Kim, Jung-Hyun;Kim, Dae-Geun;Kim, Hyo-Won;Lee, Bae-Ik;Kim, Shin-Kwon;Jun, Je-cheon;Myeong, Jeong-In;Kim, Dae-Jung
Journal of Life Science
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v.27
no.10
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pp.1097-1103
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2017
For the artificial induction of the sexual maturation of Anguilla japonica, salmon pituitary extract (SPE) is continuously injected into females, and the eggs obtained from artificial sexual maturation are artificially fertilized with sperms and hatched. However, repeated injection of SPE in the abdominal cavity causes tremendous stress in females, which may prevent their complete sexual maturation and reduce the immune system function, ultimately resulting in death. In addition, the poor quality of the ovulated eggs can reduce the hatching and survival rate of larvae. In the present study, sexual maturation of females was induced by inserting an osmotic (OS) pump containing hormone analogs known to effectively induce sexual maturation into the abdominal cavity of female eels, and the effect of the OS pump on the induced sexual maturation was investigated. Our study results showed that the gonadosomatic index (GSI) was significantly higher in the fish subjected to SPE injection than those subjected to human chorionic gonadotropin (hCG), gonadotropin-releasing hormone analog (GnRHa), and methyl testosterone (MT) injections, either separately or in combination. In addition, a histological analysis showed that the oocytes in the SPE OS pump groups were more mature (entered the nuclear shift stage) than those in the other groups. These results suggest that an osmotic pump containing hormone analogs can be used to induce sexual maturation in female A. japonica artificially.
Conncxin (Cx) is an important and essential protein induction of oocyte maturation, which is present in almost all mammalian tissucs except cirulating blood cells and adult skeletal museles. In this study, goldfish Cx43 cDNA sequence is available in GenBank under the accession number AB078505. Homology analyses using the GenBank and EMBL general database searches indicated that goldfish Cx43 cDNA has a high homology with carp Cx43 (95.1% identity), zebrafish Cx43 (90.5% identity), and chicken Cx43 (81.9% identity). Goldfish Cx43 is similar to the Cx family in its general features, and all the typical Cx consensus sequences are also found. Moreover, significantly increased Cx43 transcrpts were observed in mature goldfish (GSI; 18.3-21.7) pituitary and ovary when compared with immature goldfish (GSI; 4.9-6.0). Cx43 transeripts were weakly detectrd in both liver and kidney of immature and mature goldfish. There is possible that Cx43 nctivity was relation to oocyte maturation in the goldfish.
Kim, Dae-Geun;Kim, Hyo-Won;Kim, Jung-Hyun;Lee, Bae-Ik;Hong, Sun-Mee;Min, Kwan-Sik;Myung, Jeong-In;Kim, Dae-Jung
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.50
no.6
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pp.770-776
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2017
This study investigated the effects of recombinant eel gonadotropin hormone (rJeGTH) produced in silkworms, with and without a carboxyl-terminal peptide from equine chorionic gonadotropin (eCG), on the induction of sexual maturation in female eels Anguilla japonica. Experiments were conducted both in vivo and in vitro. In in vitro trials, germinal vesicle breakdown (GVBD) induction did not significantly differ between rJeFSH and $rJeFSH{\cdot}eCG$ treatments and the control group. However, previous studies did find that rJeLH and $rJeLH{\cdot}eCG$ treatments induced GVBD in female eels. Our in vitro exploration of $estradiol-17{\beta}$ ($E_2$) levels in immature ovarian tissues revealed significantly higher $E_2$ levels in the group treated with $rJeFSH{\cdot}eCG$$1{\mu}g/mL$ than in the control group. In contrast, the in vivo experiments showed no effect of recombinant hormones on the sexual maturation of feminized eels. Previous studies and our own in vitro results have clearly shown that rJeGTH and $rJeGTH{\cdot}eCG$ have a positive effect on the sexual maturation of feminized eels. To develop the activity of rJeGTH in vivo, further studies should confirm circulation time and activity of these hormones in eels' bloodstream, modify the structure of the recombinant gene, and implement additional glycosylation.
