The present study investigated the effect of treatment with nocodazole on the efficiency of cell cycle synchronization and development of mouse 4-cefl embryos. In addition, developmental ability of reconstituted embryos that received nuclei from 4-cell embryos synchronized with nocodazole at M phase was examined in vitro and in vivo. (1) When 4-cell blastorneres exposed to culture medium containing l$\mu$g /ml nocodazole for 2, 4, 6 and 8 hrs, 40% (40/10l), 75% (l19/159), 85% (87/102) and 97% (155/160) of nuclei were synchronized at M phase, respectively. (2) Treated with nocodazole for 4 hrs, the proportion of 4-cell embryos developed to blastocysts (98%, 60/61) was not significanUy different from that of the control embryos (98%, 196/201). However, the developmental ability of 4-cell embryos treated for 8 (87%, P<0.05)and 12 hrs (76%, P
Yang, Ning Jie;Seol, Dong-Won;Jo, Junghyun;Jang, Hyun Mee;Yoon, Sook-Young;Lee, Dong Ryul
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제41권1호
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pp.1-8
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2014
Objective: Estrogen related receptor ${\beta}$ (Esrrb) is a member of the orphan nuclear receptors and may regulate the expression of pluripotencyrelated genes, such as Oct4 and Nanog. Therefore, in the present study, we have developed a method for delivering exogenous ESRRB recombinant protein into embryos by using cell-penetrating peptide (CPP) conjugation and have analyzed their effect on embryonic development. Methods: Mouse oocytes and embryos were obtained from superovulated mice. The expression of Oct4 mRNA and the cell number of inner cell mass (ICM) in the in vitro-derived and in vivo-derived blastocysts were first analyzed by real time-reverse transcription-polymerase chain reaction and differential staining. Then 8-cell embryos were cultured in KSOM media with or without $2{\mu}g/mL$ CPP-ESRRB protein for 24 to 48 hours, followed by checking their integration into embryos during in vitro culture by Western blot and immunocytochemistry. Results: Expression of Oct4 and the cell number of ICM were lower in the in vitro-derived blastocysts than in the in vivo-derived ones (p<0.05). In the blastocysts derived from the CPP-ESRRB-treated group, expression of Oct4 was greater than in the non-treated groups (p<0.05). Although no difference in embryonic development was observed between the treated and non-treated groups, the cell number of ICM was greater in the CPP-ESRRB-treated group. Conclusion: Treatment of CPP-ESRRB during cultivation could increase embryos' expression of Oct4 and the formation rate of the ICM in the blastocyst. Additionally, an exogenous delivery system of CPP-conjugated protein would be a useful tool for improving embryo culture systems.
The long term goal of this research is to develop an efficient procedure for large scale production of genetically identical or cloned animals. To improve nuclear transpalntation efficiency in the rabbit, this study evaluated the age of nuclear recipient oocytes on the different steps of nuclear transplantation. The ovulated oocytes in different ages were collected from the superovulated does by flushing oviducts with Dulbecco's phosphate buffered saline(D-PBS) supplemented with 10% fetal calf serum(FCS) from 13 to 15, 17 to 20 and 23 to 26 hours after hCG injection. The denuded oocytes were used as nuclear recipient cytoplasm following enucleation by micromanipulation. The blastomeres separated from the 8-cell embryos were used as nuclear donor. The enucleated oocytes receiving a blastomere in the perivitteline space were fused in the 0.28 M mannitol solution at 1.5 kV/cm, 60 sec for three times. The fused oocytes were co-cultured with the monolayered rabbit oviductal epithelial cells in TGM-199 solution with 10% FCS for 72 hours at 37$^{\circ}C$ in a 5% $CO_2$ incubator. The cultured nuclear transplant embryos and in vivo developed embryos collected at 72 hours after hCG injection were stained with Hoechst 33342 dye. Their cell numbers were counted under a fluorescent microscope. The results obtained were summarized as follows ; 1. The aged oocytes(20 hrs. post hCG) showed significantly(P<0.05) higher fusionrates(70 ~ 90%) than the recently ovulated oocytes(30.8%) 2. The aged oocytes which were electrically activated and fused at 20 hours developed to blastocyst at significantly(P<0.05) high rate, while none of the recently ovulated oocytes developed to blastocyst. 3. Even though the aged oocytes at 23~26 hours showed higher fusion rate(85.7%), not only they were inadequate to manipulate but also their developmental potential to blastocyst was highly impaired. 4. The developmental potential in vitro of nuclear transplant embryos was significantly retarded than in vivo deveolped embryos.
