Modeling the growth kinetics of lactic acid bacteria (LAB), one of the most valuable microbial groups in the food industry, has been actively pursued in order to understand, control, and optimize the relevant fermentation processes. Most modeling approaches have focused on the development of single population models. Primary single population models provide fundamental kinetic information on the proliferation of a primary LAB species, the effects of biological factors on cell inhibition, and the metabolic reactions associated with cell growth. Secondary single population models can evaluate the dependence of primary model parameters, such as the maximum specific growth rate of LAB, on the initial external environmental conditions. This review elucidates some of the most important single population models that are conveniently applicable to the LAB fermentation analyses. Also, a well-defined mixed population model is presented as a valuable tool for assessing potential microbial interactions during fermentation with multiple LAB species.
An extensive investigation was carried out to describe the kinetics of cell growth, substrate consumption, and product formation in the batch fermentation using starch as substrate. Evaluation of intrinsic kinetic parameters was carried out using a best-fit unstructured model. A nonlinear regression technique was applied for computational purpose. The Andrew's model showed a comparatively better $R^2$ value among all tested models. The values of specific growth rate (${\mu}_{max}$), saturation constant ($K_S$), inhibition constant ($K_I$), and $Y_{X/S}$ were found to be 0.109 $h^{-1}$, 11.1 g/l, 0.012 g/l, and 1.003, respectively. The Leudeking-Piret model was used to study the product formation kinetics and the process was found to be growth-associated. The growth-associated constant (${\alpha}$) for protease production was sensitive to substrate concentration. Its value was fairly constant up to a substrate concentration of 30.8 g/l, and then decreased.
The pH dependence of the kinetic parameters of mutant O-acetylserine sulfhydrylase (OASS) from Salmonella typhimurium LT-2 has been determined in order to obtain information on the chemical mechanism. The initial velocity pattern obtained by varying the concentrations of OAS at several fixed concentrations of TNB, shows an intersection on the left of the ordinate at pH 7.0, indicating that the kinetic mechanism is a sequential mechanism in which substrate inhibition by OAS is observed while the wild type enzyme showed a ping pong mechanism. The values of $V/E_t$, $V/K_{OAS}E_{t}$ and $V/K_{TNB}E_{t}$ decreased by about 68%, 14% and 16% as compared with the wild type enzyme. The $V/K_{OAS}E_{t}$ is a pK of 6.5 on the acid side of the pH profile, and the $V/K_{TNB}$ is pH independent. As compared with the wild type enzyme, the pKs in the V/K profiles are shifted, reflecting that binding of the cofactor in free E:OAS is less asymmetric.
The simultaneous saccharification and fermentation (SSF) process consists of concurrent enzymatic saccharification and fermentation. In the present cybernetic model, the saccharification process, which is based on the modified Michaelis-Menten kinetics and enzyme inhibition kinetics, was combined with the fermentation process, which is based on the Monod equation. The cybernetic modeling approach postulates that cells adapt to utilize the limited resources available to them in an optimal way. The cybernetic modeling was suitable for describing sequential growth on multiple substrates by Brettanomyces custersii, which is a glucose- and cellobiose-fermenting yeast. The proposed model was able to elucidate the SSF process in a systematic manner, and the performance was verified by previously published data.
The transport of spermidine into a cyanobacterium, Synechocystis sp. pec 6803, was characterized by measuring the uptake of $^{14}C$-spermidine. Spermidine transport was shown to be saturable with an apparent affinity constant ($K_m$) value of $67{\mu}M$ and a maximal velocity ($V_{max}$) value of 0.45 nmol/min/mg protein. Spermidine uptake was pH-dependent with the pH optimum being 8.0. The competition experiment showed strong inhibition of spermidine uptake by putrescine and spermine, whereas amino acids were hardly inhibitory. The inhibition kinetics of spermidine transport by putrescine and spermine was found to be noncompetitive with $K_i$ values of 292 and $432{\mu}M$, respectively. The inhibition of spermidine transport by various metabolic inhibitors and ionophores suggests that spermidine uptake is energy-dependent. The diminution of cell growth was observed in cells grown at a high concentration of NaCl. Addition of a low concentration of spermidine at 0.5 mM relieved growth inhibition by salt stress. Upshift of the external osmolality generated by either NaCl or sorbitol caused an increased spermidine transport with about 30-40% increase at 10 mosmol/kg upshift.