The Induction of regeneration and maturation in the free-living gametophytes of Ecklonia stolonifera Okamura was studied at four temperatures (5, 10, 15, and $20^{\circ}C$), four levels of irradiance (5, 10, 20, and 40 ${\mu}mol\;m^{-2}s^{-1}$) and three photoperiods (14:10, 12:12, and 10:14 h L:D). Female gametophyte fragments were maintained in active regeneration without reaching sexual maturity under $5{\sim}10^{\circ}C$, 10 ${\mu}mol\;m^{-2}s^{-1}$, 10:14 h (L:D), whereas the conditions for male gametophytes were slightly different at $20^{\circ}C$, 40 ${\mu}mol\;m^{-2}s^{-1}$, 10:14 h (L:D). The sexual maturation of female and male gametophytes was facilitated at $15^{\circ}C$, 20 ${\mu}mol\;m^{-2}s^{-1}$, 14:10 h (L:D). These results provide basic information for controlling the regeneration and maturation of the free-living gametophytes for artificial seed production of E. stolonifera.
Induction of regeneration and maturation for the free-living gametophytes of Ecklonia cava Kjellman was conducted under various temperature, irradiance and photoperiod conditions. Culture conditions for female or male gametophyte fragments were 4 temperature (5, 10, 15 and $20^{\circ}C$), 4 irradiance (5, 10, 20 and $40{\mu}mol{\cdot}m^{-2}{\cdot}s^{-1}$) and 3 photoperiod (14:10, 12:12 and 10:14 h L:D). Female and male gametophyte fragments were maintained in active regeneration without reaching sexual maturity under $5{\sim}10^{\circ}C$, $5{\sim}10{\mu}mol{\cdot}m-2{\cdot}s-1$, 12:12h or 10:14h (L:D) and $15-20^{\circ}C$, $20-40{\mu}mol{\cdot}m^{-2}{\cdot}s^{-1}$, 14:10h (L:D), respectively. Sexual maturation of female and male gametophytes facilitated under $15^{\circ}C$, $20-40{\mu}mol{\cdot}m^{-2}{\cdot}s^{-1}$, 14:10h (L:D) and $5-10^{\circ}C$, $5-10{\mu}mol{\cdot}m^{-2}{\cdot}s^{-1}$, 10:14h (L:D), respectively. These results provide basic informations to control the regeneration or maturation of the free-living gametophytes for artificial seed production of E. cava.
Induction of regeneration and maturation of the free-living gametophytes of Undariopsis peterseniana (Kjellman) Miyabe et Okamura was studied at four temperatures (5, 10, 15, and $20^{\circ}C$), four levels of irradiance (5, 10, 20, and 40 ${\mu}mol$$m^{-2}\;s^{-1}$) and three photoperiods (14:10, 12:12, and 10:14 h L:D). Female gametophyte fragments were maintained in active regeneration without reaching sexual maturity under conditions of $15^{\circ}C$, 20 ${\mu}mol\;m^{-2}\;s^{-1}$, 10:14 h (L:D), whereas the conditions for male gametophytes were slightly different at $15^{\circ}C$, 20 ${\mu}mol\;m^{-2}\;s^{-1}$, 14:10 h (L:D). The sexual maturation of female and male gametophytes took place under $15^{\circ}C$, 20 ${\mu}mol\;m^{-2}\;s^{-1}$, 14:10 h (L:D) and $10^{\circ}C$, 10 ${\mu}mol\;m^{-2}\;s^{-1}$, 10:14 h (L:D), respectively. These results provide basic information for controlling the regeneration and maturation of free-living gametophytes for artificial seed production of U. peterseniana.
We have investigated the gonad index (GI), gonadal development, reproductive cycle, first sexual maturity, sex ratio, the number of spawned eggs and spawning frequency of the Manila clam, Ruditapes philippinarum. Samples were collected from the intertidal zone of Komso Bay, Korea from January to December in 1999. Monthly changes in the gonad index (GI) and condition index showed a similar pattern in the reproductive cycle. The spawning period was once a year between early June and early October, there was a spawning peak between July and August when seawater temperature was over $20^{\circ}C$. The reproductive cycle of this species can be categorized into five successive stages; early active (February to March), late active (April to May), ripe (April to August), partially spawned (June to October), and spent/inactive stage (August to March). Percentages of first sexual maturity of female and male clams of l5.1-20.0mm in shell length were $56.3\%$ and $60.0\%$, respectively, and $100\%$ for the clams >25. mm. The sex ratio of individuals >15.1 mm in shell length was about 1:1 $(\chi^2= 0.02,\;p>0.05)$. Number of the eggs released from each clam by the induction increased as the size of clam in terms of shell length increased. Mean number of the eggs from the second induction of the spawning was $75.35-84.30\%$$(average\;79.81\%)$ of the number of the eggs released in the first spawning. Our data indicated that R. philippinarum in Komso Bay has one major spawning peak with over two minor spawning, and the interval of each spawning was estimated to be approximately 15-17 (average 16.5) days.