수정란의 성 판별은 유전적으로 우수한 유전형질을 보유하고 있는 소의 수정란을 성 판별하므로서 희망하는 성의 송아지를 생산할 수 있으며, 부가가치가 높은 수정란을 확보할 수 있는 기술이다. 수정란의 손상을 최소화하면서 할구를 biopsy하는 기술을 개발하고, 간단하고 빠른 시간에 성 판별이 가능한 Loop-mediated isothermal amplification방법으로 수정란을 성 판별을 실시한 결과는 다음과 같다. 1. 한우 체내 수정란의 성비는 암컷이 $56.5\%$, 수컷이 $43.5\%$였고, 체외 수정란은 암컷이 $49.2\%$, 수컷이 $33.9\%$였다. 그리고, 젖소 체외 수정란의 성비는 암컷이 $29.2\%$, 수컷이 $70.8\%$를 나타내어 한우 체내 및 체외 수정란보다 젖소 체외수정란의 수컷비율이 유의적으로 높게 나타내었다(p<0.05). 또한, 한우 체외 수정란에서 성 판별이 불가능한 것이 $16.9\%$를 나타내어 한우 체내 수정란 및 젖소 체외 수정란과는 유의적인 차이를 나타내었다.(P<0.05). 2. Biopsy한 체내 수정란의 체외 발달율은 $100\%$였으나 체외 수정란에서는 정상적으로 발달하지 못하고 퇴화된 수정란이 $13.2\%$로 체내 수정란보다 유의적으로 높은 결과를 나타내었다.(P<0.05). 3. Punching 방법으로 수정란의 biopsy 후 정상적으로 발달하지 못하고 퇴화된 수정란은 체내 및 체외 수정란에서는 없었으나 biopsy 방법으로 biopsy한 수정란은 체내 및 체외 수정란에서 각각 $16.7\%$ 및 $22.6\%$를 나타내어 Punching 방법보다 유의적으로 높은 결과를 나타내었다(P<0.05). 이상의 결과로 보아 한우 체내 수정란은 LAMP방법을 이용하여 간단하고 신속하게 성 판별이 가능하며, 수정란의 biopsy는 punching 방법이 수정란에 손상을 적게 주는 것으로 사료된다.
Oxygen consumption has been regarded as a useful indicator for assessment of mammalian embryo quality. However, there was no standard criterion to measure the oxygen consumption of embryos. Here, we measured oxygen consumption of bovine embryos at various developmental stages was measured using a scanning electrochemical microscopy (SECM). We found that the oxygen consumption significantly increased in blastocyst-stage embryos compared to other stage embryos (from 2-cell-stage to morula-stage), indicating that oxygen consumption reflects the cell number ($5.2{\sim}7.6{\times}10^{14}/mol\;s^{-1}$ versus $1.2{\sim}2.4{\times}10^{14}/mol\;s^{-1}$, p<0.05). In the morula-stage embryos, the oxygen consumption of in vivo derived embryos was significantly higher than that of in vitro produced embryos ($4.0{\times}10^{14}/mol\;s^{-1}$ versus $2.4{\times}10^{14}/mol\;s^{-1}$, p<0.05). However, there was no significant difference in consumption of oxygen by in vivo and in vitro-derived bovine blastocyst-stage embryos (p>0.05). In the frozen-thawed blastocyst-stage embryos, live embryos showed significantly higher oxygen consumption than dead embryos ($4.7{\times}10^{14}/mol\;s^{-1}$ versus $1.0{\times}10^{14}/mol\;s^{-1}$, p<0.05). These results indicate that the measuring oxygen consumption by SECM can be used to evaluate bovine embryo quality.
The ability to preselect the sex of piglets is advantageous in the pig industry. The objective of this study was to examine the feasibility of using intracytoplasmic sperm injection (ICSI) with sorted spermatozoa to produce piglets with a preselected sex. Pig embryos were produced by ICSI of frozen X- and Y-sperm that had been separated by flow cytometry. The developmental competence of the embryos was investigated in vitro and in vivo. The populations of X- and Y-spermatozoa were 52.7% and 47.3%, respectively in our samples. The in vitro development of ICSI embryos was enhanced by longer of in vitro maturation of oocytes ($44{\sim}48\;h$ vs. $40{\sim}43\;h$). Their cleavage ($65{\sim}70%$) and blastocyst formation ($9{\sim}12%$) rates were not significantly different between male and female ICSI embryos, or between sorted and unsorted sperm-derived embryos. One pregnancy was established in a recipient that was transferred with 110 female ICSI embryos, but the pregnancy was terminated on Day 89 of gestation. Our results suggest that the separation X- and Y-spermatozoa by flow cytometric sorting can be a useful tool in combination with ICSI for the production of pig embryos and piglets of preselected sex.