Martins, Maria Luisa Louro;De Freitas Barbosa, Miguel Pedro;De Varennes E Mendonca, Amarilis Paula Alberti
BMB Reports
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v.35
no.2
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pp.220-227
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2002
Two aspartate aminoransferase (EC 2.6.1.1) isoenzymes (AAT-1 and AAT-2) from Lupinus albus L. cv Estoril were separated, purified, and characterized. The molecular weight, pI value, optimum pH, optimum temperature, and thermodynamic parameters for thermal inactivation of both isoenzymes were obtained. Studies of the kinetic mechanism, and the kinetics of product inhibition and high substrate concentration inhibition, were performed. The effect of some divalent ions and irreversible inhibitors on both AAT isoenzymes was also studied. Native PAGE showed a higher molecular weight for AAT-2 compared with AAT-1. AAT-1 appears to be more anionic than AAT-2, which was suggested by the anion exchange chromatography. SDS-PAGE showed a similar sub-unit molecular weight for both isoenzymes. The optimum pH (between 8,0 and 9.0) and temperature ($60-65^{\circ}C$) were similar for both isoenzymes. In the temperature range of $45-65^{\circ}C$, AAT-2 has higher thermostability than AAT-1. Both isoenzymes showed a high affinity for keto-acid substrates, as well as a higher affinity to aspartate than glutamate. Manganese ions induced an increase in both AAT isoenzymes activities, but no cooperative effect was detected. Among the inhibitors tested, hydroxylamine affected both isoenzymes activity by an irreversible inhibition mechanism.
Kim, Hak-Kyu;Hur, Won;Hong, Eok Kee;Lee, Shin-Young
Food Engineering Progress
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v.15
no.4
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pp.289-296
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2011
Twenty four fractions by solvent extraction and/or acid precipitation from fruit body and culture broth of Inonotus obliquus were prepared, and their inhibitory effect against acetylcholinesterase (AChE) was investigated. Among these fractions, acid (1 M HCl) precipitates from cell-free culture broth and fruit body exhibited the highest inhibitory effect on AChE in vitro. Acid precipitates inhibited AChE activity in a concentration-dependant manner and $IC_{50}$ values of both acid precipitates were 0.53 mg/mL. The inhibition pattern was general non-competitive inhibition. The energetic parameters were also determined by dual substrate/temperature design. Both acid precipitates increased the values of Ea, ${\Delta}H,/;{\Delta}G$ and ${\Delta}H^{\ast}$ decreasing the value of ${\Delta}S$ for AChE. The results implied that the acid precipitates from I. obliquus increased the thermodynamic barrier, leading to the breakdown of ES complex and the formation of products as inhibitory mechanism.
The tyrosinase inhibition effects of 23 marine-derived seaweeds harvested in Korea were screened to determine their potential as skin-whitening agents. Of the 23 species initially screened, the total phenolic (TP) content of brown, green, and red seaweeds were 7.62-280.11, 5.24-62.37, and 0.63-28.76 phloroglucinol equivalents (PGE) mg/g, respectively. Brown seaweed extracts exhibited much stronger inhibitory activities than green and red seaweed extracts. Among the brown seaweeds, Ecklonia cava had the highest TP content (280.11 PGE mg/g) and the strongest tyrosinase inhibitory effect with a half maximal inhibitory concentration (IC50) value of 4.38 ㎍/mL. The kinetics of tyrosinase inhibition, analyzed by Lineweaver-Burk plots, found E. cava extract to be a non-competitive inhibitor. This study's results indicated that E. cava's inhibition of tyrosinase may have potential applications in the cosmetic industry.
