overexpression made the worm more resistant to the pathogens and the resistance was maintained in pxn-1pxn-2 double overexpression. The comparison of the susceptibilities to the bacterial pathogens in above mentioned constructs suggests that PXN-1 suppress the function of PXN-2 in defense against bacterial pathogens in Caenorhabditis elegans.
Objectives: This study was designed to examine immuno-modulatory effects of Evodia Rutaecarpine by activating innate immune system and inhibiting inflammation. Methods: First, Cell cytotoxicity was examined with 4T1 breast carcinoma and TG-induced macrophage. To investigate activating innate immune system of Evodiamine Rutacarpine Extract (ERE) on macrophage, we tested tumor necrosis factor-alpha (TNF-α), interleukin-12 (IL-12), and interleukin-6 (IL-6). In addition, TNF-α and nitric oxide (NO) induced by lipopolysaccharide (LPS) were measured after treating with ERE to observe innate immune modulating effect of ERE on RAW 264.7 cell. Also, mitogen-activated protein kinase (MAPK) and nuclear factor κB (NF-κB) were examined by western blot analysis. Results: In cytotoxicity analysis, ERE significantly affected tumor cell growth above specific concentration. Also, ERE significantly affected macrophage growth above specific concetration. As compared with the control group, the production of TNF-α, IL-12 and IL-6 were increased in TG-induced macrophage. As compared with the control group, TNF-α and IL-6 were significantly up-regulated in RAW 264.7 cell. The expression of TNF-α and NO induced by LPS after treating ERE was significantly decreased compared with control group. In addition, We observed ERE inhibited the phosphorylation levels of p-extracellular signal-regulated kinase (p-ERK), p-Jun N-terminal kinase (p-JNK), and p-p38 in western blotting by treating ERE on RAW 264.7 cell. Conclusions: ERE seems to have considerable impact on the anti-cancer effect by activation of innate immune system and inflammation control.
Kim, Chan-Hee;Park, Ji-Won;Ha, Nam-Chul;Kang, Hee-Jung;Lee, Bok-Luel
BMB Reports
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제41권2호
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pp.93-101
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2008
The major cell wall components of bacteria are lipopolysaccharide, peptidoglycan, and teichoic acid. These molecules are known to trigger strong innate immune responses in the host. The molecular mechanisms by which the host recognizes the peptidoglycan of Gram-positive bacteria and amplifies this peptidoglycan recognition signals to mount an immune response remain largely unclear. Recent, elegant genetic and biochemical studies are revealing details of the molecular recognition mechanism and the signalling pathways triggered by bacterial peptidoglycan. Here we review recent progress in elucidating the molecular details of peptidoglycan recognition and its signalling pathways in insects. We also attempt to evaluate the importance of this issue for understanding innate immunity.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Supplementation with n-3 polyunsaturated fatty acids (PUFAs) has been shown to generally decrease levels of innate immune markers and inflammatory cytokines, but the specific associations between blood levels of PUFAs and those of innate immune markers have not been investigated. Thus, the present study was conducted to test the hypothesis that innate immune markers as well as cytokines are negatively associated with n-3 PUFAs but positively associated with n-6 PUFAs in healthy adults. MATERIALS/METHODS: One hundred sixty-five healthy Korean adults aged 25-70 years old were included in this cross-sectional study. RESULTS: Serum levels of n-3 PUFAs, such as 18:3n3, 20:5n3, 22:5n3, and 22:6n3 were negatively correlated with eosinophil and basophil counts and $TNF-{\alpha}$, $IFN-{\gamma}$, IL-4, and IL-10 levels. Multivariate analysis also showed that serum levels of n-3 PUFAs were negatively associated with monocyte, eosinophil, and basophil counts and $TNF-{\alpha}$, $IFN-{\gamma}$, IL-4, and IL-12 levels. Additionally, the ratio of 20:4n6 to 20:5n3 was positively correlated with eosinophil counts and associated with $TNF-{\alpha}$, $IFN-{\gamma}$, and IL-4 levels. However, NK cell activity was not associated with serum fatty acid composition. CONCLUSIONS: Innate immune markers such as eosinophil, monocyte, and basophil counts were inversely associated with serum levels of n-3 PUFAs, but were positively associated with the 20:4n6/20:5n3 ratio in this population.
The innate immune response which is seen as the initial defense mechanism induced upon foreign invasion has been well documented in higher vertebrates. This has also been observed in fish infected with NNV. However, the fish immune system based on fully established genome project has not been fully elucidated. Therefore, in this review, we hope to correlate NNV infection in fish that has devastated the aquaculture industry, to its host immune system. Further, we discuss the potential preventive measures in overcoming the widespread of this neurodisease.