To verify in vivo viability of IVF-derived bovine embryos, morula and blastocysts that developed from in vitro matured and fertilized ova were transferred to the uteri of recipient cows and normal calves were produced. To produce IVF-derived bovine morula or blastocysts, ova matured and fertilized in vitro were cultured in culture medium for 7~8 days at 39$^{\circ}C$ under the humicified atmosphere of 5% CO2. Two different culture systems, a co-culture system with TCM-199 and bovine epithelial cells (BOEC) and CR1aa without somatic cell support, were compared. Cleavage rates to 2~8 cell stage and developmental rates of IVF-derived bovine embryos to blastocyst stage were not different between co-culture system (51.3 and 14.0%) and CR1aa medium (60.4 and 22.1%), respectively. Embryos were classified into three grades by embryo quality and then one or two embryos in higher quality(A and B grades) were transferred to the uterus of recipients. In this study Korean Native calf was first born after transfer of IVF-derived embryos. Total four live calves were normally developed to term from IVF-derived bovine blastocysts and one female fetus was still-born approximatedly 8 months of gestation, but there was no pregnancy after transfer of morula. Therefore, normal calves could be produced after transfer of IVF-derived bovine embryos cultured in CR1aa medium without somatic cell support. In addition, our results suggest that in transfer of IVF-derived bovine embryos blastocyst stage is better than morula.
Lee, H. Y.;S. H. Jun;Y. J. Chung;X. S. Cui;Kim, N. H.
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2003년도 학술발표대회 발표논문초록집
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pp.22-22
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2003
This study was conducted to determine effects of polyvinyl alcohol (PVA), fetal bovine serum (FBS) and bovine serum albumin (BSA) on blastocoel formation, cell number, apoptosis and apoptosis-related gene expression of porcine diploid parthenotes developing in vitro. Embryos were collected from 2-cell or late 4-cell diploid parthenotes that activated with electro pulse, and in vitro cultured in the NCSU 23 medium supplemented without or with 0.1% PVA, 10% FBS or 0.4% BSA for day 7. The morphological analysis of apoptosis in embryos was carried out using propidium iodide staining and terminal deoxynucleotidyl transferase mediated dUTP nick end labeling. The expressions of Bcl-xL, Bak and P53 in blastocyst stage parthenotes and in vivo-derived blastocysts were determined using semiquantitative RT-PCR. The addition of 0.4% BSA to the culture medium enhanced the development of 2- or late 4-cell stage parthenotes to the blastocysts stage (P < 0.01) while FBS decreased the incidence of blastocoel formation. FBS also reduced cell numbers of blastocysts developed from both 2- (P < 0.001) and late 4-cell (P < 0.05) embryos and increased percentage of apoptosis in the blastocysts (P < 0.001). The relative abundance of Bcl-xL mRNA in diploid parthenotes cultured from 2-cell stage in the presence of BSA is similar with that in in vivo derived embryos, but is significantly higher than in parthenotes cultured with FBS, PVA or none protein supplement control. Bak mRNA showed a significant increase at the blastocyst stage in FBS supplement medium. This result suggests that apoptosis related gene expression is significantly affected by protein supplements, which may result in alteration of apoptosis and embryo viability of porcine embryos developing in vitro.
In the studies on the hatching mechanisms in mammals, many investigators focused on the embryonic intrinsic factor(s) in in vitro culture, but the uterine environment as the extrinsic factor(s) is thought to play an important role in hatching mechanism. Therefore, to evaluate the effect of uterine environment on the hatching event in vivo, the immature(GV) and ovulated(MII) oocytes, and the late 2-cell embryos of mouse were transferred to pseudopregnant foster mother's uterus during peri-implantation period. So it was verified whether there would happen hatching by only uterine environment independently on embryonic stage. The ultrastructural changes of the zona surface of transferred group were compared with those 01 in vivo and vitro group by SEM. 36 hrs after transfer, the immature and ovulated oocytes almost degenerated, and the late 2-cell embryos developed to various embryonic stages. However, the embryos which didn't develop to blastula stage did not hatch. The ultrastructural network of ZP in transferred group seemed to be smoothed uniformly, which was different from in vitro group. In conclusion, it is suggested that the uterine environment during peri-implantation period enhances the embryo hatching by provoking the structural change of ZP.
내분비계 장애물질은 다양한 동물의 생식과 배아의 발생에 위해한 영향을 미친다고 보고되었다. 이러한 초기 배아의 비정상 발생 중 대표적인 것이 할구파편이다. 본 연구에서는 착상 전 생쥐 초기 배아를 PCB, BPA, DDT에 체내, 체외에서 각각 노출시켰다. 내분비계 장애 물질에 노출시켰던 배아는 할구파편, 불규칙한 할구와 깨짐, 일부 파괴된 투명대 배아 등의 다양한 형태학적 비정상 양상을 보였다. 착상 전 생쥐 초기배아의 세포괴사에 관여하는 유전자를 조사하기 위하여 RT-PCR을 사용하여 mRNA수준에서 평가하였다. Bcl-2, bad 그리고 bax유전자 발현 정도를 대조군과 내분비계 장애물질 처리군으로 나누어 비교하였다. Bcl-2유전자는 내분비계 장애물질 처리군에서 낮아지는 경향을 보였고, bad와bix는 내분비계 장애물질 처리군에서 보다 높은 경향을 보였다. 이러한 연구 결과는 착상 전 생쥐 초기배아를 체내와 체외에서 내분비계 장애물질에 노출시킴으로써 발생적 독성물질을 신속히 판단할수 있는 유용한 수단이 될 수 있을 것으로 생각한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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