Tetracycline is known to be effective in eliminating periodontopathogens and have collagenolytic activity. This study was performed to observe the desorption kinetics and structural changes of tetracycline-treated barrier membranes for guided tissue regeneration. Four kinds of barrier membranes were tested : $Tefgen^{(R)}$(American Custom Medical, USA) and $Gore-Tex^{(R)}$(W.L. Gore & Associates Inc., USA) as nonresorbable membranes ; Resolut(polyglycolide & polylactide copolymer, W.L. Gore & Associates Inc., USA) and $Biomend^{(R)}$(collagen, Collatec Co., USA) as resorbable membranes. The membranes were cut into discs(diameter : 4mm) and were immersed in 5% tridodecylmethylammonium chloride(TIMAC) ethanol and air-dried. The membrane discs were absorbed with $100{\mu}g/ml tetracycline solution(pH8) for one minute and dried. For desorption kinetics, TC treated discs were immersed in phosphate buffered saline solution (PBS, pH 7.4). PBS was exchanged daily and TC concentration was measured by absorbance at 276nm on UV spectrophotometer. To measure remaining antibacterial activity, discs of 1 day to 4 weeks after desorption were placed on Mueller Hinton agar containing Bacillus cereus and incubated aerobically in $37^{\circ}C$ for twelve hours and the inhibition diameters were measured. To observe the structural change of membranes after TIMAC treatment or immersion in PBS, the membrane discs were examined under SEM. The results were as follows : 1. Total amounts of TC absorbed into membrane discs($0.7536mm^2$) were $2000{\mu}g$, $1800{\mu}g$, $2625{\mu}g$ and $2499{\mu}g$ for $Tefgen^{(R)}$, $Gore-Tex^{(R)}$, $Biomend^{(R)}$ and $Resolut^{(R)}$. 2. The concentration of TC released from barrier membrane discs was maintained over $4{\mu}g/ml$ until the fifth day in nonresorbable membranes and $Resolut^{(R)}$, but until the fourth day in $Biomend^{(R)}$, Until the ninth day in nonresorbable membranes and until the seventh day in resorbable membranes, the TC concentration was maintained over $1{mu}g/ml$. 3. The four membrane discs in the first day showed similar size of inhibition zone. One to four weeks later, the inhibition zone was much smaller in resorbable membrane discs than nonresorbable membrane discs. 4. Any structural change due to treatment of TIMAC was not observed on the nonresorbable membranes. $Resolut^{(R)}$ did not show any structural change except fibrillar loosening during immersion period, but Biomend showed destruction of membrane structure from the first week of immersion. This study indicates that tetracycline treated barrier membranes lead to the sustained release of tetracycline for over 7 days. This slow release pattern of tetracycline may contribute to the favorable clinical outcome of guided tissue regeneration.
The use of peroxidase in the nitration of phenols is gaining interest as compared with traditional chemical reactions. We investigated the kinetic characteristics of phenol nitration catalyzed by horseradish peroxidase (HRP) in an aqueous-organic biphasic system using n-butanol as the organic solvent and ${NO_2}^-$ and $H_2O_2$ as substrates. The reaction rate was mainly controlled by the reaction kinetics in the aqueous phase when appropriate agitation was used to enhance mass transfer in the biphasic system. The initial velocity of the reaction increased with increasing HRP concentration. Additionally, an increase in the substrate concentrations of phenol (0-2 mM in organic phase) or $H_2O_2$ (0-0.1 mM in aqueous phase) enhanced the nitration efficiency catalyzed by HRP. In contrast, high concentrations of organic solvent decreased the kinetic parameter $V_{max}/K_m$. No inhibition of enzyme activity was observed when the concentrations of phenol and $H_2O_2$ were at or below 10 mM and 0.1 mM, respectively. On the basis of the peroxidase catalytic mechanism, a double-substrate ping-pong kinetic model was established. The kinetic parameters were ${K_m}^{H_2O_2}=1.09mM$, ${K_m}^{PhOH}=9.45mM$, and $V_{max}=0.196mM/min$. The proposed model was well fit to the data obtained from additional independent experiments under the suggested optimal synthesis conditions. The kinetic model developed in this paper lays a foundation for further comprehensive study of enzymatic nitration kinetics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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