In contrast to animals, plants do not have a circulatory system as well as mobile immune cells that allow them to protect themselves against pathogens. Instead, plants exclusively depend on the innate immune system to defend against pathogens. As typically observed in the animal innate immunity, plant immune responses are composed of pathogen detection, defense signaling which includes transcriptional reprogramming, and secretion of antimicrobial compounds. Although knowledge on recognition and subsequent signaling of pathogen-derived molecules called elicitors is now expanding, the mechanisms of how these immune molecules are excreted are yet poorly understood. Therefore, current understandings of how plants secrete defense products especially via exocytosis will be discussed in this review.
Lee, Hye Eun;Yang, Gabsik;Choi, Jae Sue;Lee, Joo Young
Toxicological Research
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제33권4호
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pp.283-290
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2017
The host immune system is the first line of host defense, consisting mainly of innate and adaptive immunity. Immunity must be maintained, orchestrated, and harmonized, since overactivation of immune responses can lead to inflammation and autoimmune diseases, while immune deficiency can lead to infectious diseases. We investigated the regulation of innate and adaptive immune cell activation by Artemisia capillaris and its components (ursolic acid, hyperoside, scopoletin, and scopolin). Macrophage phagocytic activity was determined using fluorescently labeled Escherichia coli, as an indicator of innate immune activation. Concanavalin A (ConA)- and lipopolysaccharide (LPS)-induced splenocyte proliferation was analyzed as surrogate markers for cellular and humoral adaptive immunity, respectively. Neither A. capillaris water extract (WAC) nor ethanol extract (EAC) greatly inhibited macrophage phagocytic activity. In contrast, WAC suppressed ConA- and LPS-induced proliferation of primary mouse splenocytes in a dose-dependent manner. Similarly, EAC inhibited ConA- and LPS-induced splenocyte proliferation. Oral administration of WAC in mice decreased ConA- and LPS-induced splenocyte proliferation, while that of EAC suppressed LPS-induced splenocyte proliferation. Repeated administration of WAC in mice inhibited ConA- and LPS-induced splenocyte proliferation. Ursolic acid, scopoletin, and scopolin reduced ConA- and LPS-induced primary mouse splenocyte proliferation, while hyperoside did not show such activity. These results indicate that A. capillaris and its components, ursolic acid, scopoletin, and scopolin, suppress ConA- and LPS-induced adaptive immune cell activation. The results suggest that A. capillaris is useful as a regulator of adaptive immunity for diseases involving excessive immune response activation.
Hot-water($100^{\circ}C$) and cold-water($4^{\circ}C$) extracts of Taraxacum officinale root were assessed for the effects of innate and adaptive immune responses in mice. Hot water extracts(TO-100) and cold water extracts(TO-4) did not affect the viability of macrophages at concentrations below to 18 mg/ml and 8 mg/ml, respectively. The thioglycollate-induced macrophages cultured with TO-100 and TO-4 produced a significantly higher quantity of various cytokines, such as IL-6 and IL-12, than those treated with medium. This shows that the extracts potently stimulated the innate immune response. When mice were subcutaneously immunized(sc) with OVA+FIA(Freund's incomplete adjuvant)-emulsified TO-100, TO-100 did not affect the production of IgE, but enhanced the production of IgG1, IgG2a and IgG2b. The culture supernatant obtained from the splenocytes of mice treated with OVA+FIA-emulsified TO-100 also evidenced elevated levels of both OVA-specific Th1-type(IFN-$\gamma$) and Th2-type cytokines(IL-4, IL-6 and IL-10). These results suggested that TO-100 can modulate the immune responses to allergens in mice.
Insects mount a robust innate immune response against a wide array of microbial pathogens. The hallmark of the Drosophila humoral immune response is the rapid production of anti-microbial peptides in the fat body and their release into the circulation. Two recognition and signaling cascades regulate expression of these antimicrobial peptide genes. The Toll pathway is activated by fungal and many Gram-positive bacterial infections, whereas the immune deficiency (IMD) pathway responds to Gram-negative bacteria. Recent work has shown that the intensity and duration of the Drosophila immune response is tightly regulated. As in mammals, hyperactivated immune responses are detrimental, and the proper down-modulation of immunity is critical for protective immunity and health. In order to keep the immune response properly modulated, the Toll and IMD pathways are controlled at multiple levels by a series of negative regulators. In this review, we focus on recent advances identifying and characterizing the negative regulators of these pathways.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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