Kim, Byoung-Hak;Moon, Tae-Seok;Park, Ki-Yeol;Jin, Young-Guk;Shin, Yun-Kyung
The Korean Journal of Malacology
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v.25
no.2
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pp.113-119
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2009
Artificial induction of maturation by heating of the hard clam, Meretrix petechiails (Lamarck) broodstock was investigated from 25 May to 30 June in 2008. We experimented maturation by keeping the breeding water temperature at 20, 25 and $30^{\circ}C$ and as the natural water temperature and found the following results. In case of the female, maturation was the quickest in the experiment group of $30^{\circ}C$ and the maturation tended to be slower as the water temperature was lower. The similar trend was displayed among the male. At experiment completion, maturation induction rate was found to be the highest at 46.0% in the experiment group of $30^{\circ}C$ followed by 35.0% in the experiment group of $15^{\circ}C$, 18.0% in the experiment group of natural water temperature and 12.0% in the experiment group of $20^{\circ}C$. During the period of the experiment, the survival rate was of 90% or more in all groups.
Reproductive cycle, the condition index, sex ratio of the Pacific oysters, Crassostrea gigas were investigated by histological and morphometric data. The specimens were collected in the two oyster farms of Geoje and Namhae, Gyeongsangnam-do, Korea, from November 1995 to October 1996. Growth of shell length in two regions was similar, but growth of total weight of the oyster in Namhae was faster than that in Geoje oyster farm. The spawning periods in female and male clams were from July to October in Geoje and from June to October in Namhae oyster farm. Ripe oocytes were approximately 50 m in diameter. The reproductive cycle of in females and males in Geoje and Namhae oyster farms can be divided into five successive stages: early developing, late developing, ripe, partially spawned and spent/inactive. Monthly changes in gonad developmental phases showed somewhat different patterns between female and male clams except for the spawning period. On the whole, however, monthly changes in the gonad developmental phases showed a similar pattern in the same sex. The sex ratios of females to males in Geoje and Namhae oyster farms were not significantly different from a 1:1 sex ratio ($x^2$ = 0.55 (p > 0.05) in Geoje and $x^2$ = 0.27 ( p > 0.05) in Namhae). Artificial induction of maturation by heating of adult oysters (two-year-old) was investigated from 17 January to 18 March in 1996. Maturity at the fixed water temperature group of $20^{\circ}C$ was 80%, it showed the highest maturity of experimental groups cultured for five weeks. The survival (%) of Crassostrea gigas in the raised water temperature experimental groups (15, 20, $25^{\circ}C$) were over 98.5%, as similar to the control group (100%). But, the survival of C. gigas in the fixed water temperature experimental groups (15, 20, 25, $30^{\circ}C$) were decreased with the increase of the water temperatures. In the fixed water temperature experimental group of $30^{\circ}C$, the survival was 51.1%. Base on these results, the fixed water temperature of $20^{\circ}C$ was the best condition for artificial induction of sexual maturation.
Kim, Byoung-Hak;Min, Kwang-Sik;Lee, Seung-Ju;Park, Ki-Yeol;An, Chul-Min;Min, Byeong-Hee
The Korean Journal of Malacology
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v.22
no.2
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pp.175-182
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2006
Artificial induction of maturation by heating of the ark shell, Scapharca broughtonii (Schrenck) broodstock was investigated from 10th March to 21th May in 2004. Maturity at the fixed water temperature group of $23^{\circ}C$ was 60.5%, and it was the highest in maturity among experimental groups cultured for seven weeks. The proportions of organism surviving to start of S. broughtonii in the raised water temperature experimental groups (20 and $23^{\circ}C$) were over 90.5%, as similar to the control group (natural water temperature, 84.8%). But, the proportions of organism surviving to start of S. broughtonii in the fixed water temperature experimental groups (20, 23, and $26^{\circ}C$) were decreased with the increasing of the water temperature. In the fixed water temperature experimental groups of $26^{\circ}C$, the survival was 18.1%. Base on these results, the fixed water temperature of $20^{\circ}C$ (accumulated water temperature; $1,295^{\circ}C$) was the best condition for artificial induction of sexual maturation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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